Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Here, we present a versatile mounting method that allows for the long-term time-lapse imaging of the posterior body development of live zebrafish embryos without perturbing normal development.

Abstract

Zebrafisk embryoner tilbyder en ideel eksperimentelle system til at studere komplekse morfogenetiske processer på grund af deres lette tilgængelighed og optisk gennemsigtighed. Især posterior krop forlængelse er en vigtig proces i fosterudviklingen, ved hvilken flere væv deformationer handle sammen for at styre dannelsen af ​​en stor del af kroppen akse. For at overholde denne proces ved langsigtede time-lapse billeddannelse er det nødvendigt at anvende et monterings teknik, der giver tilstrækkelig støtte til at opretholde prøver i den korrekte retning under overførsel til mikroskopet og erhvervelse. Desuden skal monteringen også tilvejebringe tilstrækkelig bevægelsesfrihed for udvæksten af ​​den bageste organ regionen uden at påvirke dens normale udvikling. Endelig skal der være en vis grad i alsidighed monteringsmetode for at tillade billeddannelse af forskellige billeddannende set-ups. Her præsenteres en monteringsteknik til afbildning af udviklingen af ​​posterior organ elongation i zebrafisk D. rerio. Denne teknik indebærer montering embryoner, således at hoved og blommesækken regioner er næsten udelukkende indgår i agarose, mens den bageste kroppen regionen til at forlænge og udvikle sig normalt. Vi vil vise, hvordan det kan tilpasses til opretstående, omvendt og vertikalt lys ark mikroskopi set-ups. Mens denne protokol fokuserer på montering embryoner til billeddannelse til den bageste organ, kunne det let tilpasses til direkte billedvisning af flere aspekter af zebrafisk udvikling.

Introduction

Posterior organ forlængelse er en vigtig proces af fosterudviklingen, hvorved embryo strækker sig til dannelse af en stor del af kroppen akse. Det er et eksempel på en kompleks morfogenetisk proces, hvor multiple celle adfærd handle koordineret for at generere morfogenese på niveau med individuelle væv. Disse differential væv deformationer derefter handle sammen for at generere forlængelsen af ​​den bageste legeme ved hele strukturen niveau. For at forstå, hvordan disse processer styres og koordineres under udvikling, skal vi være i stand til at følge disse processer på flere skalaer (dvs. på niveau med molekyler, celler, celle populationer og væv), og at re....

Protocol

1. Udarbejdelse af løsninger og Trukket Glass Needle

  1. Foretag en 25x stamopløsning af tricaine (3-amino benzoesyreethylester, også kaldet ethyl-3-aminobenzoat) ved 4 mg / ml i 20 mM Tris pH 8,8 og bringe denne løsning ved pH 7. alikvot af 4 ml og opbevares ved -20 ° C.
    BEMÆRK: bedøvelsesmiddel tricaine virker fortrinsvis på neurale spændingsstyrede natriumkanaler derved blokerer muskeltrækninger og bevægelse 6.
  2. Foretag en brugsopløsning af tricaine i en slut.......

Representative Results

Protokollen ovenfor skitserede detaljer en alsidig teknik til montering af zebrafisk embryoner til langsigtet tid bortfalder billeddannelse. Et eksempel på dette er vist i figur 2A og i animeret / video figur 1. Embryoner blev injiceret ved 1 celle stadiet med mRNA der koder for det fluorescerende protein photoconvertible kikumeGR. Ved 15 somite stadium de blev monteret som beskrevet ovenfor og afbildet i 12 timer på et omvendt konfokalt mikroskop med .......

Discussion

Denne montage teknik gør det muligt embryoner skal holdes stille under overførsel til mikroskopet og over langsigtede time-lapse imaging eksperimenter der sigter mod følgende bageste krop forlængelse på flere længdeskalaer. Desuden er det alsidigt, idet det giver mulighed for billedbehandling på begge opretstående og omvendt mikroskopi set-ups, og et forslag er lavet til, hvordan dette kan yderligere tilpasses vertikalt orienteret SPIM.

Et kritisk trin i denne protokol er den omhygge.......

Acknowledgements

Estelle Hirsinger: Core funding from the Institut Pasteur and Agence Nationale de la Recherche (ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS). Estelle Hirsinger is from the Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS). Benjamin Steventon was funded by the Agence Nationale de la Recherche (ANR- 10-BLAN-121801 DEVPROCESS), then a Roux fellowship (Institut Pasteur) then an AFM-Téléthon fellowship (number 16829). He is now supported by a Wellcome Trust/Royal Society Sir Henry Dale Fellowship.

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
CONSUMABLES
Glass-bottomed dishesMattekP35-1.5-10-C35mm petri dish, 10mm microwell. No. 1.5 cover glass
Capillaries for injection needles Sutter BF 120-94-10We use orosilicate glass with filament, OD 1.20 mm, ID 0.94 mm, length 10 cm. However, filament needles are not necessary and most injection standard needles should work.
Micro-scalpelFeatherP-715Micro Feather disposable opthalmic scalpel with plastic handle
Pasteur Pipettes230 mm long
REAGENTS
TricaineSigma-AldrichA5040
Low-melting point agaroseSigma-AldrichA9414
EQUIPMENT
Fine forceps FINE SCIENCE TOOLS GMBH 11252-30 Dumont #5
Needle puller Sutter P97Heating-filament needle puller
Binocular dissecting microscopeLeicaS8 Apo

References

  1. Graeden, E., Sive, H. Live Imaging of the Zebrafish Embryonic Brain by Confocal Microscopy. J Vis Exp. (26), e1-e2 (2009).
  2. Delaune, E. A., François, P., Shih, N. P., Amacher, S. L.

Explore More Articles

Developmental BiologyLevende billedbehandlingzebrafiskmonteringkonfokallys arkudvikling

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved