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Abstract
Environment
Verschiedene organische Schadstoffe sind durch anthropogene Aktivitäten in die Umwelt gelangt. Diese Schadstoffe können von Nutzpflanzen aufgenommen werden und in der gesamten Nahrungskette eine potenzielle Bedrohung für das Ökosystem und die menschliche Gesundheit darstellen. Bei der Biotransformation von Schadstoffen in Pflanzen entsteht eine Reihe von Metaboliten, die möglicherweise toxischer sind als ihre Ausgangsverbindungen, was bedeutet, dass die Metaboliten bei der Toxizitätsbewertung berücksichtigt werden sollten. Die Metaboliten von Schadstoffen in Pflanzen sind jedoch äußerst komplex, so dass es schwierig ist, die toxikologischen Informationen aller Metaboliten umfassend zu erhalten. In dieser Studie wurde eine Strategie vorgeschlagen, um die integrale Zytotoxizität von Schadstoffmetaboliten in Pflanzen zu bewerten, indem sie in toxikologischen Tests als Ganzes behandelt werden. Triazol-Pestizide, eine Klasse von Breitbandfungiziden, werden in der landwirtschaftlichen Produktion in großem Umfang eingesetzt. Ihre Schadstoffbelastung durch Rückstände auf landwirtschaftlichen Flächen hat zunehmend Aufmerksamkeit auf sich gezogen. Daher wurden vier Triazol-Pestizide, darunter Flusilazol, Diniconazol, Tebuconazol und Propiconazol, als getestete Schadstoffe ausgewählt. Die Metaboliten wurden durch die Behandlung von Karottenkallus mit getesteten Triazol-Pestiziden erzeugt. Nach einer Behandlung von 72 h wurden die Metaboliten von Pestiziden im Karottenkallus extrahiert, gefolgt von toxikologischen Tests mit der Caco-2-Zelllinie. Die Ergebnisse zeigten, dass die Metaboliten der getesteten Pestizide in Karottenkallus die Lebensfähigkeit von Caco-2-Zellen nicht signifikant hemmten (P>0,05), was keine Zytotoxizität von Pestizidmetaboliten zeigte. Diese vorgeschlagene Methode eröffnet einen neuen Weg zur Bewertung der Zytotoxizität von Schadstoffmetaboliten in Pflanzen, von dem erwartet wird, dass es wertvolle Daten für eine präzise Toxizitätsbewertung liefert.
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