Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Denne protokol beskriver en effektiv metode til at adskille spyt i en enkelt celle suspension og den efterfølgende karakterisering af cellulære delmængder på standard flow cytometriske platforme.

Abstract

Sputum, der i vid udstrækning anvendes til at studere det cellulære indhold og andre mikromiljøfunktioner for at forstå lungens sundhed, analyseres traditionelt ved hjælp af cytologibaserede metoder. Dens nytte er begrænset, fordi læsning af dias er tidskrævende og kræver højt specialiseret personale. Desuden gør omfattende snavs og tilstedeværelsen af for mange pladeformede epitelceller (SECs) eller kindceller ofte en prøve utilstrækkelig til diagnose. I modsætning hertil giver flowcytometri mulighed for fænotyping med høj gennemløb af cellulære populationer, samtidig med at snavs og 2-metri'er udelukkes.

Protokollen præsenteres her beskriver en effektiv metode til at adskille spyt i en enkelt celle suspension, antistof plet og fastsætte cellulære populationer, og erhverve prøver på en flow cytometri platform. En gating strategi, der beskriver udelukkelse af vragrester, døde celler (herunder SECs) og celle doublets præsenteres her. Endvidere forklarer dette arbejde også, hvordan man analyserer levedygtige, enkelte spytceller baseret på en klynge af differentiering (CD)45 positive og negative populationer for at karakterisere hæmatoopoietiske og epitelstrenge subsets. En kvalitetskontrol foranstaltning er også fastsat ved at identificere lunge-specifikke makrofager som bevis for, at en prøve er afledt af lungen og er ikke spyt. Endelig er det blevet påvist, at denne metode kan anvendes på forskellige cytometriske platforme ved at levere spytprofiler fra den samme patient analyseret på tre flowcytometre; Navios EX, LSR II og Lyric. Desuden kan denne protokol ændres til at omfatte yderligere cellulære markører af interesse. En metode til at analysere en hel spytprøve på en flowcytometrisk platform præsenteres her, der gør spyt modtagelig for udvikling af høj-throughput diagnostik af lungesygdom.

Introduction

Tekniske fremskridt inden for hardware og software af flowcytometre har gjort det muligt at identificere mange forskellige cellepopulationer samtidigt1,2,3,4. Udnyttelsen af flowcytometeret i hæmatoopoietisk celleforskning har for eksempel ført til en langt bedre forståelse af immunsystemet2 og det cellulære hierarki i det hæmatoopoietiske system5 samt den diagnostiske sondring af en lang række forskellige blodkræft6,7,8

Protocol

Alle trin i spytbehandlingen udføres i et biologisk sikkerhedsskab med passende personlige værnemidler.

1. Reagens forberedelse før start sputum dissociation

  1. Optø 1% Paraformaldehyd (PFA), 25 mL pr. prøve på is, og hold dig kold, indtil den er i brug.
    FORSIGTIG: PFA er giftig ved indånding og hudkontakt. Fiksativt forberedes i overensstemmelse med fabrikantens anvisninger, og frysning ved -20 °C i 25 mL aliquots indtil brug.
  2. Prøvens vægt tilnærmes og optøs no.......

Representative Results

Denne protokol blev udviklet med et klinisk laboratorium indstilling i tankerne. Fokus under udviklingen af protokollen var på enkelhed, effektivitet og reproducerbarhed. Det blev konstateret, at det mest tidskrævende trin i behandlingen af spyt var at tælle cellerne. Derfor er protokollen konfigureret på en sådan måde, at spytbehandling og cellemærkning kan udføres uafhængigt af celletælling uden tidstab. Et nøjagtigt celletal, som stadig er nødvendigt for at fortynde prøven korrekt til en uhindret kørsel,.......

Discussion

Det cellulære indhold af spyt omfatter et stort udvalg af vidtrækkende celler, ofte ledsaget af en masse snavs37. Derudover kræver spytanalyse en kvalitetskontrol, der bekræfter, at prøven indsamles fra lungen i stedet for mundhulen38. Derfor er det ikke så simpelt at analysere spyt ved flowcytometri som det er for blod, for eksempel, hvilket frigiver en meget renere og homogen celleaffjedring. Denne protokol har behandlet alle disse spørgsmål: at give instrumentind.......

Acknowledgements

Vi vil gerne takke David Rodriguez for hans hjælp med figurforberedelsen. Sputum prøver blev kørt på BD LSR II på UT Health San Antonio Flow Cytometry Shared Resource Facility, støttet af UT Health, NIH-NCI P30 CA054174-20 (CTRC på UT Health) og UL1 TR001120 (CTSA tilskud).

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1% Paraformaldehyde Flow-FixPolysciences25037
100 µM nylon cell strainers, Falcon #352360Fisher Scientific08-771-19
3 M NaOHEMDSX0593-1
50 mL conical falcon tubeFisher Scientific14-432-22
Alexa488 anti-human CD19BioLegend302219
Alexa488 anti-human CD3BioLegend300415
Alexa488 anti-human cytokeratinBioLegend628608
Alexa488 PanCK, CD3, and CD19 IsotypeBioLegend400129
BV510 anti-human CD45BioLegend304036
CD66b FITC isotypeBD Biosciences555748
CompBead Plus Compensation BeadsBD Biosciences560497
Corning Polystyrene dispoable sterile bottle 250 mLFisher Scientific09-761-4
Corning Polystyrene dispoable sterile bottle 500 mLFisher Scientific09-761-10
CS&T beadsBD Biosciences655051
DTTFisher ScientificBP172-5
FITC anti-human CD66bGeneTexGTX75907
Fixable Viability StainBD Biosciences564406
FlowCheckBeckman CoulterA69183
FlowSetBeckman CoulterA69184
HBSSFisher Scientific14-175-095
NACSigma-AldrichA9165
NIST Beads, 05 μMPolysciences64080
NIST Beads, 20 μMPolysciences64160
NIST Beads, 30 μMPolysciences64170
PE anti-human CD45BioLegend304039
PE-CF594 anti-human EpCAMBD Biosciences565399
PE-CF594 CD206/EpCAM IsotypeBD Biosciences562292
PE-CR594 anti-human CD206BD Biosciences564063
Sodium citrate dihydrateEMDSX0445-1
Trypan Blue solution, 0.4%Fisher Scientific15250061

References

  1. Lugli, E., Roederer, M., Cossarizza, A. Data analysis in flow cytometry: the future just started. Cytometry. Part A: The Journal of the International Society for Analytical Cytology. 77 (7), 705-713 (2010).
  2. Perfetto, S. P., Chattopadhyay, P. K., Roederer, M.

Explore More Articles

Medicinudgave 174

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved