Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Липидные гепатоциты присущи регенерации печени, но обычно теряются при центрифугировании с градиентом плотности. Здесь мы представляем оптимизированный протокол выделения клеток, который сохраняет стеатотические гепатоциты, давая репрезентативные популяции регенерирующих гепатоцитов после частичной гепатэктомии у мышей.
Частичная гепатэктомия широко используется для исследования регенерации печени у мышей, но выделение высоких выходов жизнеспособных гепатоцитов для последующих одноклеточных применений является сложной задачей. Заметное накопление липидов в регенерирующих гепатоцитах наблюдается в течение первых 2 дней нормальной регенерации печени у мышей. Этот так называемый преходящий стеатоз, связанный с регенерацией (TRAS), является временным, но частично перекрывает основную пролиферативную фазу. Очистка с градиентом плотности является основой большинства существующих протоколов выделения первичных гепатоцитов. Поскольку градиентная очистка зависит от плотности и размера клеток, она отделяет нестеатотические популяции гепатоцитов от стеатоза. Поэтому жировые гепатоциты часто теряются, образуя нерепрезентативные фракции гепатоцитов.
Представленный протокол описывает простой и надежный метод выделения in vivo регенерирующих гепатоцитов независимо от содержания в них липидов. Гепатоциты самцов мышей C57BL/6 выделяют через 24-48 ч после гепатэктомии классическим двухэтапным подходом к перфузии коллагеназы. Стандартный перистальтический насос нагнетает нагретые растворы через катетеризированную нижнюю полую вену в остаток, используя метод ретроградной перфузии с оттоком через воротную вену. Гепатоциты диссоциируют коллагеназой для их высвобождения из капсулы Глиссона. После промывки и тщательного центрифугирования гепатоциты можно использовать для любых последующих анализов. В заключение, в этой статье описывается простой и воспроизводимый метод выделения репрезентативной популяции регенерирующих гепатоцитов после частичной гепатэктомии у мышей. Метод также может помочь в изучении жировой болезни печени.
Печень может регенерировать себя даже после значительной потери ткани. Эта уникальная регенеративная способность наглядно иллюстрируется экспериментальной моделью частичной (70%) гепатэктомии, впервые описанной на крысах Хиггинсом и Андерсоном в 1931 году1. В этой модели 70% печени удаляется хирургическим путем у животных путем отсечения более крупных долей печени. Затем оставшиеся доли растут за счет компенсаторной гипертрофии, чтобы восстановить первоначальную массу печени в течение примерно 1 недели после операции, хотя и без восстановления исходной архитектуры печени 2,3. Были разра....
Все эксперименты на животных проводились в соответствии с Федеральными правилами Швейцарии по животным и одобрены Ветеринарным управлением Цюриха (No 007/2017, 156/2019), обеспечивая заботу о человеке. Самцов мышей C57BL/6 в возрасте 10-12 недель держали в 12-часовом дневном цикле со свободным доступом к пище и воде. Каждая экспериментальная группа состояла из шести-восьми животных. Подробную информацию обо всех материалах, оборудовании и реагентах, используемых в этом протоколе, см. в таблице материалов .
1. Частичная гепатэктомия у мышей
TRAS достигает пика через 16 ч после гепатэктомии и постепенно исчезает через 32-48 ч после стандартной гепатэктомии, но сохраняется более 48 ч после расширенной гепатэктомии. Макроскопически TRAS хорошо виден в виде бледного цвета лица остатка печени (рис. 1F) и может наблюдатьс.......
Опубликованный протокол обеспечивает надежный и простой метод выделения высокого выхода нормальных и стеатотических мышиных гепатоцитов для одноклеточного последующего анализа или массового анализа клеток после сортировки FACS. Явное преимущество перед очисткой с градиентом плотно?.......
Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.
Это исследование было поддержано Швейцарским национальным фондом (грант проекта 310030_189262).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Reagents | |||
Alexa Fluor 488 Zombie green | BioLegend | 423111 | Amine-reactive viability dye |
Attane Isoflurane ad us. vet. 99.9% | Provet AG | QN01AB06 | CAUTION: needs ventilation |
EDTA solution | Sigma-Aldrich | E8008-100ML | - |
Ethanol | Sigma-Aldrich | V001229 | Dilute with water to 70% |
Fetal bovine serum (FCS) | Gibco | A5256701 | - |
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS), Ca2+, Mg2+, phenol red | Sigma-Aldrich | H9269-6x600ML | For digestion/preservation |
Hanks' Balanced Salt solution (HBSS), w/o Ca2+, w/o Mg2+, no phenol red | Sigma-Aldrich | H6648-6x500ML | For perfusion buffer |
HEPES solution, 1 M | Sigma-Aldrich | 83264-100ML-F | - |
Histoacryl tissue adhesive (butyl-2-cyanoacrylate) | B. Braun | 1050052 | For stabilization of cannulation site |
Hoechst 33258 Staining Dye Solution | Abcam | ab228550 | - |
Liberase Research Grade | Roche | 5401119001 | Lyophilized collagenases I/II |
NaCl 0.9% 500 mL Ecotainer | B. Braun | 123 | - |
Paralube Vet Ointment | Dechra | 17033-211-38 | - |
Phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | A1286301 | - |
Sudan IV – Lipid staining | Sigma-Aldrich | V001423 | - |
Temgesic (Buprenorphine hydrochloride), Solution for Injection 0.3 mg/mL | Indivior Europe Ltd. | 345928 | Narcotics. Store securely. |
Trypan blue, 0.4%, sterile-filtered | Sigma-Aldrich | T8154 | For cell counting |
Williams’ Medium E | Sigma-Aldrich | W4128-500ML | - |
Materials | |||
25 mL serological pipette, Greiner Cellstar | Merck | P7865 | - |
50 mL Falcon tubes | TPP | - | - |
BD Neoflon, Pro IV Catheter 26 G | BD Falcon | 391349 | - |
Cell scraper, rotating blade width 25 mm | TPP | 99004 | - |
Falcon Cell Strainer 100 µm Nylon | BD Falcon | 352360 | - |
Fenestrated sterile surgical drape | - | - | Reusable cloth material |
Filling nozzle for size 16# tubing (ID 3.1 mm) | Drifton | FILLINGNOZZLE#16 | To go into the tubes |
Flow cytometry tubes, 5 mL | BD Falcon | 352008 | - |
Male Luer to Barb, Tubing ID 3.2 mm | Drifton | LM41 | Connection tube to syringe |
Petri dishes, 96 x 21 mm | TPP | 93100 | - |
Prolene 5-0 | Ethicon | 8614H | To retract the sternum |
Prolene 6-0 | Ethicon | 8695H | For skin suture |
Prolene 8-0 | Ethicon | EH7470E | Ligature gall bladder |
Tube 16#, WT 1.6 mm, ID 3.2 mm, OD 6.4 mm | Drifton | SC0374T | Perfusion tube |
Equipment | |||
BD LSRFortessa Cell Analyzer Flow Cytometer | BD | - | - |
Isis rodent shaver | Aesculap | GT421 | - |
Isofluran station | Provet | - | - |
Low-speed centrifuge – Scanspeed 416 | Labogene | - | - |
Neubauer-improved counting chamber | Marienfeld | - | - |
Oxygen concentrator – EverFlo | Philips | 1020007 | 0 – 5 L/min |
Pipetboy – Pipettor Turbo-Fix | TPP | 94700 | - |
Shenchen perfusion pump – YZ1515x | Shenchen | YZ1515x | - |
Surgical microscope – SZX9 | Olympus | - | - |
ThermoLux warming mat | Thermo Lux | - | - |
Vortex Genie 2, 2700 UpM | NeoLab | 7-0092 | - |
Water bath – Precision GP 02 | Thermo scientific | - | Adjust to 42 °C |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеСмотреть дополнительные статьи
This article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены