Microdissezione e colorazione in immunofluorescenza di manicotti miocardici nelle vene polmonari murine

Summary

Questo protocollo dimostra l'isolamento guidato dalla microscopia e la colorazione in immunofluorescenza delle vene polmonari murine. Prepariamo campioni di tessuto contenenti l'atrio sinistro, le vene polmonari e i polmoni corrispondenti e li coloriamo per la troponina T cardiaca e la connessina 43.

Abstract

Le vene polmonari (PV) sono la principale fonte di battiti ectopici nelle aritmie atriali e svolgono un ruolo cruciale nello sviluppo e nella progressione della fibrillazione atriale (FA). I PV contengono manicotti miocardici (SM) composti da cardiomiociti. Le sclerosi multipla sono implicate nell'inizio e nel mantenimento della fibrillazione atriale, in quanto conservano somiglianze con il miocardio cardiaco, inclusa la capacità di generare impulsi elettrici ectopici. I roditori sono ampiamente utilizzati e possono rappresentare ottimi modelli animali per studiare il miocardio della vena polmonare poiché i cardiomiociti sono ampiamente presenti in tutta la parete del vaso. Tuttavia, la microdissezione precisa e la preparazione di PV murini sono impegnative a causa delle piccole dimensioni dell'organo e dell'anatomia intricata.

Dimostriamo un protocollo di microdissezione guidato dalla microscopia per isolare l'atrio sinistro murino (LA) insieme ai PV. Viene eseguita una colorazione a immunofluorescenza utilizzando anticorpi cardiaci Troponina-T (cTNT) e connessina 43 (Cx43) per visualizzare LA e PV in tutta la sua lunghezza. L'imaging con ingrandimenti 10x e 40x fornisce una visione completa della struttura del PV e approfondimenti dettagliati sull'architettura miocardica, evidenziando in particolare la presenza della connessina 43 all'interno della SM.

Introduction

La fibrillazione atriale (FA) è l'aritmia sostenuta più comune¹. La prevalenza della fibrillazione atriale è in ulteriore aumento, con un numero previsto di ~17,9 milioni di pazienti in Europa nel 2060¹. La fibrillazione atriale è clinicamente molto importante poiché è un fattore di rischio essenziale per lo sviluppo di infarto miocardico, insufficienza cardiaca o ictus, con conseguente enorme onere individuale, sociale e socioeconomico¹. Anche se la fibrillazione atriale è nota da decenni, la fisiopatologia della fibrillazione atriale non è ancora del tutto compresa².

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Protocol

La cura degli animali e tutte le procedure sperimentali sono state condotte seguendo le linee guida del Comitato etico e per la cura degli animali dell'Università Ludwig-Maximilians di Monaco di Baviera, e tutte le procedure che utilizzano i topi sono state approvate dalla Regierung von Oberbayern (ROB 55.2-2532. Vet_02-20-215, ROB 55.2-2532. Vet_02-18-46, ROB 55.2-2532. Vet_02-19-86, ROB 55.2-2532. Vet_02-21-178, ROB 55.2-2532. Vet_02-22-170). I topi C57BL6/N sono stati ottenuti commercialmente.

Discussion

Con questo protocollo, condividiamo un metodo per distinguere e isolare i PV del cuore di topo ed eseguire la colorazione in immunofluorescenza su di essi. Dopo il prelievo di organi, il cuore e i polmoni sono stati disidratati in una soluzione di saccarosio sterilizzata, seguita dalla separazione dei ventricoli dall'atrio e dai lobi polmonari sotto guida microscopica. Successivamente, la base del cuore è stata preparata per visualizzare i PV seguiti dal taglio dai polmoni all'ilo. La successiva colorazione a immunofluo.......

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Adhesion slides	Epredia	10149870
AF568-secondary antibody	Invitrogen	A11036	Host: Goat, Reactivity: Rabbit
Agarose	Biozym LE	840104
Alexa Fluor 488-secondary antibody	Cell Signaling Technology	4408S	Host: Goat, Reactivity: Mouse
Anti-Connexin 43 /GJA1 antibody	Abcam	ab11370	Polyclonal Antibody, Clone: GJA1, Host: Rabbit
Anti-cTNT antibody	Invitrogen	MA5-12960	Monoclonal Antibody, Clone: 13-11, Host: Mouse
Bovine serum albumin	Sigma-Aldrich	A2153
Brush	Lukas	5486	size 6
Cover slips	Epredia		24 mm x 50 mm
Cryotome Cryo Star NX70	Epredia		Settings: Specimen temperature: -18 °C, Blade Temperature: -25 °C
DFC365FX camera	Leica
DM6 B fluorescence microscope	Leica
Dry ice
Dubecco's phosphate-buffered saline (DPBS) 1x conc.	Gibco	14040133	500 mL
Dumont #5FS Forceps	F.S.T.	91150-20	2 pieces needed
Fine Scissors	F.S.T.	14090-09
Fluorescence mounting medium	DAKO	S3023
Graefe Forceps	F.S.T.	11052-10
Hoechst 33342	Invitrogen	H3570	Cell nuclei counterstaining
ImageJ	FIJI		analysis and processing software
LAS X	Leica		Imaging software for Leica DM6 B
Microtome blades S35	Feather	207500000
Microwave
Normal goat serum	Sigma-Aldrich	S26-M
O.C.T. compound	Tissue-Tek	4583
Paraformaldehyde 16%	Pierce	28908	methanol-free
Pasteur pipettes	VWR	612-1681
Petri dish	TPP	93100	100 mm diameter
Rocker 3D digital	IKA Schüttler	00040010000
Slide staining jars	EasyDip	M900-12
Specimen Molds	Tissue-Tek Cryomold	4557	25 mm x 20 mm x 5 mm
StainTray M920 staining system	StainTray	631-1923	Staining system for 20 slides
Sterican Needle	Braun	4657705	G 27 - used for injection (step 2) and pinning (step 3 and 4) in the protocol
Student Vannas Spring Scissors	F.S.T.	91500-09
Super PAP Pen Liquid Blocker	Super PAP Pen	N71310-N
Syringes	Braun	4606108V	10 mL
Tris base	Roche	TRIS-RO	component for 1x Tris-Buffered Saline (TBS)
Triton X-100	Sigma-Aldrich	T8787
Tween 20	Sigma-Aldrich	P2287