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* These authors contributed equally
A expressão gênica é regulada por interações de promotores gênicos com elementos regulatórios distais. Aqui, descrevemos como a baixa entrada de Capture Hi-C (liCHi-C) permite a identificação dessas interações em tipos celulares raros, que antes eram imensuráveis.
A transcrição espacial temporal de genes é fortemente regulada por elementos regulatórios distais, como intensificadores e silenciadores, que dependem da proximidade física com seus promotores gênicos alvo para controlar a transcrição. Embora esses elementos regulatórios sejam fáceis de identificar, seus genes-alvo são difíceis de prever, uma vez que a maioria deles é específica do tipo celular e pode ser separada por centenas de quilobases na sequência linear do genoma, pulando sobre outros genes não-alvo. Por vários anos, o Promoter Capture Hi-C (PCHi-C) tem sido o padrão-ouro para a associação de elementos regulatórios distais aos seus genes-alvo. No entanto, a PCHi-C depende da disponibilidade de milhões de células, proibindo o estudo de populações celulares raras, como as comumente obtidas de tecidos primários. Para superar essa limitação, foi desenvolvido o Low input Capture Hi-C (liCHi-C), um método econômico e personalizável para identificar o repertório de elementos regulatórios distais que controlam cada gene do genoma. O liCHi-C baseia-se em uma estrutura experimental e computacional semelhante à PCHi-C, mas empregando mudanças mínimas de tubo, modificando a concentração e os volumes do reagente e trocando ou eliminando etapas, ele é responsável por uma perda mínima de material durante a construção da biblioteca. Coletivamente, o liCHi-C possibilita o estudo da regulação gênica e da organização espaço-temporal do genoma no contexto da biologia do desenvolvimento e da função celular.
A expressão gênica temporal impulsiona a diferenciação celular e, em última instância, o desenvolvimento do organismo, e sua alteração está intimamente relacionada a uma ampla gama de doenças1,2,3,4,5. A transcrição gênica é finamente regulada pela ação de elementos regulatórios, que podem ser classificados em proximais (i.e., promotores gênicos) e distais (e.g., intensificadores ou silenciadores), estes últimos frequentemente localizados distantes de seus genes-alvo e interagindo fisicamente com eles atrav....
Para garantir uma perda mínima de material, (1) trabalhar com tubos e pontas de baixa ligação de ADN (ver Tabela de Materiais), (2) colocar reagentes na parede do tubo em vez de introduzir a ponta no interior da amostra e, (3) se possível, misturar a amostra por inversão em vez de pipetar a amostra para cima e para baixo, e girar para baixo depois para recuperar a amostra.
1. Fixação celular
O liCHi-C oferece a possibilidade de gerar bibliotecas de interatoma promotor genômico de alta qualidade e resolução com apenas 50.000 células53. Isso é conseguido por – além da redução drástica dos volumes de reação e do uso de plástico de baixa ligação de DNA em todo o protocolo – removendo etapas desnecessárias do protocolo original, nas quais ocorrem perdas significativas de material. Estes incluem a purificação de fenol após a desreticulação, a remoção de biotina e s.......
O liCHi-C oferece a capacidade de gerar bibliotecas de interatoma promotor de alta resolução usando uma estrutura experimental semelhante à da PCHi-C, mas com um número de células muito reduzido. Isso é muito conseguido eliminando etapas desnecessárias, como purificação de fenol e remoção de biotina. No protocolo clássico de ligadura intranúcleo Hi-C57 e sua subsequente técnica derivada PCHi-C, a biotina é removida de fragmentos de restrição não ligados para evitar puxar para bai.......
Os autores não têm nada a revelar.
Agradecemos ao resto dos membros do laboratório Javierre por seu feedback sobre o manuscrito. Agradecemos ao Programa CERCA, à Generalitat de Catalunya e à Fundação Josep Carreras pelo apoio institucional. Este trabalho foi financiado pelo FEDER/Ministério da Ciência e Inovação da Espanha (RTI2018-094788-A-I00), pela Associação Europeia de Hematologia (4823998) e pela Associação Espanhola contra o Câncer (AECC) LABAE21981JAVI. O BMJ é financiado pelo projeto Líder Júnior da Fundação Bancária La Caixa (LCF/BQ/PI19/11690001), o LR é financiado por uma bolsa AGAUR FI (2019FI-B00017) e o LT-D é financiado por uma bolsa FPI (PRE2019-088005). Agradecemos ao programa de dout....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.4 mM Biotin-14-dATP | Invitrogen | 19524-016 | |
0.5 M EDTA pH 8.0 | Invitrogen | AM9260G | |
1 M Tris pH 8.0 | Invitrogen | AM9855G | |
10x NEBuffer 2 | New England Biolabs | B7002S | Referenced as restriction buffer 2 in the manuscript |
10x PBS | Fisher Scientific | BP3994 | |
10x T4 DNA ligase reaction buffer | New England Biolabs | B0202S | |
16% formaldehyde solution (w/v), methanol-free | Thermo Scientific | 28908 | |
20 mg/mL Bovine Serum Albumin | New England Biolabs | B9000S | |
5 M NaCl | Invitrogen | AM9760G | |
5PRIME Phase Lock Gel Light tubes | Qiuantabio | 2302820 | For phenol-chloroform purification in section 4 (DNA purification). Phase Lock Gel tubes are a commercial type of tubes specially designed to maximize DNA recovery after phenol-chloroform purifications while avoiding carryover of contaminants in the organic phase by containing a resin of intermediate density which settles between the organic and aqueous phase and isolates them. PLG tubes should be spun at 12,000 x g for 30 s before use to ensure that the resin is well-placed at the bottom of the tube |
Adapters and PCR primers for library amplification | Integrated DNA Technologies | - | Bought as individual primers with PAGE purification for NGS |
Cell scrappers | Nunc | 179693 | Or any other brand |
Centrifuge (fixed-angle rotor for 1.5 mL tubes) | Any brand | ||
CHiCAGO R package | 1.14.0 | ||
CleanNGS beads | CleanNA | CNGS-0050 | |
dATP, dCTP, dGTP, dTTP | Promega | U120A, U121A, U122A, U123A | Or any other brand |
DNA LoBind tube, 1.5 mL | Eppendorf | 30108051 | |
DNA LoBind tube, 2 mL | Eppendorf | 30108078 | |
DNA polymerase I large (Klenow) fragment 5000 units/mL | New England Biolabs | M0210L | |
Dynabeads MyOne Streptavidin C1 beads | Invitrogen | 65002 | For biotin pull-down of the pre-captured library in section 8 (biotin pull-down) |
Dynabeads MyOne Streptavidin T1 beads | Invitrogen | 65602 | For biotin pull-down of the post-captured library in section 11 (biotin pull-down and PCR amplification) |
DynaMag-2 | Invitrogen | 12321D | Or any other magnet suitable for 1.5 ml tubeL |
Ethanol absolute | VWR | 20821.321 | |
FBS, qualified | Gibco | 10270-106 | Or any other brand |
Glycine | Fisher BioReagents | BP381-1 | |
GlycoBlue Coprecipitant | Invitrogen | AM9515 | Used for DNA coprecipitation in section 4 (DNA purification) |
HiCUP | 0.8.2 | ||
HindIII, 100 U/µL | New England Biolabs | R0104T | |
IGEPAL CA-630 | Sigma-Aldrich | I8896-50ML | |
Klenow EXO- 5000 units/mL | New England Biolabs | M0212L | |
Low-retention filter tips (10 µL, 20 µL, 200 µL and 1000 µL) | ZeroTip | PMT233010, PMT252020, PMT231200, PMT252000 | |
M220 Focused-ultrasonicator | Covaris | 500295 | |
Micro TUBE AFA Fiber Pre-slit snap cap 6 x 16 mm vials | Covaris | 520045 | For sonication in section 6 (sonication) |
NheI-HF, 100 U/µL | New England Biolabs | R3131M | |
Nuclease-free molecular biology grade water | Sigma-Aldrich | W4502 | |
PCR primers for quality controls | Integrated DNA Technologies | - | |
PCR strips and caps | Agilent Technologies | 410022, 401425 | |
Phenol: Chloroform: Isoamyl Alcohol 25:24:1, Saturated with 10 mM Tris, pH 8.0, 1 mM EDTA | Sigma-Aldrich | P3803 | |
Phusion High-Fidelity PCR Master Mix with HF Buffer | New England Biolabs | M0531L | For amplification of the library in sections 9 (dATP-tailing, adapter ligation and PCR amplification) and 11 (biotin pull-down and PCR amplification) |
Protease inhibitor cocktail (EDTA-free) | Roche | 11873580001 | |
Proteinase K, recombinant, PCR grade | Roche | 3115836001 | |
Qubit 1x dsDNA High Sensitivity kit | Invitrogen | Q33230 | For DNA quantification after precipitation in section 4 (DNA purification) |
Qubit assay tubes | Invitrogen | Q32856 | |
rCutsmart buffer | New England Biolabs | B6004S | |
RPMI Medium 1640 1x + GlutaMAX | Gibco | 61870-010 | Or any other brand |
SDS - Solution 10% for molecular biology | PanReac AppliChem | A0676 | |
Sodium acetate pH 5.2 | Sigma-Aldrich | S7899-100ML | |
SureSelect custom 3-5.9 Mb library | Agilent Technologies | 5190-4831 | Custom designed mouse or human capture system, used for the capture |
SureSelect Target Enrichment Box 1 | Agilent Technologies | 5190-8645 | Used for the capture |
SureSelect Target Enrichment Kit ILM PE Full Adapter | Agilent Technologies | 931107 | Used for the capture |
T4 DNA ligase 1 U/µL | Invitrogen | 15224025 | For ligation in section 3 (ligation and decrosslink) |
T4 DNA ligase 2000000/mL | New England Biolabs | M0202T | For ligation in section 9 (dATP-tailing, adapter ligation and PCR amplification) |
T4 DNA polymerase 3000 units/mL | New England Biolabs | M0203L | |
T4 PNK 10000 units/mL | New England Biolabs | M0201L | |
Tapestation 4200 instrument | Agilent Technologies | For automated electrophoresis in section 9 (dATP-tailing, adapter ligation, and PCR amplification) and section 11 (Biotin pull-down and PCR amplification). Any other automated electrophoresis system is valid | |
Tapestation reagents | Agilent Technologies | 5067-5582, 5067-5583, 5067-5584, 5067-5585, | For automated electrophoresis in section 9 (dATP-tailing, adapter ligation, and PCR amplification) and section 11 (Biotin pull-down and PCR amplification). Any other automated electrophoresis system is valid |
Triton X-100 for molecular biology | PanReac AppliChem | A4975 | |
Tween 20 | Sigma-Aldrich | P9416-50ML |
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