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要約

肘静脈から高強度のインターバル トレーニング中にいくつかの血液サンプルを取得するためのプロトコルをご紹介します。このプロトコルは、血液代謝物の測定のため役に立つかもしれません、中に内分泌マーカー運動。

要約

身体活動時代謝と内分泌マーカーの測定は、さまざまな運動療法の生理学的意味を理解するための関連性の高いです。いくつかの中に運動療法 (例えば、高強度インターバル トレーニング)、血液代謝やホルモンのレベルを変更で短い期間。本研究では運動中にいくつかの血液サンプルのコレクションを可能にする肘静脈カテーテルを入れて下さい方法をについて説明します。記述法の適用によって高強度の運動中インスリンおよび静脈の乳酸濃度を測定しました。運動は、高強度運動回復の 4 分で区切られた 3 つの 30 s 発作から成っていた。最後の回復期間後ウィンゲート テストを行った。前に、各 30 秒試合後と前に、とウィンゲート テスト後、肘の静脈から血液サンプルが得られました。その結果、運動中に血漿インスリンと静脈血乳酸のバリエーションを評価することが可能だった。

概要

身体活動時代謝と内分泌マーカーの測定は、さまざまな運動療法の生理学的意味を理解するための関連性の高いです。いくつかの運動の様相 (例えば、高強度インターバル トレーニング (HIIE)) 中、血液代謝やホルモンのレベルは比較的短時間1,2,3で変動します。

(すなわちサッカー、バスケット ボール、ラグビー) の多くのスポーツは、低の激しい運動やパッシブ期間4,5で区切られた高強度運動の短い期間で構成されます。HIIE は前述のスポーツとの類似点を提示し、選手6トレーニング法として広く利用されています。さらに、スポーツとの類似性のため HIIE として使用されていますモデル7運動生理学を勉強します。研究目的および物理的な条件の評価に使用頻繁および採血生理学的変数を測定することが欠かせません。ただし、HIIE の中に採血はサンプル コレクション間の短い期間のため技術的に困難することができます。ここで、この問題の解決策として間を取得する血液サンプル肘静脈カテーテル法によって短い期間科目を実行 HIIE の方法を示す.

プロトコル

ここで説明したすべてのメソッドは、ローカル倫理委員会によって承認されている (同志社大学倫理委員会: 15033)、ヘルシンキ宣言によって設定された基準に厳密に従っていた。すべての参加者からインフォームド コンセントを得た。被験者は男性のレクリエーション スポーツ選手 (年齢、20.1 ± 1.2 年; 重量 69.7 ± 6.2 kg; 176.1 ± 高さ 5.8 cm; 体脂肪 13.6 ± 1.5% と VO2、最大 52.6 ± 6.6 mL/分1/kg1)。

1. 運動プロトコルの確立

注: 本研究は HIIE プロトコルの中に肘静脈から採血して血液ホルモンと代謝物の動態評価の成っていた。

  1. 低強度での自転車エルゴメータでのサイクリングの 5 分を暖かいを実行する対象を求めます。ウォーム アップの後、残り 5 分の件名をしましょう。
  2. 下肢エルゴメータで次の HIIE を実行する対象を求める: 30 s 高強度運動、区切られた (図 1)、残りの 4 分の 3 の発作。
    注: 30 s 発作べき強度と同額に設定 90% 以前に実行されたウィンゲート テストのパワー平均。ウィンゲート テストの完全な説明の8を他の場所で参照してください。
  3. 30 s 発作の負荷を計算するには、次の数式を使用します。
    仕事 = 力 x 距離 (関係式 1)
    力 = 質量 x 加速度 (式 2)
    仕事 = (質量 x 加速度) x 距離 (式 3)
    注: このモデルは作業負荷 (kg) 質量と加速度は 9.81 m/s2です。距離は、車輪の直径 (1.622 m) です。3.7 時間/peal 回転車輪の回転するため、ペダル回転あたりの距離は 3.7 x 1.662 です。さらに、ペダル回転数は 90 回転/分190 の 1 つのペダル距離の乗算するあります。
    仕事 = 9.81 x 3.7 x 1.622 x 90 (関係式 4) x 作業負荷
    作業負荷 = 仕事/(9.81 x 3.7 x 1.622 x 90) (式 5)

2. カテーテル

注: チューブと vacutainers ラベルを付けるように事前に時間を失うことを避けるために。

  1. カテーテル検査の選択腕に駆血帯をラップします。これを行うには、選択した arm の背面にあるゴムバンドを配置します。伸縮バンド、腕の周りのバンドで輪を作るし、弾性を結ぶ。
  2. 目に見える肘静脈を選択し、エタノールやアルコールで皮膚を消毒します。
  3. 滅菌のカニューレの先端を皮膚に 15 ° のおおよその角度で静脈に挿入します。
    注: から近位遠位方向にカニューレを挿入します。穿刺に成功した場合は、血液のバック フラッシュを観察すべき。
  4. 手でカニューレを固定し、そっと針を削除します。
    注: 運動中に針の角度を維持するために綿組織は皮膚と針の間に使用することがあります。この構造体をテープで固定します。
  5. ヘパリンと最初の血液サンプル (約 2.5 mL) の吸引、バキュテナーを接続します。すぐの後で、40 分のアイス ボックスにそれを置くことによって血液サンプル冷蔵庫で冷やします。血液ガス分析しようとしている場合は、アシスタントを助けを求めます。
  6. カテーテルにチューブを接続し、血液凝固を避けるために管の長さがフルにヘパリンを注入します。蝶を閉じます。
  7. テープを使用して、カテーテルを安定させます。この時点でことを確認、被写体の腕移動は血のコレクションと干渉しません。この条件を確認するため針の位置は、任意の動きの影響を受けないことを必ずください。

3. 血液サンプリング

  1. ヘパリンを削除するには、カテーテルに血液だけがあるまで、バキュテナーを使用します。血液のフラッシュ バックを観測すると、2.5 の手順で説明するようにサンプルを収集します。
  2. サンプル コレクション後血液凝固を避けるためにカテーテル チューブにヘパリンを再び挿入します。この操作の後ステップ 2.5 は、いくつかのサンプル コレクションの繰り返されるかもしれません。
  3. 最後のサンプルが収集された後慎重にカニュレーション チューブを削除し、アルコールで皮膚をきれいします。可能な限り出血を避けるため、カテーテル検査が作られた場所で滅菌綿を保つために主題を求めます。
  4. バキュテナー チューブで収集された血液は、慎重に血液の約 1.5 mL を 1.5 mL チューブに渡すし、チューブを氷の上。
  5. 測定血中乳酸乳酸検出器を用いた血の残りから。同じ日に、プラズマの採血 (血液の約 1.5 mL) を取得します。
  6. 血漿分離 4 oC で 5000 × g で 5 分間の血液サンプルを遠心し、新しい 1.5 mL チューブに上清を分離します。
  7. プラズマを浄化するために遠心分離の 1 つのより多くの時間を繰り返します。
  8. 血漿分離後のホルモンの分析まで-80 oC でサンプルを格納します。
  9. 製造元のあたり (材料の表を参照) をプロトコルとして ELISA キットを使用してインスリンを測定します。

結果

代表的な結果としてエルゴで HIIE の中に 6 科目で血の乳酸およびインスリン変動を測定するのにこのプロトコルを使用しました。ピーク電力と平均電力ウィンゲート テスト 732 ± 120 と 549 ± 84 ワットであった。平均電力は、HIIE の 30 s 発作時に出力 (494 ± 75 ワット) を計算していました。

図 2は、血?...

ディスカッション

本研究では肘静脈が我々 だったと血液採取した高インターバル運動中に正常に。この手法の利用例として採血を行った (後に血漿分離) と血中乳酸の血漿インスリンのこの方法の主な利点は、血液サンプルのコレクション要するに期間できるということです。同時に、それはいくつかの制限があります。その使用を許可する限られた運動様式などアシスタントの数、必要し、専門訓練を受け?...

開示事項

著者が明らかに何もありません。

謝辞

著者は、博士 p. Karagiannis ペーパーを読むと彼の技術的なサポートのための教授 t. ほようを認識したいと思います。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Cycle ergometerMonarkMONARK Ergomedic 874 E
CatheterTerumoSR-FF2032
VacutainerTerumoPZ-D03
Tube for catheterTerumoSP-PTW30L02
HeparinTerumoPF-10HF10UA
Insulin ELISA kitAbnovaELISA Kit KA0921

参考文献

  1. Wahl, P., Mathes, S., Köhler, K., Achtzehn, S., Bloch, W., Mester, J. Effects of active vs. passive recovery during Wingate-based training on the acute hormonal, metabolic and psychological response. Growth Horm IGF Res. 23 (6), 201-208 (2013).
  2. Wahl, P., Mathes, S., Achtzehn, S., Bloch, W., Mester, J. Active vs. passive recovery during high-intensity training influences hormonal response. Int J Sports Med. 35 (7), 583-589 (2014).
  3. Nalbandian, H. M., Radak, Z., Takeda, M. Effects of active recovery during interval training on plasma catecholamines and insulin. J Sports Med Phys Fitness. , (2017).
  4. Stolen, T., Chamari, K., Castagna, C., Wislff, U. Physiology of Soccer. Sport Med. 35 (6), 501-536 (2005).
  5. Bangsbo, J. The physiology of soccer--with special reference to intense intermittent exercise. Acta Physiol Scand Suppl. 619, 1-155 (1994).
  6. MacInnis, M. J., Gibala, M. J. Physiological adaptations to interval training and the role of exercise intensity. J Physiol. 595 (9), 2915-2930 (2017).
  7. Emberts, T., Porcari, J., Dobers-Tein, S., Steffen, J., Foster, C. Exercise intensity and energy expenditure of a tabata workout. J Sports Sci Med. 12 (3), 612-613 (2013).
  8. Smith, J. C., Hill, D. W. Contribution of energy systems during a Wingate power test. Br J Sports Med. 25 (4), 196-199 (1991).
  9. Dotan, R., Bar-Or, O. Load optimization for the Wingate Anaerobic Test. Eur J Appl Physiol Occup Physiol. 51 (3), 409-417 (1983).
  10. Carrasco-Benso, M. P., et al. Human adipose tissue expresses intrinsic circadian rhythm in insulin sensitivity. FASEB J. 30 (9), 3117-3123 (2016).
  11. Hatfield, D. L., Nicoll, J. X., Kraemer, W. J. Effects of Circadian Rhythm on Power, Force, and Hormonal Response in Young Men. J Strength Cond Res. 30 (3), 725-732 (2016).

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