Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Этот протокол обеспечивает простой рабочий процесс для проведения очистки поли(А)-РНК, бисульфитной конверсии и подготовки библиотеки с использованием стандартизированного оборудования для получения интересующего биологического образца.

Abstract

Посттранскрипционные модификации РНК в различных типах транскриптов РНК связаны с разнообразной регуляцией РНК в эукариотических клетках. Было показано, что аберрантные модификации РНК-5-метилцитозина и нерегулируемая экспрессия РНК-метилтрансфераз связаны с различными заболеваниями, включая рак. Для характеристики положения и количественных уровней метилирования цитозина в бисульфит-превращенной РНК при разрешении пары оснований было разработано полнотранскриптомное бисульфитное секвенирование. В настоящем протоколе подробно описаны процедуры двух раундов очистки поли(А) РНК, трех циклов бисульфитной реакции и подготовки библиотеки, позволяющие проводить транскриптомное картирование сайтов модификации мРНК 5-метилцитозина. Оценка количества и качества РНК после основной реакции имеет важное значение для контроля целостности РНК и является критически важным шагом для обеспечения высококачественных библиотек секвенирования. В идеале процедуры можно завершить в течение трех дней. С помощью этого протокола, используя высококачественную общую РНК в качестве входных данных, можно практически создать надежные библиотеки бисульфит-мРНК для секвенирования следующего поколения из интересующего образца.

Introduction

Среди более чем 150 типов посттранскрипционных модификаций1 модификация 5-метилцитозина (м5С) была идентифицирована в различных типах РНК, включая рибосомную РНК, транспортную РНК, матричную РНК, микроРНК, длинную некодирующую РНК, опорную РНК, энхансерную РНК и малые кажальные тельцеспецифичные РНК2. РНК m 5 C связана с различными биологическими и патологическими механизмами, такими как регуляция развития корней растений3, экспрессия вирусных генов4 и прогрессирование рака5. Целью данного протокола является предоставление оптим....

Protocol

1. Очистка поли(А) РНК

ПРИМЕЧАНИЕ: Используйте общую РНК, обработанную ДНКазой I, и проверьте качество и целостность общей РНК путем оценки капиллярного или обычного гель-электрофореза, прежде чем приступать к очистке поли(А) РНК. Исследователи должны быть в состоя?.......

Representative Results

Серия библиотек bsRNA-seq из клеточных линий19 была сгенерирована с помощью процедур, описанных в этом отчете (рис. 1). После полной очистки РНК, сопровождаемой обработкой ДНКазой образцов клеточной линии, и проверкой качества с помощью гель-электрофоре?.......

Discussion

В этом протоколе детальный конвейер обогащения поли(А), бисульфитной конверсии и подготовки библиотеки был достигнут за счет использования стандартизированных компонентов. Дальнейший секвенированный анализ позволил идентифицировать мРНК-5-метилцитозин в интересующих образцах.

Disclosures

У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным советом по науке и технологиям Тайваня. [НСТК 111-2314-Б-006-003]

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Agilent 2100 Electrophoresis Bioanalyzer SystemAgilent, Santa Clara, CARNA quality detection
AMpure XP beadsBeckman CoulterA63881purify DNA
Bioanalyzer DNA high sensitivity kitAgilent, Santa Clara, CA5067-4626DNA quality dection
Bioanalyzer RNA 6000 Pico kitAgilent, Santa Clara, CA5067-1513RNA quality dection
DiaMag02 - magnetic rackDiagenode, Denville, NJB04000001assist library preparation
DiaMag1.5 - magnetic rackDiagenode, Denville, NJB04000003assist poly(A) RNA purificaion
Dynabeads mRNA DIRECT purification kitThermo Fisher Scientific, Waltham, MA61011poly(A) RNA purificaion; Wash Buffer 1 and Wash Buffer 2
EthanolJ.T.Baker64-17-5
EZ RNA methylation kitZymo, Irvine, CAR5002bisulfite treatment
Firefly luciferase mRNAPromega, Madison, WI, USAL4561spike in control seqeunce 
KAPA Library Quantification KitsRoche, SwitzerlandKK4824library quantification
Nanodrop spectrophotometerThermo Fisher Scientific, Waltham, MATotal RNA quantity detection
NEBNext multiplex Oligos for illumina (index Primer set1)New England Biolabs, Ipswich, MAE7335Slibrary preparation
NEBNext Ultra figure-materials-2064 Directional RNA Library Prep Kit for IlluminaNew England Biolabs, Ipswich, MAE7760Slibrary preparation
Nuclease-free WaterThermo Fisher ScientificAM9932
P2 pipetmanThermo Fisher Scientific, Waltham, MA4641010
Qubit 2.0 fluorometer Thermo Fisher Scientific, Waltham, MARNA quantity detection
Qubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32854DNA quantity detection
Qubit RNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32852RNA quantity detection

References

  1. Boccaletto, P., et al. MODOMICS: a database of RNA modification pathways. 2021 update. Nucleic Acids Research. 50, D231-D235 (2022).
  2. Bohnsack, K. E., Höbartner, C., Bohnsack, M. T.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

55

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved