이 연구는 대만 과학기술부(Ministry of Science and Technology)의 지원을 받았으며 보조금 번호는 MOST 111-2611-M-291-005 및 MOST 111-2811-M-291-001입니다.

1. 거는 산호 colonies in ex situ 양식 탱크
<ol><li>산호 군락을 걸 준비를 위해 배양 탱크를 가로질러 노치 막대(길이 x 너비 x 높이: 75cm x 1cm x 3cm)를 배치합니다. 참고: 이 실험에 사용된 행잉 바는 맞춤 제작되었지만 배양 탱크 상단을 가로질러 안정적인 방식으로 배치할 수 있고 산호를 담을 수 있을 만큼 충분히 강하다면 돌출된 나사가 있는 간단한 PVC 파이프(즉, 노치 역할)로 ?...

Pocillopora acuta의 Ex Situ 배양 및 효과적인 수유 기술

온도와 먹이가 산호 번식에 미치는 영향에 대한 이 예비 평가는 뚜렷한 처리 조건에서 배양된 군체 간의 번식 생산량과 시기의 차이를 보여주었습니다. 또한, 산호 군락에 아르테미아 나우플리(Artemia nauplii)를 먹이는 것은 따뜻한 온도(28°C)뿐만 아니라 상대적으로 시원한 온도(24°C)에서도 효과적인 것으로 나타났습니다. 이러한 결합된 발견은 현장 양식 시스템에서 (P. acuta를 ?...

전 세계적으로 많은 산호초 생태계가 기후 변화로 인한 고온 스트레스의 결과로 손실되고 악화되고 있습니다 1,2. 산호 백화 현상(즉, 산호-조류 공생의 붕괴3)은 과거에는 비교적 드문 것으로 여겨졌으나,4 현재는 더 빈번하게 발생하고 있다.5 매년 백화 현상이 세기 중반에서 후반까지 많은 지역에서 발생할 것으로 예상된다6,7. 백화 현상 사이의 중간 기간의 이러한 단축은 산호초 복원력의 능력을 제한할 수 있다8. 산호 군락에 대한 고온 스트레스의 직접적인 영향(예: 조직 손상9; 에너지 고갈10)은 산호초 규모 수준에서의 간접적인 영향과 본질적으로 연관되어 있으며, 그 중 번식/모집 능력의 감소가 특히 우려된다11. 이는 예를 들어, 적극적인 in situ 모집 강화(예: 리프 파종(reef seeding)12), 산호 복원(coral restoration)13 및 제자리 시스템(ex situ system)14에서 번식을 유도하기 위한 생식 단서의 시뮬레이션을 탐구하는 다양한 응용 연구에 박차를 가했다. 이러한 적극적인 개입을 보완하는 것은 고온 스트레스 하에서 산호의 종속영양 섭식(heterotrophic feeding)의 이점에 대한 최근의 인식과 번식16에서 먹이 공급이 할 수 있는 역할에 대한 탐구이다.
종속영양 섭식은 산호의 성능에 영향을 미치는 것으로 알려져 있으며17 특히 산호 성장(18,19)과 열 저항성 및 복원력(20,21)의 증가와 관련이 있다. 그러나, 종속영양의 이점은 산호 종들 사이에서22 어디에나 있지 않으며, 섭취되는 음식의 종류23 및 빛 노출의 수준24에 따라 달라질 수 있다. 산호 번식의 맥락에서, 종속영양 섭식은 종속영양 섭식 후 더 높은25 및 더 낮은26 번식 능력의 관찰과 함께 다양한 결과를 보여주었습니다. 다양한 온도에서 종속영양 섭식이 산호 번식에 미치는 영향은 거의 평가되지 않지만, 온대 산호 Cladocora caespitosa에서는 종속영양이 저온 조건에서 번식에 더 중요한 것으로 밝혀졌다27. 온도의 역할과 번식 생산량에 대한 먹이에 대한 더 나은 이해는 특정 산호초(예: 높은 식량 가용성과 관련된 산호초28)가 기후 변화 하에서 더 높은 모집 능력을 가지고 있는지 여부를 결정하기 위해 필요할 수 있다.
번식 출력과 유사하게, 산호의 번식 시기와 온도와 섭식의 영향은 온난화되는 바다에서 모집 성공에 중요한 고려 사항임에도 불구하고 비생물적/생물적 조건과 번식의 동기화가 상대적으로 덜 연구된 상태로 남아 있다29. 따뜻한 온도는 실험실에서 수행된 산호 열 조절 연구에서 더 일찍 번식하는 것으로 나타났으며(30), 이는 계절31에 걸쳐 자연 산호초에서 채취한 산호에서도 관찰되었습니다. 그러나 흥미롭게도, 최근 현장 유동 시스템( ex situ flow-through system)에서 1년 동안 배양된 먹이 산호(faed corals)에서는 이와 반대의 경향을 관찰했다(즉, 번식은 더 시원한 겨울 기온에서 달의 주기 초기에 발생했고, 더 따뜻한 여름 기온에서 달의 주기에서 더 늦게 발생했다)32. 이 대조적인 결과는 번식 시기가 풍부한 에너지 자원과 관련된 조건 하에서 전형적인 패턴에서 벗어날 수 있음을 시사한다.
다양한 온도 시나리오에서 장기적으로 통제된 실험은 경화성 산호의 번식에 대한 종속영양의 영향을 더 잘 이해하는 데 기여할 수 있습니다. 그러나 여러 번식 주기 동안 현장 조건에서 번식하는 산호 군체를 유지하는 것은 어려울 수 있습니다(그러나 이전 연구32,33 참조). 본원에서, 유동 양식 시스템에서 육화 산호(Pocillopora acuta)의 활성 섭식(먹이 공급원: Artemia nauplii) 및 장기 배양을 위한 간단하고 효과적인 기술이 설명됩니다. 그러나 설명된 모든 기술은 재순환 양식 시스템에도 사용할 수 있습니다. 이러한 기술을 입증하기 위해 24 °C 및 28 °C에서 "먹이를주는"및 "먹이를주지 않은"처리하에서 산호 군집의 번식 생산량과 타이밍을 예비 비교했습니다. 이 온도는 대만 남부의 겨울과 여름에 각각 해수 온도를 근사화하기 위해 선택되었습니다30,34; 열 스트레스에 대한 산호 반응을 테스트하는 대신 장기적인 현장 배양을 촉진하는 것이 이 실험의 주요 목표였기 때문에 더 높은 온도를 선택하지 않았습니다. 또한, 섭식 세션 전후의 Artemia nauplii의 밀도를 정량화하여 두 온도 처리에서 종속영양 섭식의 타당성을 비교했습니다.
구체적으로, 대만 남부에 있는 국립 해양 생물학 및 수족관 박물관(National Museum of Marine Biology & Aquarium)의 연구 시설에 있는 유동 탱크에서 P. acuta(평균 총 선형 연장 ± 표준 편차: 21.3cm ± 2.8cm)의 24개 콜로니를 얻었습니다. Pocillopora acuta는 방송 산란이지만 일반적으로 번식 전략을 모두 가지고 있는 일반적인 산호 종입니다35,36. 이 산호들의 모체는 원래 다른 실험32를 위해 약 2년 전에 아울렛 암초(21.931°E, 120.745°N)에서 수집되었다. 결과적으로, 본 실험에 사용된 산호 군집은 현장 배양 조건 하에서 평생을 동안 사육되었다. 구체적으로, 콜로니는 주변 온도와 250μmol 양자 m−2·s−1에서 12시간 : 12시간 빛: 암흑 주기에 노출되고 일주일에 두 번 Artemia nauplii를 먹였습니다. 우리는 이 장기간의 현장 외 배양이 이 실험의 처리 조건에 군체가 반응하는 방식에 영향을 미쳤을 수 있다는 것을 알고 있습니다. 그러므로, 우리는 여기서 일차적인 목적이 산호 번식에 대한 온도와 먹이의 영향을 평가한 응용 예를 보여줌으로써 설명된 기술이 현장에서 산호를 배양하는 데 어떻게 효과적으로 사용될 수 있는지 설명하는 것임을 강조하고 싶습니다.
산호 군집은 6개의 유동 시스템 배양 탱크(탱크 내부 길이 x 너비 x 높이: 175cm x 62cm x 72cm, 탱크 조명 체제: 12시간:12시간 빛:250μmol 양자 m−2·s−1)에 고르게 분포되었습니다(그림 1A). 탱크 중 3 개의 온도는 28 °C로 설정되었고 다른 3 개의 탱크의 온도는 24 °C로 설정되었습니다. 각 탱크에는 10분마다 온도를 기록하는 로거가 있었습니다( 재료 표 참조). 온도는 냉각기 및 히터를 사용하여 각 탱크에서 독립적으로 제어되었으며 물 순환은 유량 모터를 사용하여 유지되었습니다( 재료 표 참조). 각 탱크의 콜로니의 절반(n = 2개의 콜로니/탱크)은 일주일에 두 번 Artemia nauplii를 먹였고 다른 콜로니는 먹이를 주지 않았습니다. 각 공급 세션은 4시간 동안 지속되었으며 두 개의 독립적인 온도별 공급 탱크에서 수행되었습니다. 먹이를 주는 동안, 먹이를 주지 않은 집체를 포함하여 모든 집체를 먹이 탱크로 이동시켜 탱크 사이에서 집체를 이동하는 잠재적인 스트레스 효과를 표준화했습니다. 먹이를 먹은 집락과 먹이를 주지 않은 처리의 군집은 온도별 공급 탱크 내의 메쉬 프레임을 사용하여 자체 구획에 배치되어 먹이를 먹은 상태의 집락만 먹이를 받았습니다. 산호 번식 생산량과 타이밍은 매일 오전 09:00에 밤새 유충 수집 용기에 방출된 유충의 수를 계산하여 각 군체에 대해 평가되었습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Artemia cysts&#160;</td>
			<td>Supreme plus</td>
			<td>NA</td>
			<td>Food source&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chiller</td>
			<td>Resun</td>
			<td>CL650</td>
			<td>To cool down water temperature if needed</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Conductivity portable meter</td>
			<td>WTW</td>
			<td>Cond 3110</td>
			<td>To measure salinity</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrichment diets</td>
			<td>Omega</td>
			<td>NA</td>
			<td>Used in Artemia cultivation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fishing line</td>
			<td>Super</td>
			<td>Nylon monofilament</td>
			<td>To hang the coral colonies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flow motors</td>
			<td>Maxspect</td>
			<td>GP03</td>
			<td>To create water flow</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heater 350 W</td>
			<td>ISTA</td>
			<td>NA</td>
			<td>Heaters used in tanks</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HOBO pendant temperature logger</td>
			<td>Onset Computer</td>
			<td>UA-002-08</td>
			<td>To record water temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LED lights</td>
			<td>Mean Well</td>
			<td>FTS: HLG-185H-36B</td>
			<td>NA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light portable meter</td>
			<td>LI-COR</td>
			<td>LI-250A</td>
			<td>Device used with light sensor to measure light intensity in PAR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light sensor</td>
			<td>LI-COR</td>
			<td>LI-193SA</td>
			<td>NA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plankton net 100 &#181;m mesh size</td>
			<td>Omega</td>
			<td>NA</td>
			<td>To collect larvae and artemia&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primary pump 6000 L/H</td>
			<td>Mr. Aqua</td>
			<td>BP6000</td>
			<td>To draw water from tanks into chiller</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propeller-type current meter</td>
			<td>KENEK</td>
			<td>GR20</td>
			<td>Device used with propeller-type detector to measure flow rate</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propeller-type detector</td>
			<td>KENEK</td>
			<td>GR3T-2-20N</td>
			<td>NA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereo microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>Stemi 2000-C&#160;</td>
			<td>To count the number of artemia&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temperature controller 1000 W</td>
			<td>Rep Park</td>
			<td>O-RP-SDP-1</td>
			<td>To set and maintain water temperature</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

effective techniques for the feeding and ex situ culture of a brooding scleractinian coral, pocillopora acuta

기후 변화는 전 세계적으로 산호의 생존, 성장 및 모집에 영향을 미치고 있으며, 향후 수십 년 동안 산호초 생태계에서 산호의 풍부함과 군집 구성에 큰 변화가 있을 것으로 예상됩니다. 이러한 산호초 황폐화에 대한 인식은 다양한 새로운 연구 및 복원 기반 적극적인 개입을 촉발했습니다. Ex situ 양식업은 강력한 산호 배양 프로토콜(예: 장기 실험에서 건강 및 번식 개선)의 수립과 일관된 육추 공급(예: 복원 프로젝트에 사용)을 통해 지원 역할을 할 수 있습니다. 여기에서는 잘 연구된 흔한 산호인 Pocillopora acuta를 예로 들어 알을 낳는 경피성 산호의 먹이 주기 및 현장 배양을 위한 간단한 기술을 간략하게 설명합니다. 이 접근법을 입증하기 위해 산호 군락을 서로 다른 온도(24°C 대 28°C)와 먹이 처리(먹이 대 먹이지 않음)에 노출시켰고, 번식 생산량과 타이밍, 그리고 두 온도 모두에서 산호에 아르테미아 나우플리를 먹이는 타당성을 비교했습니다. 번식 생산량은 군체에 걸쳐 높은 변동을 보였으며 온도 처리 간에 관찰된 다른 경향을 보였습니다. 24°C에서 먹이를 먹은 군집은 먹이를 먹지 않은 군체보다 더 많은 유충을 생산했지만 28°C에서 배양된 군체에서는 그 반대가 발견되었습니다. 모든 군체는 보름달 이전에 번식했으며, 번식 시기의 차이는 28°C 처리에서 먹이를 먹지 않은 군체와 24°C 처리에서 먹이를 먹은 군체 사이에서만 발견되었습니다(평균 번식 ± 표준 편차: 각각 6.5 ± 2.5 및 11.1 ± 2.6). 산호 군락은 두 처리 온도 모두에서 Artemia nauplii를 효율적으로 먹었습니다. 이러한 제안된 먹이 및 배양 기술은 산호 스트레스의 감소와 비용 효율적이고 맞춤형 방식으로 생식 수명을 촉진하는 데 중점을 두고 있으며, 유동 및 재순환 양식 시스템 모두에 다양한 적용 가능성이 있습니다.

Many coral reef ecosystems globally are being lost and degraded as a result of high-temperature stress driven by climate change1,2. Coral bleaching (i.e., the breakdown of the coral-algal symbiosis3) was considered relatively rare in the past4 but is now occurring more frequently5, with annual bleaching expected to occur in many regions by&#160;mid to late century6,7. This shortening of the interim period between bleaching events can limit the capacity for reef resilience8. The direct impacts of high-temperature stress on coral colonies (e.g., tissue damage9; energy depletion10) are intrinsically linked to indirect impacts at the reef-scale level, of which a reduction in reproductive/recruitment capacity is of particular concern11. This has spurred a range of applied research exploring, for example, the active in situ enhancement of recruitment (e.g., reef seeding12), new technologies for scaling-up coral restoration13, and the simulation of reproductive cues to induce reproduction in ex situ systems14. Complementary to these active interventions are the recent recognition of the advantages of heterotrophic feeding in corals under high-temperature stress15 and the exploration of the role that food provision may play in reproduction16.
Heterotrophic feeding is known to influence the performance of corals17 and has been specifically linked to increased coral growth18,19, as well as thermal resistance and resilience20,21. Yet, the benefits of heterotrophy are not ubiquitous among coral species22 and can differ based on the type of food being consumed23, as well as the level of light exposure24. In the context of coral reproduction, heterotrophic feeding has shown variable results, with observations of higher25 as well as lower26 reproductive capacity following heterotrophic feeding being reported. The influence of heterotrophic feeding on coral reproduction across a spectrum of temperatures is rarely assessed, yet in the temperate coral Cladocora caespitosa, heterotrophy was found to be more important for reproduction under lower temperature conditions27. A better understanding of the role of temperature and feeding on reproductive output is likely needed to determine whether specific reefs (e.g., reefs associated with high food availability28) possess a higher capacity for recruitment under climate change.
Similar to reproductive output, the effect of temperature and feeding on reproductive timing in corals remains relatively understudied, despite the synchronization of reproduction with abiotic/biotic conditions being an important consideration for recruitment success in a warming ocean29. Warmer temperatures have been shown to result in earlier reproduction in coral thermal conditioning studies conducted in the lab30, and this has also been observed in corals collected from natural reefs across seasons31. Yet, interestingly the opposite trend was recently observed in fed corals cultured over the course of 1 year in an ex situ flow-through system (i.e., reproduction occurred earlier in the lunar cycle at cooler winter temperatures and later in the lunar cycle at warmer summer temperatures)32. This contrasting result suggests that reproductive timing may stray from typical patterns under conditions associated with abundant energetic resources.
Long-term controlled experiments under different temperature scenarios could contribute to a better understanding of the influence of heterotrophy on reproduction in scleractinian corals. Maintaining reproducing coral colonies under ex situ conditions for multiple reproductive cycles, however, can be challenging (but see previous research32,33). Herein, straightforward and effective techniques for the active feeding (food source: Artemia nauplii) and long-term culture of a brooding coral (Pocillopora acuta) in a flow-through aquaculture system are described; yet, it should be noted that all the techniques described can also be used in recirculating aquaculture systems. To demonstrate these techniques, a preliminary comparison of the reproductive output and timing of coral colonies held at 24 &#176;C and 28 &#176;C under &#34;fed&#34; and &#34;unfed&#34; treatments was conducted. These temperatures were chosen to approximate seawater temperatures in winter and summer, respectively, in southern Taiwan30,34; a higher temperature was not chosen because the promotion of long-term ex situ culture, rather than testing coral response to thermal stress, was a primary goal of this experiment. Further, the density of Artemia nauplii before and after the feeding sessions was quantified&#160;to compare the feasibility of heterotrophic feeding at both temperature treatments.
Specifically, 24 colonies of P. acuta (mean total linear extension &#177; standard deviation: 21.3 cm &#177; 2.8 cm) were obtained from flow-through tanks at the research facilities of the National Museum of Marine Biology &#38; Aquarium, southern Taiwan. Pocillopora&#8203;&#160;acuta is a common coral species that possesses both a broadcast spawning, but&#160;typically brooding reproductive strategy35,36. The parent colonies of these corals were originally collected from the Outlet reef (21.931&#176;E, 120.745&#176;N) approximately 2 years earlier for another experiment32. Consequently, the coral colonies used in the present experiment had been reared for their entire lives under ex situ culture conditions; specifically, the colonies were exposed to ambient temperature and a 12 h:12 h light: dark cycle at 250 &#181;mol quanta m&#8722;2&#183;s&#8722;1 and were fed Artemia nauplii twice per week. We recognize that this long-term ex situ culture could have affected how the colonies responded to the treatment conditions in this experiment. We, therefore, would like to emphasize that the primary aim here is to illustrate how the described techniques can be effectively used to culture corals ex situ by demonstrating an applied example wherein the effects of temperature and feeding on coral reproduction were assessed.
Coral colonies were evenly distributed across six flow-through system culture tanks (tank interior length x width x height: 175 cm x 62 cm x 72 cm; tank light regime: 12 h:12h light:dark cycle at 250 &#181;mol quanta m&#8722;2&#183;s&#8722;1) (Figure 1A). The temperature in three of the tanks was set at 28 &#176;C, and the temperature in the other three tanks was set at 24 &#176;C; each tank had a logger that recorded the temperature every 10 min (see the Table of Materials). The temperature was independently controlled in each tank using chillers and heaters, and water circulation was maintained using flow motors (see the Table of Materials). Half of the colonies in each tank (n = 2 colonies/tank) were fed Artemia nauplii twice per week, while the other colonies were not fed. Each feeding session was 4 h in duration and was conducted in two independent temperature-specific feeding tanks. During feeding, all the colonies were moved into the feeding tanks, including the unfed colonies, to standardize the potential stress effect of moving the colonies between the tanks. The colonies in the fed and unfed treatments were positioned in their own compartment using a meshed frame within the temperature-specific feeding tanks so that only the colonies in the fed condition received food. The coral reproductive output and timing were assessed for each colony daily at 09:00 A.M. by counting the number of larvae that had been released into the larval collection containers overnight.

저자 스포트라이트: 기후 변화 저항성, 현장 양식 및 번식 전략을 탐구하여 산호 연구 발전 

우울한 Scleractinian 산호, Pocillopora acuta의 먹이 및 Ex Situ 배양을 위한 효과적인 기술

Our lab is interested in understanding climate change, resistance, and resilience in coral and exploring ex-situ aquaculture's role. Specifically, we aim to cultivate coral in a lab that can be used for restoration and research efforts. Over the past few years, we have seen major advances in coral ex-situ aquaculture, including being able to induce reproduction, as well as complete the entire coral life cycle in both broadcast spawning and brooding corals.Maintaining the long-term reproduction of brooding corals in the lab is usually quite challenging, with reproduction typically stopping after a few months. However, we found that if we culture the colonies together in mesocosm tanks and provide them with supplemental food, they can continue to produce larvae each month. In general, we have a good understanding of how feeding and temperature independently affect coral reproduction, but their interactive effects remain relatively understudied.For example, heterotrophy may have different benefits, or limitations at warmer compared to cooler temperatures. Using the protocols that we have described, we can effectively feed and culture the colonies long-term in X2 aquaculture systems, and can ultimately track the reproduction at the colony level to help infer the influence of heterotrophy on reproduction, and recruitment in a warming ocean.

설명된 프로토콜은 (1) 별개의 먹이 및 온도 처리 중에서 개별 산호 군집의 번식 생산량 및 타이밍을 비교하고 (2) 다양한 온도에서 Artemia nauplii 먹이의 타당성 평가를 허용했습니다. 여기에서, 발견에 대한 간략한 개요가 제공되지만, 이 실험의 단기적 특성(즉, 단 하나의 번식 주기)과 현장 조건에 적응된 산호 군집의 사용으로 인해 산호 번식에 대한 온도와 섭식의 보고된 효과에 대?...

Watch this Scientific Journal Video about Advancing Coral Research by Exploring Climate Change Resistance, Ex Situ Aquaculture, and Reproduction Strategies at JoVE.com

기후 변화는 전 세계적으로 산호초 생태계에 영향을 미치고 있습니다. 현장 양식 시스템에서 공급되는 산호는 복원 및 연구 노력을 지원하는 데 도움이 될 수 있습니다. 여기에서, 부 화하는 경피성 산호의 장기적인 유지를 현장에서 촉진하는 데 사용될 수 있는 먹이 및 산호 배양 기술이 요약되어 있습니다.

Climate change is affecting the survival, growth, and recruitment of corals globally, with large-scale shifts in abundance and community composition ...

우리 연구실은 산호의 기후 변화, 저항성 및 회복력을 이해하고 현장 외 양식의 역할을 탐구하는 데 관심이 있습니다. 구체적으로는 복원과 연구에 활용할 수 있는 실험실에서 산호를 기르는 것을 목표로 하고 있습니다. 지난 몇 년 동안 우리는 번식을 유도할 수 있을 뿐만 아니라 방송 산란 및 부화 산호 모두에서 전체 산호 수명 주기를 완료할 수 있는 것을 포함하여 산호 현장 양식의 주요 발전을 보았습니다.실험실에서 새끼 산호의 장기 번식을 유지하는 것은 일반적으로 매우 어려우며 번식은 일반적으로 몇 달 후에 중단됩니다. 그러나 우리는 중우주 수조에서 군체를 함께 배양하고 보충 먹이를 제공하면 매달 유충을 계속 생산할 수 있다는 것을 발견했습니다. 일반적으로 우리는 먹이와 온도가 산호 번식에 독립적으로 어떻게 영향을 미치는지에 대해 잘 이해하고 있지만, 상호 작용 효과는 상대적으로 연구가 부족합니다.예를 들어, 종속영양은 더 낮은 온도에 비해 더 따뜻한 온도에서 다른 이점이나 한계를 가질 수 있습니다. 우리가 설명한 프로토콜을 사용하여 X2 양식 시스템에서 장기적으로 군체를 효과적으로 먹이고 배양할 수 있으며, 궁극적으로 군체 수준에서 번식을 추적하여 온난화되는 바다에서 번식 및 모집에 대한 종속영양의 영향을 추론하는 데 도움이 될 수 있습니다.

우울한 Scleractinian 산호, Pocillopora acuta의 먹이 및 Ex Situ 배양을 위한 효과적인 기술

Abstract