Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Описан метод дифференциации индуцированных человеком плюрипотентных астроцитов и нейронов спинного мозга и их кокультуры для электрофизиологической записи.
Человеческие плюрипотентные астроциты, полученные из стволовых клеток (hiPSC-A) и нейроны (hiPSC-N), обеспечивают мощный инструмент для моделирования патофизиологии бокового амиотрофического склероза (БАС) in vitro. Записи многоэлектродной решетки (MEA) являются средством регистрации потенциалов электрического поля от больших популяций нейронов и анализа сетевой активности с течением времени. Ранее было продемонстрировано, что наличие hiPSC-A, которые дифференцируются с использованием методов продвижения фенотипа астроцитов спинного мозга, улучшает созревание и электрофизиологическую активность регионально специфических hiPSC-моторных нейронов спинного мозга (MN) по сравнению с теми, которые культивируются без hiPSC-A или в присутствии астроцитов грызунов. Здесь описан метод совместного культивирования спинного мозга hiPSC-A с hiPSC-MN и регистрации электрофизиологической активности с использованием записей MEA. В то время как протоколы дифференцировки, описанные здесь, характерны для астроцитов и нейронов, которые регионально специфичны для спинного мозга, платформа кокультурирования может быть применена к астроцитам и нейронам, дифференцированным с помощью методов, специфичных для других судеб, включая корковый hiPSC-A и hiPSC-N. Эти протоколы направлены на предоставление электрофизиологического анализа для информирования о взаимодействиях глиа-нейронов и обеспечения платформы для тестирования лекарств с терапевтическим потенциалом при БАС.
Человеческие плюрипотентные астроциты, полученные из стволовых клеток (hiPSC-A) и нейроны (hiPSC-N), являются мощными инструментами для моделирования патофизиологии бокового амиотрофического склероза (БАС) in vitro и обеспечивают трансляционную парадигму для стратегий открытия лекарств1. Исследователи продемонстрировали, что кокультура hiPSC-A с hiPSC-N усиливает морфологическое, молекулярное, электрофизиологическое и фармакологическое созревание обоих типов клеток, генерируя сложные нейронные сети и взаимодействия астроцитов и нейронов, которые напоминают их аналоги in vivo 2,3
1. Подготовка среды для клеточных культур
2. Поддержание и передача несмешивающихся человеческих индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (hiPSC)
Протокол формирования паттернов спинного мозга для генерации hiPSC-MN и hiPSC-A спинного мозга описан на рисунке 1. В этом протоколе hiPSCs поддерживаются и проходят как несмешивающиеся колонии (рисунок 2A). Нейрогенез инициируется (нейронная индукция) путем двойн?.......
На сегодняшний день методы электрофизиологических записей кокультур астроцитарных нейронов на основе hiPSC и MEA нашли ограниченное применение в области ALS6 и до сих пор не полностью человеческие платформы, в отличие от их более широкого использования для моделирования эпи.......
Авторам нечего раскрывать.
Эта рукопись была поддержана следующим: 2019 MSCRFF 5119 (AT). K08NS102526 NIH/NINDS (CWH), 2020 Премия за развитие карьеры клинического ученого Благотворительного фонда Дорис Дьюк (CWH). 1R01NS117604-01NIH/NINDS (NJM), DOD ALSRP W81XWH2010161 (NJM), 2019 MSCRFD 5122 (NJM). Мы благодарим д-ра Раху Дастгейба и д-ра Нормана Хоги за предоставление платформы MEA и программного обеспечения для анализа данных, которое мы использовали для проверки описанной электрофизиологической платформы. Мы хотели бы поблагодарить Халила Руста за помощь в демонстрации протокола и съемках.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10 cm sterile culture plates | Falcon | 353003 | |
25 cm2 sterile culture flasks | Falcon | 353136 | |
2-Mercaptoethanol (β-ME) | Thermofisher | 21985023 | Working concentration 110 µM |
500 mL 0.2 µm CA Filter System | Corning | 430769 | |
5 mL pipette | Falcon | 357543 | |
6 well sterile culture plates | Falcon | 3046 | |
Amphotericine B | Gibco | 15290018 | Working concentration 2.0 μg/mL |
Anionic detergent with protease enzyme - Terg-A-Zyme | Sigma-Aldrich | Z273287 | Working concentration 1% m/v |
Ascorbic acid (ASAC) | Sigma | A4403 | Dissolve 100 mg into 250 mL of dH2O to get 0.4mg/ml stock. Sterile filter through a 0.22 µm filter, aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute at 1:1000 for use. (working concentration 0.4 µg/mL). |
Axion CytoView MEA 24 plates (M384-tMEA-24W) | Axion | OPT-24 | |
Axion Edge MEA platform | Axion | Maestro Edge | |
Basement Membrane matrix - Matrigel | Corning | 354277 | Details in the protocol |
Benchtop microscope (sterile under cell culture hood) | Zeiss | 415510-1100-000 | Primo Vert |
Bicuculline | Sigma Aldrich | 14340 | Working concentration10 μM |
Ciliary neurotrophic factor (CNTF) | Peprotech | 450-13 | Dissolve 100 µg in 1mL of sterile PBS, and then add 9 mL of sterile 0.1% BSA-PBS to 10 µg/mL. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute at 1: 1000 for use. (working concentration 10 ng/mL). |
CO2 tanks and regulator for Axion Edge | AirGas/Harris | 9296NC | |
Compound E | Abcam | ab142164 | Dissolve 250 µg in 2.0387 mL of DMSO to get a 250 µM stock. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute 1:2000 for use. (working concentration 125 nM). |
Cyanquixaline (CNQX) | Sigma Aldrich | C239 | Working concentration 50 μM |
Dihydrokainic acid (DHK) | Tocris | 111 | Working concentration 50 μM and 300 μM |
DMEM/F12 | Thermofisher | 113300 | Working concentration 1x |
Essential 8 Medium + Essential 8 Supplement | Thermofisher | A1517001 | Combine 10 mL of Essential 8 (10x) supplement with 500 mL of Essential 8 Growth Medium (1x) |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Thermofisher | 16140071 | Working concentration 1x |
Glial cell line-derived neurotrophic (GDNF) | Peprotech | 450-10 | Dissolve 100 µg in 1mL of PBS to 100 µg/mL, and then add 9 mL of sterile 0.1% BSA-PBS to 10 µg/mL. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute at 1: 1000 for use. (working concentration 10 ng/mL). |
Hemocytometer | Election Microscopy Sciences | 63510-20 | |
Heparin | Millipore-sigma | H3149-100KU | Dissolve 200 mg in 100 mL of PBS to get 2 mg/mL stock solution. Aliquot the stock in 15 mL and 500 µL tubes. Dilute 1:1000 for use. (working concentration 2 µg/mL). |
Humidity controlled Cell culture incubator | ThermoFisher | 370 | set to 37 ºC, 5 % CO2 |
Insulin-like growth factor 1 (IGF-1) | R&D systems | 291-G1-200 | Dissolve 200 µg in 2 mL of PBS to 100 µg/mL, then add 18 mL of 0.1%BSA-PBS to make 10 µg/mL stock and store at -80 ºC. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute 10 µg/mL stock at 1: 1000 for use. (working concentration 10 ng/mL). |
Kainc acid | Abcam | ab144490 | Working concentration 5 μM |
Knockout Serum Replacement (KSR) | Thermofisher | 10828 | Working concentration 1x |
Laminin | Thermofisher | 23017-015 | Stock solution 1 mg/mL, working concentration 10 µg/mL (coating), 1 µg/mL (cell media) |
LDN193189 | Stemgent | 04-0074 | Dissolve 2 mg of LDN into 500 µL of Chloroform to get 10 mM stock. Aliquot this and freeze at -80 ºC. For using, dilute the stock 1 to 10 into DMSO [to 1 mM] first, then dilute 1:5000 of 1 mM into the desired media to get 0.2 µM working solution |
L-Glutamine | Thermofisher | 25030 | Working concentration 100x |
MEA glass plates | MultiChannel Systems | 60MEA200/30iR-Ti-gr | |
Multichannel Pipet P200 | Gilson | PJ22224 | |
Neurobasal | Thermofisher | 21103049 | Working concentration 1x |
Non-Essential Amino Acids (NEAA) | Thermofisher | 11140050 | Working concentration 100x |
Pencillin/Streptomycin | Thermofisher | 15140122 | Working concentration 100x |
Polyornithine (PLO) | Sigma-Aldrich | P3655 | Dissolve 100 mg in 1 mL of ddW to get 100 mg/mL stock solution. Aliquot the stock in 100 µL tubes. (working concentration 100 µg/mL) |
Potassium chloride (KCl) | NA | NA | Working concentration100 mM |
Purmorphamine (PMN) | Millipore-Sigma | 540223 | Dissolve 5 mg in 9.6 mL of DMSO to get 1 mM solution. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute 1:1000 for use. (working concentration 1 µM). |
Recombinant human-brain-derived neurotrophic factor (BDNF) | Peprotech | 450-02 | Centrifuge briefly before reconstitution. Dissolve 100 µg in 1 mL of PBS to 100 µg/mL, and then add 9 mL of sterile 0.1% BSA-PBS to 10 µg/mL. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute at 1: 1000 for use. (working concentration 10 ng/mL). |
Retinoic acid (RA) | Sigma | R2625 | Dissolve 100 mg into 3.3 mL of DMSO to get 100 mM stock solution. Aliquot the stock 100 µL/tube and freeze at -80 ºC. Take 200 µL of 100 mM stock and dilute 10x (add 1.8 mL of DMSO) to make 10 mM stock. Aliquot 50 µL/tube and store at -80 ºC. Dilute at 1:10000 for use. (working concentration 2 µM). |
ROCK-I nhibitor | Peprotech | 1293823 | Dissolve 5 mg in 1480 µL of dH2O to get 10 mM stock, aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute at 1: 500 for use. (working concentration 20 µM). |
SB431542 | Sigma | S4317 | Dissolve 5mg into 1.3 mL of DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at -80 ºC. Dilute at 1:1000 for use. (working con 10 µM) |
Sterile cell culture hoods | Baker Company | SG-600 | |
Supplement B - B27 Supplement | Thermofisher | 21985023 | Working concentration 50x |
Supplement N - N2 Supplement | Thermofisher | 17502048 | Working concentration 100x |
Table top cell culture centrifuge | ThermoFisher | 75004261 | Sorvall Legend X1R |
Thermoplastic film - Parafilm | PARAFILM | P7793 | |
Tissue dissociation protease - Dispase | StemCell Technologies | 7923 | Working concentration 1x |
Trypsin Inhibitor | Sigma | T6522-1G | Dissolve 1g in 100mL ddH2O to get 10 mg/mL stock. Aliquot and store at 4 ºC. Dilute 1:10 of trypsin volume for use. (working concentration 1 mg/mL). |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Thermofisher | 2530054 | Working concentration 1x |
Waterbath | ThermoFisher | 2332 | Isotemp |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены