A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Here, we present a versatile mounting method that allows for the long-term time-lapse imaging of the posterior body development of live zebrafish embryos without perturbing normal development.
Zebrafisk embryoner tilbyder en ideel eksperimentelle system til at studere komplekse morfogenetiske processer på grund af deres lette tilgængelighed og optisk gennemsigtighed. Især posterior krop forlængelse er en vigtig proces i fosterudviklingen, ved hvilken flere væv deformationer handle sammen for at styre dannelsen af en stor del af kroppen akse. For at overholde denne proces ved langsigtede time-lapse billeddannelse er det nødvendigt at anvende et monterings teknik, der giver tilstrækkelig støtte til at opretholde prøver i den korrekte retning under overførsel til mikroskopet og erhvervelse. Desuden skal monteringen også tilvejebringe tilstrækkelig bevægelsesfrihed for udvæksten af den bageste organ regionen uden at påvirke dens normale udvikling. Endelig skal der være en vis grad i alsidighed monteringsmetode for at tillade billeddannelse af forskellige billeddannende set-ups. Her præsenteres en monteringsteknik til afbildning af udviklingen af posterior organ elongation i zebrafisk D. rerio. Denne teknik indebærer montering embryoner, således at hoved og blommesækken regioner er næsten udelukkende indgår i agarose, mens den bageste kroppen regionen til at forlænge og udvikle sig normalt. Vi vil vise, hvordan det kan tilpasses til opretstående, omvendt og vertikalt lys ark mikroskopi set-ups. Mens denne protokol fokuserer på montering embryoner til billeddannelse til den bageste organ, kunne det let tilpasses til direkte billedvisning af flere aspekter af zebrafisk udvikling.
Posterior organ forlængelse er en vigtig proces af fosterudviklingen, hvorved embryo strækker sig til dannelse af en stor del af kroppen akse. Det er et eksempel på en kompleks morfogenetisk proces, hvor multiple celle adfærd handle koordineret for at generere morfogenese på niveau med individuelle væv. Disse differential væv deformationer derefter handle sammen for at generere forlængelsen af den bageste legeme ved hele strukturen niveau. For at forstå, hvordan disse processer styres og koordineres under udvikling, skal vi være i stand til at følge disse processer på flere skalaer (dvs. på niveau med molekyler, celler, celle populationer og væv), og at re....
1. Udarbejdelse af løsninger og Trukket Glass Needle
Protokollen ovenfor skitserede detaljer en alsidig teknik til montering af zebrafisk embryoner til langsigtet tid bortfalder billeddannelse. Et eksempel på dette er vist i figur 2A og i animeret / video figur 1. Embryoner blev injiceret ved 1 celle stadiet med mRNA der koder for det fluorescerende protein photoconvertible kikumeGR. Ved 15 somite stadium de blev monteret som beskrevet ovenfor og afbildet i 12 timer på et omvendt konfokalt mikroskop med .......
Denne montage teknik gør det muligt embryoner skal holdes stille under overførsel til mikroskopet og over langsigtede time-lapse imaging eksperimenter der sigter mod følgende bageste krop forlængelse på flere længdeskalaer. Desuden er det alsidigt, idet det giver mulighed for billedbehandling på begge opretstående og omvendt mikroskopi set-ups, og et forslag er lavet til, hvordan dette kan yderligere tilpasses vertikalt orienteret SPIM.
Et kritisk trin i denne protokol er den omhygge.......
Estelle Hirsinger: Core funding from the Institut Pasteur and Agence Nationale de la Recherche (ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS). Estelle Hirsinger is from the Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS). Benjamin Steventon was funded by the Agence Nationale de la Recherche (ANR- 10-BLAN-121801 DEVPROCESS), then a Roux fellowship (Institut Pasteur) then an AFM-Téléthon fellowship (number 16829). He is now supported by a Wellcome Trust/Royal Society Sir Henry Dale Fellowship.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
CONSUMABLES | |||
Glass-bottomed dishes | Mattek | P35-1.5-10-C | 35mm petri dish, 10mm microwell. No. 1.5 cover glass |
Capillaries for injection needles | Sutter | BF 120-94-10 | We use orosilicate glass with filament, OD 1.20 mm, ID 0.94 mm, length 10 cm. However, filament needles are not necessary and most injection standard needles should work. |
Micro-scalpel | Feather | P-715 | Micro Feather disposable opthalmic scalpel with plastic handle |
Pasteur Pipettes | 230 mm long | ||
REAGENTS | |||
Tricaine | Sigma-Aldrich | A5040 | |
Low-melting point agarose | Sigma-Aldrich | A9414 | |
EQUIPMENT | |||
Fine forceps | FINE SCIENCE TOOLS GMBH | 11252-30 | Dumont #5 |
Needle puller | Sutter | P97 | Heating-filament needle puller |
Binocular dissecting microscope | Leica | S8 Apo |
This article has been published
Video Coming Soon
ABOUT JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved