Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Quando integrada com uma placa de cabeça e um design óptico compatível com microscópios de um e dois fótons, a lente de microprisma apresenta uma vantagem significativa na medição de respostas neurais em uma coluna vertical sob diversas condições, incluindo experimentos bem controlados em estados fixos na cabeça ou tarefas comportamentais naturais em animais em movimento livre.

Abstract

Com o avanço da microscopia multifóton e das tecnologias moleculares, a imagem por fluorescência está crescendo rapidamente para se tornar uma abordagem poderosa para estudar a estrutura, a função e a plasticidade dos tecidos cerebrais vivos. Em comparação com a eletrofisiologia convencional, a microscopia de fluorescência pode capturar a atividade neural, bem como a morfologia das células, permitindo registros de longo prazo das populações de neurônios identificadas em resolução unicelular ou subcelular. No entanto, imagens de alta resolução normalmente requerem uma configuração estável e fixa na cabeça que restringe o movimento do animal, e a preparação de uma superfície plana de vidro transparente permite a visualização de neurônios em um ou mais planos horizontais, mas é limitada no estudo dos processos verticais que atravessam diferentes profundidades. Aqui, descrevemos um procedimento para combinar uma fixação da placa cefálica e um microprisma que fornece imagens multicamadas e multimodais. Este preparo cirúrgico não apenas dá acesso a toda a coluna do córtex visual do camundongo, mas permite imagens de dois fótons em uma posição fixa da cabeça e imagens de um fóton em um paradigma de movimento livre. Usando essa abordagem, pode-se amostrar populações celulares identificadas em diferentes camadas corticais, registrar suas respostas sob estados de cabeça fixa e movimento livre, e rastrear as mudanças de longo prazo ao longo de meses. Assim, este método fornece um ensaio abrangente dos microcircuitos, permitindo a comparação direta das atividades neurais evocadas por estímulos bem controlados e sob um paradigma comportamental natural.

Introduction

O advento da imagem fluorescente in vivo de dois fótons 1,2, combinando as novas tecnologias em sistemas ópticos e indicadores de fluorescência geneticamente modificados, surgiu como uma técnica poderosa em neurociência para investigar a intrincada estrutura, função e plasticidade no cérebro vivo 3,4. Em particular, esta modalidade de imagem oferece uma vantagem incomparável sobre a eletrofisiologia tradicional por capturar tanto a morfologia quanto as atividades dinâmicas dos neurônios, facilitando o rastreamento em longo prazo dos neurônios identificados....

Protocol

Todos os experimentos foram conduzidos de acordo com o UK Animals (Scientific Procedures) Act 1986 sob licenças pessoais e de projeto aprovadas e emitidas pelo Ministério do Interior do Reino Unido após revisão ética apropriada. Linhagens transgênicas adultas CaMKII-TTA; GCaMP6S-TRE21 foram criados e seus filhotes utilizados no experimento. Para a segurança dos experimentadores e a manutenção de condições estéreis, todos os procedimentos foram realizados em condições assépticas e co.......

Representative Results

O método de conduzir imagens crônicas de cálcio in vivo multicamadas da mesma população neuronal durante um período de várias semanas, usando modalidades de imagem de um e dois fótons, sob condições de movimento livre e cabeça fixada foi mostrado. Aqui, a capacidade de identificar populações neuronais correspondentes sob imagens de um fóton enquanto o animal explorava uma arena aberta no escuro foi demonstrada (Figura 7A). Traços de cálcio foram extraídos dos neurô.......

Discussion

Aqui, mostramos a capacidade de observar e comparar diretamente neurônios em condições de cabeça fixa e movimento livre nas mesmas populações neurais. Embora tenhamos demonstrado a aplicação no córtex visual, este protocolo pode ser adaptado a uma infinidade de outras áreas cerebrais, tanto áreas corticais quanto núcleos profundos24,25,26,27,28, bem como outras configurações comportamentais e de

Acknowledgements

Agradecemos à Sra. Charu Reddy e ao Professor Matteo Carandini (Cortex Lab) por seus conselhos sobre protocolo cirúrgico e compartilhamento de cepa de camundongo transgênico. Agradecemos ao Dr. Norbert Hogrefe (Inscopix) pela orientação e auxílio no desenvolvimento da cirurgia. Agradecemos à Sra. Andreea Aldea (Sun Lab) por sua assistência com a configuração cirúrgica e processamento de dados. Este trabalho foi apoiado pela Moorfields Eye Charity.

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9% Sodium Chloride solution for infusion (Vetivex 11) 250mlDechra20091607Saline for hydration and drug reconsitution
18004-1 Trephine 1.8mm diameter burFST18004-18Drill bit
1ml syringeTerumoMDSS01SE1ml syringe
23G x 5/8 inch 6% LUER needleTerumoNN-2316R23G needle
71000 Automated stereotaxic apparatus w/ built-in softwareRWD-RWD
Absorbable Haemostatic Gelatin Sponge (10x10x10mm)SurgisponSSP-101010gel-foam
Alcohol pads 70% isopropyl alcoholBraun9160612Alcohol pads
Aluminium foilAny retailer-Foil to cover eyes during surgery
Articifical Cerebrospinal Fluid Tocris Bioscience a Bio-Techne Brand3525/25MLACSF
Automated microinjection pumpWPI8091
Betadine solution (10% iodinated Povidone) 500mlVidene/Ecolab3030440Betadine
Bruker Ultime 2Pplus (customised)Bruker-Two-photon imaging system 
Cardiff AldasorberVet-TechAN006Anaesthesia absorber
CFI S Plan Fluor ELWD ADM 20XCNikonMRH4823020x objective lens
Compact Anaesthesia system - single gas - isoflurane K/F, with oxygen concentrator model: ZY-5AC and scavenging unitVet-TechAN001Compact anaesthesia system 
Contec Prochlor Aston PharmaAP2111L1Disinfectant (hypochlorous acid)
Dexamethasone Sodium Phosphate Injection, USP, 4mg/ml, NDC: 0641-6145-25HikmaCovetrus:70789Dexamethasone
Dissecting Knife, cutting edge 4mm, thickness 0.5mm, stainless steelFine Science Tools10055-12Knife for incisino of cortex
Dual-Sided, Non-Puncture Mouse & Neonatal Rat Ear BarsStoelting51649Ear bar
Dummy microscopeInscopixDummy microscopeTo help with implantation
Ethanol (100%) VWR40-1712-25Used to make 70% ethanol 
Fisherbrand Nitrile Indigo Disposable Gloves PPE Cat IIIFischerScientific17182182Gloves
Homeothermic Monitor 50-7222-FHarvard Apparatus50-7222-FHomeothermic monitoring system/heating pad
Image processing softwareImageJ-Image processing software
Inscopix Data Processing Software (IDPS)Inscopix-One-photon calcium imaging processing software
Insight Duals-232, S/N 2043InSightInsight Spectra X3Two-photon imaging laser
IsoFlo 250ml 100% w/w inhalationZoetisWM 42058/4195Isoflurane
Kwik-Sil Low Toxicity Silicone AdhesiveWorld Precision Intruments (WPI)KWIK-SILSilicone adhesive
MICROMOT mains adapter NG 2/S, w/ Drill unit 60/EPROXXONNO 28 515Handheld drill
nVoke Integrated Imaging and Optogenetics System packageInscopix-One-photon Imaging system and software
ProView Implant KitInscopixProView Implant KitDummy microscope, stereotaxic arm and attachment 
ProView Prism ProbeInscopix1050-002203Microprism lens
Rimadyl (50mg/ml)ZoetisVM 42058/4123Carprofen 
Stereotaxis Microscope on Articulated arm with table clampWPIPZMTIII-AAC Microscope
Super-Bond Universal kit, SUN MedicalPrestige-DentalK058EAdhesive cement
Two-photon calcium image softwareSuite2P-Two-photon calcium imaging processing software
VapouriserVet-Tech-Isoflurane vapouriser
Xailin Lubricating Eye Ointment 5gXailin-NightMLG/28/1551Ophthalmic ointment 

References

  1. Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. Two-photon laser scanning fluorescence microscopy. Science. 248 (4951), 73-76 (1990).
  2. Svoboda, K., Yasuda, R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications t....

Explore More Articles

Este m s em JoVEEdi o 203c rtex visuallente de microprismacolunas corticaisimagem cr nicaanimal acordadocabe a fixamovimento livreimagem de dois f tonsdin mica do c lcio

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved