저자는 이 원고를 편집해 준 Jerome Valero에게 감사의 뜻을 전합니다. 그림 1 과 그림 3I,J,L 은 BioRender.com 로 작성되었습니다.

모든 동물은 캐나다 동물 관리 위원회(Canadian Council on Animal Care)가 실험 동물의 관리 및 사용 가이드(Guide to the Care and Use of Experimental Animals)에 제시한 지침에 따라 치료되었습니다. 실험 프로토콜은 토론토 종합 병원 연구소 (Toronto General Hospital Research Institute)의 동물 관리 위원회 (Animal Care Committee), 대학 건강 네트워크 (University Health Network)의 승인을 받았습니다.
1. 기증자 수...

폐 이식에서 소멸성 기도 질환 탐구

<ol>
	<li>Chambers, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+International+Thoracic+Organ+Transplant+Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation:+Thirty-fifth+adult+lung+and+heart-lung+transplant+report-2018;+Focus+theme:+Multiorgan+Transplantation.">The International Thoracic Organ Transplant Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-fifth adult lung and heart-lung transplant report-2018; Focus theme: Multiorgan Transplantation.</a> J Heart Lung Transplant. 37 (10), 1169-1183 (2018).</li><li>Hertz, M. I., Jessurun, J., King, M. B., Savik, S. K., Murray, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproduction+of+the+obliterative+bronchiolitis+lesion+after+heterotopic+transplantation+of+mouse+airways.">Reproduction of the obliterative bronchiolitis lesion after heterotopic transplantation of mouse airways.</a> American J Pathol. 142 (6), 1945-1951 (1993).</li><li>Ikonen, T. S., Brazelton, T. R., Berry, G. J., Shorthouse, R. S., Morris, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epithelial+re-growth+is+associated+with+inhibition+of+obliterative+airway+disease+in+orthotopic+tracheal+allografts+in+non-immunosuppressed+rats.">Epithelial re-growth is associated with inhibition of obliterative airway disease in orthotopic tracheal allografts in non-immunosuppressed rats.</a> Transplantation. 70 (6), 857 (2000).</li><li>Dutly, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+model+for+post-transplant+obliterative+airway+disease+reveals+angiogenesis+from+the+pulmonary+circulation.">A novel model for post-transplant obliterative airway disease reveals angiogenesis from the pulmonary circulation.</a> Am J Transplant. 5 (2), 248-254 (2005).</li><li>Wagnetz, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rejection+of+tracheal+allograft+by+intrapulmonary+lymphoid+neogenesis+in+the+absence+of+secondary+lymphoid+organs.">Rejection of tracheal allograft by intrapulmonary lymphoid neogenesis in the absence of secondary lymphoid organs.</a> Transplantation. 93 (12), 1212-1220 (2012).</li><li>Hirayama, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Local+long-term+expression+of+lentivirally+delivered+IL-10+in+the+lung+attenuates+obliteration+of+intrapulmonary+allograft+airways.">Local long-term expression of lentivirally delivered IL-10 in the lung attenuates obliteration of intrapulmonary allograft airways.</a> Hum Gene Ther. 22 (11), 1453-1460 (2011).</li><li>Watanabe, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recipient+bone+marrow-derived+IL-17+receptor+A-positive+cells+drive+allograft+fibrosis+in+a+mouse+intrapulmonary+tracheal+transplantation+model.">Recipient bone marrow-derived IL-17 receptor A-positive cells drive allograft fibrosis in a mouse intrapulmonary tracheal transplantation model.</a> Transpl Immunol. 69, 101467 (2021).</li><li>Matsuda, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spleen+tyrosine+kinase+modulates+fibrous+airway+obliteration+and+associated+lymphoid+neogenesis+after+transplantation.">Spleen tyrosine kinase modulates fibrous airway obliteration and associated lymphoid neogenesis after transplantation.</a> Am J Transplant. 16 (1), 342-352 (2016).</li><li>Suzuki, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+CTLA4-Ig+on+Obliterative+bronchiolitis+in+a+mouse+intrapulmonary+tracheal+transplantation+model.">Effect of CTLA4-Ig on Obliterative bronchiolitis in a mouse intrapulmonary tracheal transplantation model.</a> Ann Thorac Cardiovasc Surg. 27 (6), 355-365 (2021).</li><li>Watanabe, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+potent+anti-angiogenic+factor,+vasohibin-1,+ameliorates+experimental+bronchiolitis+obliterans.">A potent anti-angiogenic factor, vasohibin-1, ameliorates experimental bronchiolitis obliterans.</a> Transplant Proc. 44 (4), 1155-1157 (2012).</li><li>Aloisi, F., Pujol-Borrell, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lymphoid+neogenesis+in+chronic+inflammatory+diseases.">Lymphoid neogenesis in chronic inflammatory diseases.</a> Nat Rev Immunol. 6 (3), 205-217 (2006).</li><li>Cupedo, T., Jansen, W., Kraal, G., Mebius, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+secondary+and+tertiary+lymphoid+structures+in+the+skin.">Induction of secondary and tertiary lymphoid structures in the skin.</a> Immunity. 21 (5), 655-667 (2004).</li><li>Sato, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+intrapulmonary+de+novo+lymphoid+tissue+in+obliterative+bronchiolitis+after+lung+transplantation.">The role of intrapulmonary de novo lymphoid tissue in obliterative bronchiolitis after lung transplantation.</a> J Immunol. 182 (11), 7307-7316 (2009).</li><li>Okazaki, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintenance+of+airway+epithelium+in+acutely+rejection+orthotopic+vascularized+mouse+lung+transplants.">Maintenance of airway epithelium in acutely rejection orthotopic vascularized mouse lung transplants.</a> A J Resp Cell Mol Biol. 37 (6), 625-630 (2007).</li><li>Yamada, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+airway+fibrosis+in+orthotopic+mouse+lung+transplantation+models-an+experimental+reappraisal.">Chronic airway fibrosis in orthotopic mouse lung transplantation models-an experimental reappraisal.</a> Transplantation. 102 (2), e49-e58 (2018).</li><li>Watanabe, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+B+cell-dependent+pathway+drives+chronic+lung+allograft+rejection+after+ischemia-reperfusion+injury+in+mice.">A B cell-dependent pathway drives chronic lung allograft rejection after ischemia-reperfusion injury in mice.</a> Am J Transplant. 19 (12), 3377-3389 (2019).</li><li>Guo, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vendor-specific+microbiome+controls+both+acute+and+chronic+murine+lung+allograft+rejection+by+altering+CD4+Foxp3++regulatory+T+cell+levels.">Vendor-specific microbiome controls both acute and chronic murine lung allograft rejection by altering CD4+Foxp3+ regulatory T cell levels.</a> Am J Transplant. 19 (10), 2705-2718 (2019).</li></ol>

murine IPTT 절차에는 중요한 단계가 포함됩니다. 마취와 관련하여 가장 중요한 첫 번째 단계는 기관내 삽관입니다. 성대를 시각화하고 즉각적인 삽관을 용이하게 하기 위해 다리를 테이블 위에 놓고 마우스를 적절한 높이로 유지하는 것이 중요합니다. 또한 신중한 호흡량과 호기말 양압(PEEP) 조절이 필요합니다. 전형적으로, 500 μL의 호흡량과 2cmH2O의 PEEP는 25-30 g의 마우스에 충분합니다. 그?...

폐 이식은 말기 호흡기 질환 환자에게 효과적인 치료법으로 확립되었습니다. 그러나 인간 폐 이식 환자의 평균 생존율은 약 6년에 불과하며, 폐쇄성 기도 질환(OAD)의 일종인 폐쇄성 세기관지염(OB)의 발병이 이식 후 1년 후 주요 사망 원인이다1.
OAD의 기전을 조사하기 위해 여러 동물 모델이 활용되었습니다. 그러한 모델 중 하나는 이종성 기관 이식(HTT) 모델2입니다. 이 모델에서는 기관 이식편이 수혜자의 피하 조직 또는 망막에 이식됩니다. 허혈로 인한 기관 이식편 상피 세포의 손실이 발생하고, 이어서 동종 림프구 침윤 및 기증자 상피 세포의 세포 사멸이 발생합니다. 섬유아세포(Fibroblast)와 근섬유아세포(myofibroblast)는 기관 주위를 이동하며 세포외 기질을 생성합니다. 마지막으로, 기도 내강의 완전한 섬유성 소실이 발생합니다. HTT 모델은 기술적으로 간단하고, in vivo 환경을 제공하며, 높은 재현성을 제공합니다.
OAD를 연구하기 위한 또 다른 모델은 생리적 환기를 유지하기 위해 기관 이식편을 수혜자의 기관에 삽입하는 쥐 기형외과 기관 이식(OTT) 모델이다3. 이 모델에서 허혈로 인한 기증자 상피 세포의 고갈은 기관 내의 수용자 상피 세포로 대체되어 중등도의 섬유증을 동반하는 막히지 않은 기도를 형성합니다. 이러한 모델은 폐 이식 후 기도 소실에 대한 이해에 기여했지만, 폐 실질 미세환경의 재현 측면에서는 한계가 있습니다.
우리 연구팀은 기관 이식편을 수혜자 폐에 이식하는 쥐 폐내 기관 이식(IPTT) 모델을 도입했습니다4(그림 1). IPTT 모델은 폐 미세환경 내에서 발생하는 기도 내강의 섬유성 소실을 나타냅니다. 또한, 쥐 IPTT 5,6,7,8,9,10보다 기술적으로 더 까다로운 마우스에 성공적으로 적용되었습니다. 쥐 IPTT 모델의 이러한 적응을 통해 형질전환 마우스를 사용한 폐 이식 후 OAD의 폐 면역학적 환경의 복잡한 세부 사항을 더 깊이 탐구할 수 있었습니다.
IPTT 모델에는 몇 가지 고유한 기능이 있습니다. 하나는 신생혈관신생(neoangiogenesis)으로, 폐순환에 의해 촉진되며 기도 소실에 중요한 역할을 한다 4,10. 또한 IPTT 모델은 림프 응집체를 나타내며, 그 중 일부는 말초 노드 주소를 발현하는 높은 내피 정맥을 가지고 있어 3차 림프 기관(TLO)임을 나타냅니다.7,8. TLO는 림프절과 유사하며 T 세포, B 세포 및 종종 여포 수지상 세포를 동반하는 생식 센터로 구성됩니다11,12. TLO는 기도 소실을 포함한 다양한 만성 염증성 질환에서 보고되었으므로, IPTT 모델은 기도 소실에서 TLO의 역할을 조사하는 데 적합하다 7,8,11,12,13. 이 논문은 연구자들이 이 모델에 익숙해지고 폐 이식 후 기도 소실에 대한 추가 연구를 용이하게 하는 것을 목표로 쥐 IPTT 모델의 방법론을 제시합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>BALB/cJ</td>
			<td>The Jackson Laboratory</td>
			<td>8-10 weeks 25-30 g</td>
			<td>Male, Donor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD 1 mL Syringe</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>309659</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD PrecisionGlide Needle Aiguile BD 
			PrecisionGlide</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305122</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovie Change-A-Tip Deluxe High-Temperture</td>
			<td>Bovie</td>
			<td>DEL1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C57BL/6J</td>
			<td>The Jackson Laboratory</td>
			<td>8-10 weeks 25-30 g</td>
			<td>Male, Recipient</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumont #5/45 Forceps</td>
			<td>F&#183;S&#183;T</td>
			<td>11251-35</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethicon Ligaclip Multiple -Clip Appliers-</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>LX107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Extra Fine Graefe Forceps</td>
			<td>F&#183;S&#183;T</td>
			<td>11150-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glover Bulldog Clamp</td>
			<td>Integra</td>
			<td>320-127</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halsted-Mosquito Hemostats</td>
			<td>F&#183;S&#183;T</td>
			<td>13009-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Horizon Titanium Ligating Clips</td>
			<td>Teleflex</td>
			<td>001201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica M651 Manual surgical microscope for microsurgical procedures</td>
			<td>Leica</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetix Fixator with spring lock</td>
			<td>CD+ LABS</td>
			<td>ACD-001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical Scissor</td>
			<td>Jarit</td>
			<td>277-051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse and Perinatal Rat Ventilator Model 687</td>
			<td>Harvard</td>
			<td>55-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfadex Plus</td>
			<td>XVIVO</td>
			<td>19850</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Retractor Tip Blunt - 2.5 mm</td>
			<td>CD+ LABS</td>
			<td>ACD-011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>small animal table</td>
			<td>CD+ LABS</td>
			<td>ACD-003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgipro Blue 24&#34; CV-1 Taper, Double Armed</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>VP702X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Systane ointment</td>
			<td>Alconn</td>
			<td>1444062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>System Elastomer</td>
			<td>CD+ LABS</td>
			<td>ACD-007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terumo Surflo IV Catheter, 20 G x 1 in</td>
			<td>Terumo Medical Corporation</td>
			<td>SR-OX2025CA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VMT table Top</td>
			<td>benson</td>
			<td>91803300</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

murine intrapulmonary tracheal transplantation: a model for investigating obliterative airway disease after lung transplantation

쥐 폐내 기관 이식(IPTT)은 폐 이식 후 소멸성 기도 질환(OAD)의 모델로 사용됩니다. 우리 팀이 처음 보고한 이 모델은 면역학적 행동 및 치료 개입을 조사하기 위한 높은 기술적 재현성과 적합성으로 인해 OAD 연구에 사용되었습니다.
IPTT 모델에서는 설치류 기관 이식편이 흉막을 통해 수혜자의 폐에 직접 삽입됩니다. 이 모델은 이식편을 피하 또는 구강 부위에 이식하는 이종성 기관 이식(HTT) 모델 및 기증자 기관이 수혜자의 기관을 대체하는 기립성 기관 이식(OTT) 모델과 구별됩니다. 
IPTT 모델을 성공적으로 구현하려면 고급 마취 및 수술 기술이 필요합니다. 마취 기술에는 수혜자의 기관 내 삽관, 적절한 환기 매개변수 설정, 마취 회복 후 적절한 시기의 발관이 포함됩니다. 수술 기술은 폐 내 이식편을 정밀하게 배치하고 내장 흉막을 효과적으로 밀봉하여 공기 누출 및 출혈을 방지하는 데 필수적입니다. 일반적으로 학습 과정은 약 2개월이 걸립니다.
HTT 및 OTT 모델과 달리 IPTT 모델에서 동종이식 기도는 관련 폐 미세환경에서 기도 소실을 일으킵니다. 이를 통해 조사관은 폐 이식 후 기도 소실과 관련된 폐 특이적 면역학적 및 혈관 신생 과정을 연구할 수 있습니다. 또한 이 모델은 인간 폐 동종이식편에서도 볼 수 있는 3차 림프 기관(TLO)을 나타낸다는 점에서 독특합니다. TLO는 T 및 B 세포 집단으로 구성되며 면역 세포 모집을 지시하는 높은 내피 정맥의 존재를 특징으로 합니다. 따라서 이식 수용 및 거부에 중요한 역할을 할 가능성이 높습니다. 우리는 IPTT 모델이 폐 이식 동종이식편에서 기도 소멸 발달에 관여하는 폐내 면역 및 섬유화 경로를 연구하는 데 유용한 도구라는 결론을 내렸습니다.

Lung transplantation has been established as an effective treatment for patients with end-stage respiratory diseases. However, the median survival rate for human lung transplant recipients is only approximately 6 years, with the development of obliterative bronchiolitis (OB), a type of obstructive airway disease (OAD), being a major cause of death after the first year post transplantation1.
Several animal models have been utilized to investigate the mechanism underlying OAD. One such model is the heterotopic tracheal transplantation (HTT) model2. In this model, tracheal grafts are implanted into the recipient&#39;s subcutaneous tissue or omentum. Ischemia-induced loss of tracheal graft epithelial cells occurs, followed by alloreactive lymphocyte infiltration and apoptosis of donor epithelial cells. Fibroblasts and myofibroblasts migrate around the trachea, producing an extracellular matrix. Finally, complete fibrous obliteration of the airway lumen occurs. The HTT model is technically simple, provides an in vivo environment, and offers high reproducibility.
Another model for studying OAD is the rat orthotopic tracheal transplantation (OTT) model, where tracheal grafts are interposed into the recipient&#39;s trachea to maintain physiological ventilation3. In this model, ischemia-induced depletion of donor epithelial cells results in their replacement by recipient epithelial cells within the trachea, forming an unobstructed airway accompanied by moderate fibrosis. Although these models have contributed to the understanding of airway obliteration after lung transplantation, they have limitations in terms of recapitulation of the lung parenchymal microenvironment.
Our research group introduced the rat intrapulmonary tracheal transplantation (IPTT) model, where tracheal grafts are implanted into the recipient lung4 (Figure 1). The IPTT model exhibits fibrous obliteration of the airway lumen occurring within the lung microenvironment. Furthermore, it has been successfully applied to mice that are technically more challenging than rat IPTT5,6,7,8,9,10. This adaptation of the murine IPTT model enabled us to delve deeper into the intricate details of the lung immunological environment of OAD after lung transplantation using transgenic mice.
The IPTT model possesses some unique features. One is neoangiogenesis, which is facilitated by pulmonary circulation and plays a crucial role in airway obliteration4,10. Additionally, the IPTT model exhibits lymphoid aggregates, some of which have high endothelial venules expressing peripheral node addressin, indicating that they are tertiary lymphoid organs (TLOs)7,8. TLOs resemble lymph nodes and consist of T cells, B cells, and frequently, a germinal center accompanied by follicular dendritic cells11,12. TLOs have been reported in various chronic inflammatory diseases, including airway obliteration, making the IPTT model suitable for investigating the role of TLOs in airway obliteration7,8,11,12,13. This paper presents the methodology of the murine IPTT model, with the goal of familiarizing researchers with this model and facilitate further investigations into airway obliteration following lung transplantation.

저자 스포트라이트: 폐 이식 후 소멸성 세기관지염의 핵심 요인 조사

쥐 폐내 기관 이식: 폐 이식 후 폐쇄성 기도 질환을 조사하기 위한 모델

Our research is examining chronic lung allograft dysfunction after lung transplantation. When you transplant a lung, over half the patients will develop fibrous obliteration or abnormalities of the airway. Understanding this is really the key to understanding long-term survival after lung transplantation.The importance of this model of intrapulmonary tracheal transplant is that the transplanted trachea is placed into the environment of the lung itself, and therefore you can look at an allograft versus an Isograft in terms of its response after a transplant. Most fascinating is the fact that an Isograft, even though it's had the same ischemia and the same injury, completely recovers and has normal anatomy, but an allograft develops fibrous obliteration, and understanding why that happens in an allograft is the key to understanding the underlying mechanisms of fibrosis in lung transplantation.

경험에 비추어 볼 때, 이 모델에 능숙하려면 일반적으로 약 2개월의 교육이 필요합니다. 숙련도가 달성되면 기증자 절차에는 일반적으로 15분이 소요되는 반면 수혜자 절차에는 약 30분이 소요됩니다. 숙련된 작업자의 예상 사망률은 0%입니다.
그림 4A에서 기관 동종이식편은 섬유아세포 조직으로 완전히 막혀 있으며 상피세포가 눈에 띄게 파괴되어 있습?...

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쥐 폐내 기관 이식(IPTT) 모델은 폐 이식 후 폐쇄성 기도 질환(OAD)을 연구하는 데 유용합니다. 높은 재현성으로 동종 이식 후 기도 소멸에서 폐 특이적 면역학적 및 혈관 형성 거동에 대한 통찰력을 제공합니다. 여기에서는 IPTT 절차와 예상 결과에 대해 설명합니다.

Murine intrapulmonary tracheal transplantation (IPTT) is used as a model of obliterative airway disease (OAD) following lung transplantation. Initially ...

본 연구는 폐 이식 후 만성 폐 동종 이식편 기능 장애를 조사하고 있습니다. 폐를 이식하면 환자의 절반 이상이 섬유성 소실이나 기도 이상이 생깁니다. 이를 이해하는 것이 폐 이식 후 장기 생존을 이해하는 열쇠입니다.이 폐 내 기관 이식 모델의 중요성은 이식된 기관이 폐 자체의 환경에 배치되므로 이식 후 반응 측면에서 동종 이식편과 동종 이식편을 비교할 수 있다는 것입니다. 가장 흥미로운 것은 등이식편은 동일한 허혈과 동일한 부상을 입었음에도 불구하고 완전히 회복되어 정상적인 해부학적 구조를 갖지만 동종이식은 섬유성 소실이 발생한다는 사실이며, 동종이식에서 왜 그런 일이 발생하는지 이해하는 것이 폐 이식에서 섬유증의 근본적인 메커니즘을 이해하는 열쇠입니다.

쥐 폐내 기관 이식: 폐 이식 후 폐쇄성 기도 질환을 조사하기 위한 모델

Abstract