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Este trabalho descreve como a microscopia de dois fótons sensível à polarização pode ser aplicada para caracterizar a organização local dentro de superestruturas-esferulitos amiloides livres de marcação. Também descreve como preparar e medir a amostra, montar a configuração necessária e analisar os dados para obter informações sobre a organização local das fibrilas amiloides.
Em comparação com sua contraparte de um fóton, a excitação de dois fótons é benéfica para experimentos de bioimagem devido à sua menor fototoxicidade, penetração mais profunda do tecido, operação eficiente em sistemas densamente compactados e fotoseleção angular reduzida de fluoróforos. Assim, a introdução da análise de polarização em microscopia de fluorescência de dois fótons (MAP2) fornece uma determinação mais precisa da organização molecular em uma amostra em comparação com métodos de imagem padrão baseados em processos ópticos lineares. Neste trabalho, enfocamos a 2PFM sensível à polarização (ps-2PFM) e sua aplicação na determinação da ordenação molecular dentro de bioestruturas complexas-esferulitos amiloides. Doenças neurodegenerativas como Alzheimer ou Parkinson são frequentemente diagnosticadas através da detecção de agregados de proteínas amiloides-formadas devido a um processo de enovelamento incorreto de proteínas. A exploração de sua estrutura leva a uma melhor compreensão de seu caminho de criação e, consequentemente, ao desenvolvimento de métodos diagnósticos mais sensíveis. Este trabalho apresenta os ps-2PFM adaptados para a determinação da ordenação de fibrilas locais no interior de esferulitos insulínicos bovinos e agregados proteicos amiloidogênicos esféricos. Além disso, comprovamos que a técnica proposta pode resolver a organização tridimensional das fibrilas no interior da esferulite.
Nas últimas décadas, embora tenha havido um desenvolvimento significativo de inúmeras técnicas de microscopia de fluorescência para bioimagem de proteínas e seusagregados1, poucas têm sido utilizadas para resolver sua ordenação local dentro da amostra 2,3. A microscopia de imagem de tempo de vida de fluorescência4 foi usada para estudar a heterogeneidade estrutural intrínseca de superestruturas-esferulitos amiloides. Além disso, a determinação quantitativa da ordenação local dentro de bioestruturas complexas e densamente compactadas, como esferulitos, poderia ser....
1. Preparar as lâminas do microscópio com esferulites totalmente crescidos
NOTA: Consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes sobre todos os materiais, reagentes e equipamentos usados neste protocolo. Todas as soluções foram preparadas com água deionizada (18,2 MΩ·cm a 25 °C) obtida do sistema de purificação de água.
O protocolo apresentado fornece orientação passo a passo através da preparação de superestruturas amiloides para testes com ps-2PFM, construção do sistema microscópico e medidas da amostra adequada. No entanto, antes do conjunto final de medidas, é vital alinhar adequadamente as DPAs com uma referência isotrópica, o que deve resultar na coleta de um sinal simétrico de forma e intensidade semelhantes em ambos os detectores (Figura 4C). Mesmo diferenças mínimas entre as intensida.......
A microscopia de dois fótons sensível à polarização é uma ferramenta valiosa para estudar a ordenação local de fibrilas dentro das superestruturas amiloides, exigindo apenas pequenas modificações na configuração padrão de multifótons. Uma vez que opera em fenômenos ópticos não lineares, a foto-seleção angular reduzida e a resolução axial aprimorada podem ser obtidas em comparação com métodos de microscopia de fluorescência excitada de um fóton. Além disso, leva a menor espalhamento de luz, meno.......
Os autores não têm conflitos de interesse a declarar.
Este trabalho foi apoiado pelo projeto Sonata Bis 9 (2019/34/E/ST5/00276) financiado pelo Centro Nacional de Ciência da Polónia.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Sample preparation | |||
Coverslips, 24 x 24 mm | Chemland | 04-298.202.04 | |
DPX mountant for histology | Sigma-Aldrich | 6522 | Slide mountant |
Eppendorf Safe-Lock tubes, 1.5 mL, polypropylene | Chemland | 02-63102 | |
Eppendorf ThermoMixer C | Eppendorf | Used for spherulite incubation | |
HLP 5UV Water purification system | Hydrolab | Source of dionized water used in sample preparation | |
Hydrochloric acid (≥37%, APHA ≤10), | Sigma-Aldrich | 30721-M | |
Insulin powder from the bovine pancreas (≥25 units/mg (HPLC)) | Sigma-Aldrich | I5500 | |
Methanol (HPLC grade) | Sigma-Aldrich | 270474 | |
Microscope slides with a concave, 76 x 26 x 1 mm | Chemland | 04-296.202.09 | |
Olympus BX60 | Olympus | Polarized Optical Microscope used in Figure 2 | |
PTFE thread seal tape, 12 mm x 12 mm x 0.1 mm, 60 gm2 | Chemland | VIT131097 | |
Microscope ps-2PFM setup | |||
Chameleon Ultra II | Coherent | ||
FELH0800 - Ø25.0 mm Longpass Filter | Thorlabs | ||
FESH0700 - Ø25.0 mm Shortpass Filter | Thorlabs | ||
IDQ100 photon-counting avalanche photodiodes | ID Quantique | ||
Multiphoton short-pass emission filter 720 nm | Semrock | ||
Mounted Achromatic Half-Wave Plate, 690-1200 nm | Thorlabs | ||
Nikon Plan Apo Oil Immersion 100x/1.4 NA | Nikon | ||
piezo 3D stage | Piezosystem Jena | ||
Polarizing Beamsplitter | Thorlabs | ||
S130C - Slim Photodiode Power Sensor, Si, 400 - 1100 nm, 500 mW | Thorlabs | ||
Software | |||
LabView 2018 | National Instruments | Version 18.0.1f2 | |
Matplotlib library | Version 3.3.2 | ||
NumPy library | Version 1.19.2 | ||
SciPy library | Version 1.5.2 | ||
Spyder Python 3 IDE | Version 4.1.5 |
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