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* These authors contributed equally
Aqui, apresentamos um protocolo para oferecer alternativas rápidas, fáceis e confiáveis de coleta de sangue para o modelo de rato. Descrevemos três diferentes métodos de coleta de sangue de acordo com o contexto: punção da veia caudal sob anestesia ou em um animal consciente e punção da veia peniana dorsal sob anestesia.
Amostras de sangue são necessárias na maioria dos desenhos experimentais em animais para avaliar vários parâmetros hematológicos. Este trabalho apresenta dois procedimentos para coleta de sangue em ratos: a punção lateral da veia caudal e a punção da veia peniana dorsal, que oferecem vantagens significativas em relação a outras técnicas descritas anteriormente. Este estudo mostra que esses dois procedimentos permitem uma amostragem rápida (menos de 10 min) e produzem volumes sanguíneos suficientes para a maioria dos ensaios (202 μL ± 67,7 μL). A punção da veia peniana dorsal deve ser feita sob anestesia, enquanto a punção lateral da veia caudal pode ser feita em um animal consciente e contido.
A alternância dessas duas técnicas, portanto, possibilita a coleta de sangue em qualquer situação. Embora seja sempre recomendado que um operador seja assistido durante um procedimento para garantir o bem-estar animal, essas técnicas exigem apenas um único operador, ao contrário da maioria dos métodos de coleta de sangue que exigem dois. Além disso, enquanto esses métodos descritos anteriormente (por exemplo, bastão jugular, coleta de sangue da veia subclávia) requerem treinamento prévio extensivo para evitar danos ou morte do animal, a punção da veia caudal e da veia peniana dorsal raramente é fatal. Por todas essas razões, e de acordo com o contexto (por exemplo, para estudos incluindo ratos machos, durante o período perioperatório ou pós-operatório imediato, para animais com veias caudais finas), ambas as técnicas podem ser usadas alternadamente para permitir repetidas coletas de sangue.
A coleta de sangue é necessária para a maioria dos estudos em animais, tanto in vivo quanto in vitro. Em ratos, como a frequência e a quantidade de coleta de sangue podem ser significativas, é útil ter diferentes alternativas para coleta. Vários métodos foram descritos em estudos anteriores.
As técnicas mais utilizadas são a punção da veia caudal e a coleta de sangue da veia safena. A amostragem da veia da cauda é adequada para todas as estirpes de ratos. Com o treinamento adequado, o procedimento é simples de ser realizado e causa o mínimo de sofrimento ao animal1. Da mesma forma, a coleta de sangu....
Os procedimentos foram realizados em ratos Lewis machos com 3 meses de idade, cada um pesando de 300-400 g. Foram incluídos 24 animais, com três condições de punção: 12 ratos foram submetidos à punção da veia caudal sem anestesia (grupo TV sem anestesia) e outros 12 ratos foram anestesiados para serem submetidos à punção da veia caudal (grupo TV com anestesia) e punção da veia peniana (grupo VP com anestesia). Todos os procedimentos foram aprovados e respeitaram as diretrizes da Comissão Institucional de C.......
O sucesso foi definido como uma coleta de sangue que produziu pelo menos 100 μL de sangue em menos de 10 min (desde o momento da punção até o final da coleta de sangue), e falha foi definida como uma coleta de sangue que produziu menos de 100 μL de sangue ou levou mais de 10 min para recuperar o volume de sangue necessário. Foi permitido um máximo de 250 μL de sangue por amostra. As análises estatísticas foram realizadas utilizando-se o teste ANOVA one-way para comparações múltiplas e o teste qui-quadrado. O.......
A punção da veia caudal é um método eficiente para obter sangue de um rato consciente. No entanto, quando um animal está sob anestesia, o efeito do isoflurano pode levar a espasmos vasculares e tornar a punção da veia caudal inadequada11. Como mostrado neste estudo, uma alternativa nessa situação é coletar sangue da veia peniana, que é mais bem sucedida e produz um volume significativamente maior de sangue em menos tempo. É importante lembrar que, no caso de falha com este método na p.......
Este trabalho foi financiado pela Shriners Children's Boston (B. E. U., K.U., C.L.C.). L.C. é financiado por "La Bourse des Gueules Cassées", "La Bourse Année Recherche" e "La Bourse de l'Amicale des Anciens Internes des Hôpitaux de Paris". Y.B. é financiado por "La Bourse des Gueules Cassées". Y.B. e I.F.v.R. são financiados pelos Shriners Hospitals for Children (Fellowships ID é #84308-BOS-22 #84302-BOS-21 respectivamente). Este material é parcialmente baseado em trabalho apoiado pela National Science Foundation sob o Grant No. CEE 1941543. O apoio parcial dos Institutos Nacionais de Saúde dos EUA (R01EB028782, R56AI171958 e R01DK114506) é reconhecido com gratidão. ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.5 mL | 28 G ½ Insulin Syringes | BD | 329424 | for tail vein puncture |
0.5 mL | 30 G x 5/16 Insulin Syringes | BD | 320468 | for penile vein puncture |
250 L Microtainer blood collection tubes with K2EDTA | BD | 365974 | |
Gauze Sponges | Curity | 6939 | |
Isoflurane Auto-Flow Anesthesia Machine | E-Z Systems | EZ-190F | for penile vein puncture |
Isoflurane, USP | Patterson Veterinary | 1403-704-06 | for penile vein puncture |
Nosecone for Anesthesia | World Precision Instruments | EZ-112 | for penile vein puncture |
Rodent Restraint Cone | Harvard Apparatus | ST2 52-95-86 | for tail vein puncture |
Small Animal Heated Operating Table (Adjustable) | Peco Services Ltd | 69023 | |
Webcol Alcohol prep pads | Simply Medical | 5110 |
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