Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Here, we present a versatile mounting method that allows for the long-term time-lapse imaging of the posterior body development of live zebrafish embryos without perturbing normal development.

Abstract

Zebrafisk embryon erbjuder en idealisk experimentellt system för att studera komplexa morfogenetiska processer på grund av sin lättillgänglighet och optisk transparens. I synnerhet, är bakre kropp förlängning en viktig process i embryonal utveckling genom vilken flera vävnads deformationer agera tillsammans för att styra bildandet av en stor del av kroppen axeln. I syfte att observera denna process genom långsiktiga tidsförlopp avbildning är det nödvändigt att utnyttja en monteringsteknik som gör att tillräckligt stöd för att hålla prover i rätt orientering under överföring till mikroskopet och förvärvet. Dessutom måste monteringen också ge tillräcklig rörelsefrihet för utväxt av den bakre kroppsområdet utan att påverka dess normala utveckling. Slutligen måste det finnas en viss grad i mångsidigheten hos monteringsmetod för att möjliggöra avbildning på olika avbildnings uppställningar. Här presenterar vi en monteringsteknik för avbildning av utvecklingen av bakre kroppen elongation i zebrafisk D. rerio. Denna teknik innebär att montera embryon så att huvudet och gulesäcken regioner nästan helt ingår i agaros, medan ut den bakre kroppsområdet för att förlänga och utvecklas normalt. Vi kommer att visa hur detta kan anpassas för upprätt, inverterad och vertikala ljus ark mikroskopi uppställningar. Även om detta protokoll är inriktat på monterings embryon för bildframställning för den bakre kroppen, kan det enkelt anpassas för den levande avbildning av multipla aspekter av zebrafisk utveckling.

Introduction

Posterior kroppen töjning är en viktig process i embryonal utveckling, genom vilken embryot sträcker att bilda en stor del av kroppen axel. Det är ett exempel på en komplex morfogenetiska process genom vilken flera cell beteenden agera koordinerat att generera morfogenes på de enskilda vävnader. Dessa differential vävnad deformationer sedan agera tillsammans för att generera förlängningen av den bakre kroppen på hela strukturen nivå. För att förstå hur dessa processer styrs och samordnas under utveckling, måste vi kunna följa dessa processer på flera skalor (dvs. i nivå med molekyler, celler, populationer och vävnader cell) och relatera detta direkt till mor....

Protocol

1. Beredning av lösningar och dras glas Needle

  1. Gör en 25x förrådslösning av Tricaine (3-aminobensoesyra-etylester, även kallad etyl 3-aminobensoat) vid 4 mg / ml i 20 mM Tris pH 8,8 och föra denna lösning är vid pH 7. Alikvot av 4 ml och förvara vid -20 ° C.
    OBS: bedövningsmedel Tricaine verkar företrädesvis på neurala spänningskänsliga natriumkanaler och därmed blockerar muskelryckningar och rörelse sex.
  2. Gör ett arbetslösning av Tricaine vid en sl.......

Representative Results

Det protokoll som beskrivs ovan anger en mångsidig teknik för montering av zebrafiskembryon för långvarig tidsförlopp avbildning. Ett exempel på detta visas i Figur 2A och i animerade / video Figur 1. Embryon injicerades vid en cellstadiet med mRNA som kodar för photoconvertible fluorescerande proteinet kikumeGR. Vid 15 somit stadiet var de monterade såsom beskrivits ovan och avbildas i 12 h på ett inverterat konfokalmikroskop med ett 10X objekt.......

Discussion

Denna monteringsteknik gör det möjligt för embryon hållas stilla under överföring till mikroskop och över långa tidsförlopp imaging experiment som syftar till följande bakre kroppen töjning vid flera längdskalor. Dessutom är den mångsidig i att det möjliggör för avbildning på både upprätt och inverterad mikroskopi uppställningar, och ett förslag görs för hur detta kan ytterligare anpassas till vertikalt orienterad SPIM.

Ett kritiskt steg i detta protokoll är noggrann.......

Acknowledgements

Estelle Hirsinger: Core funding from the Institut Pasteur and Agence Nationale de la Recherche (ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS). Estelle Hirsinger is from the Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS). Benjamin Steventon was funded by the Agence Nationale de la Recherche (ANR- 10-BLAN-121801 DEVPROCESS), then a Roux fellowship (Institut Pasteur) then an AFM-Téléthon fellowship (number 16829). He is now supported by a Wellcome Trust/Royal Society Sir Henry Dale Fellowship.

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
CONSUMABLES
Glass-bottomed dishesMattekP35-1.5-10-C35mm petri dish, 10mm microwell. No. 1.5 cover glass
Capillaries for injection needles Sutter BF 120-94-10We use orosilicate glass with filament, OD 1.20 mm, ID 0.94 mm, length 10 cm. However, filament needles are not necessary and most injection standard needles should work.
Micro-scalpelFeatherP-715Micro Feather disposable opthalmic scalpel with plastic handle
Pasteur Pipettes230 mm long
REAGENTS
TricaineSigma-AldrichA5040
Low-melting point agaroseSigma-AldrichA9414
EQUIPMENT
Fine forceps FINE SCIENCE TOOLS GMBH 11252-30 Dumont #5
Needle puller Sutter P97Heating-filament needle puller
Binocular dissecting microscopeLeicaS8 Apo

References

  1. Graeden, E., Sive, H. Live Imaging of the Zebrafish Embryonic Brain by Confocal Microscopy. J Vis Exp. (26), e1-e2 (2009).
  2. Delaune, E. A., François, P., Shih, N. P., Amacher, S. L.

Explore More Articles

UtvecklingsbiologiLive avbildningzebrafiskmonteringkonfokalaljus arkutveckling

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved