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  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Apresentamos aqui o desenvolvimento para a aquisição consistente de cortes criostato de gânglio da raiz dorsal de alta qualidade.

Abstract

Cortes de criostato de alta qualidade do gânglio da raiz dorsal de camundongos (DRG) são cruciais para a coloração imunoquímica adequada e estudos de RNAscope na pesquisa de dor inflamatória e neuropática, coceira, bem como outras condições neurológicas periféricas. No entanto, continua sendo um desafio obter consistentemente seções de criostato de alta qualidade, intactas e planas em lâminas de vidro devido ao tamanho minúsculo da amostra do tecido DRG. Até o momento, não há nenhum artigo descrevendo um protocolo ideal para criossecção DRG. Este protocolo apresenta um método passo-a-passo para resolver as dificuldades frequentemente encontradas associadas à criossecção DRG. O artigo apresentado explica como remover o líquido circundante das amostras de tecido DRG, colocar as seções DRG na lâmina voltadas para a mesma orientação e achatar as seções na lâmina de vidro sem se curvar. Embora este protocolo tenha sido desenvolvido para a criossecção de amostras DRG, ele pode ser aplicado para a criossecção de muitos outros tecidos com um pequeno tamanho amostral.

Introduction

O gânglio da raiz dorsal (DRG) contém os neurônios sensoriais primários, os macrófagos teciduais e as células satélites que circundam os neurônios sensoriais primários 1,2,3,4. É uma estrutura anatômica chave no processamento de sinais inócuos e nocivos, e desempenha papéis críticos na dor, prurido e vários distúrbios dos nervos periféricos 5,6,7,8,9,10,11,12,13.

Protocol

Para o presente estudo, os experimentos com animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da UCSF e conduzidos de acordo com o NIH Guide for the Care and Use of Laboratory animals. Camundongos adultos C57BL/6 machos e fêmeas (criados internamente) com 8-12 semanas de idade foram usados aqui.

1. Preparação da amostra DRG

  1. Anestesiar os camundongos com 2,5% de Avertin (ver Tabela de Materiais). Garantir anestesia ade.......

Representative Results

O presente estudo coletou cerca de 16 seções DRG contínuas e de alta qualidade de um camundongo L4 DRG. Os cortes obtidos foram sem distorção. A Figura 1 mostra o passo a passo para a criossecção. A retirada de líquido extra dos cortes teciduais é mostrada na Figura 2. O processo de inclusão dos tecidos pela OCT é destacado na Figura 3. A Figura 4 mostra o posicionamento adequado das seções.......

Discussion

Este protocolo fornece um procedimento passo-a-passo fácil para a secção criostato do DRG do mouse para obter seções DRG de alta qualidade em lâminas de forma confiável. Há quatro etapas críticas neste protocolo. Primeiro, a amostra DRG e a pinça devem estar secas antes de colocar a amostra DRG na OCT base. Qualquer líquido ao redor da amostra DRG formará uma camada de gelo ao seu redor, resultando em seções DRG se separando da OCT e curvando-se. Em segundo lugar, se o bloco de alumínio não tiver uma marc.......

Disclosures

Os autores não têm nada a revelar.

Acknowledgements

Nenhum.

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AvertinSigma-AldrichT48402-25GAnesthetize animal
Epredia Cryotome Cryostat Cryocassettes, 25 mm dia. CrosshatchedFisherbrand1910Hold the OCT section at the bottom 
Ergo TweezersFisherbrandS95310Using the end of a tweezer to gently touch the bottom (6 o’clock) of the section so that it sticks to the platform surface to prevent the section from curving back in a roll 
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope SlidesFisherbrand1255015To collect the DRG section 
Marking pensFisherbrand133794 Mark the orientation of base OCT
Scigen Tissue-Plus O.C.T. CompoundFisherbrand 23730571Embedding medium for frozen tissue specimens to ensure optimal cutting temperature (O.C.T.).

References

  1. Guan, Z., et al. Injured sensory neuron-derived CSF1 induces microglial proliferation and DAP12-dependent pain. Nature Neuroscience. 19 (1), 94-101 (2016).
  2. Yu, X., et al.

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