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La derivazione di linee del sistema nervoso enterico (ENS) da cellule staminali pluripotenti umane (hPSC) fornisce una fonte scalabile di cellule per studiare lo sviluppo e la malattia dell'ENS e per l'uso nella medicina rigenerativa. Qui viene presentato un protocollo dettagliato in vitro per derivare neuroni enterici da hPSC utilizzando condizioni di coltura chimicamente definite.
Il sistema nervoso enterico umano, ENS, è una vasta rete di tipi di cellule gliali e neuronali con una notevole diversità di neurotrasmettitori. L'ENS controlla la motilità intestinale, la secrezione enzimatica e l'assorbimento dei nutrienti e interagisce con il sistema immunitario e il microbioma intestinale. Di conseguenza, i difetti dello sviluppo e acquisiti dell'ENS sono responsabili di molte malattie umane e possono contribuire ai sintomi del morbo di Parkinson. Le limitazioni nei sistemi modello animale e l'accesso al tessuto primario pongono sfide sperimentali significative negli studi sull'ENS umano. Qui, viene presentato un protocollo dettagliato per un'efficace derivazione in vitro dei lignaggi ENS da cellule staminali pluripotenti umane, hPSC, utilizzando condizioni di coltura definite. Il nostro protocollo inizia con la differenziazione diretta delle hPSC in cellule della cresta neurale enterica entro 15 giorni e produce diversi sottotipi di neuroni enterici funzionali entro 30 giorni. Questa piattaforma fornisce una risorsa scalabile per studi sullo sviluppo, modellazione di malattie, scoperta di farmaci e applicazioni rigenerative.
Il sistema nervoso enterico (ENS) è il componente più grande del sistema nervoso periferico. L'ENS contiene più di 400 milioni di neuroni che si trovano all'interno del tratto gastrointestinale e controllano quasi tutte le funzioni dell'intestino1. La comprensione molecolare dello sviluppo e della funzione dell'ENS e dei suoi difetti nelle neuropatie enteriche richiede l'accesso a una fonte affidabile e autentica di neuroni enterici. L'accesso al tessuto primario umano è limitato e i modelli animali non riescono a ricapitolare i fenotipi chiave della malattia in molte neuropatie enteriche. La tecnologia delle cellule staminali pluripotenti uman....
1. Preparazione dei terreni
NOTA: Le concentrazioni menzionate nel protocollo sono concentrazioni finali dei componenti del fluido. Preparare tutti i terreni in condizioni sterili in una cappa a flusso laminare e conservarli a 4 °C al buio. Utilizzare entro 2 settimane.
Questo protocollo fornisce un metodo per derivare la cresta neurale enterica e i neuroni enterici dalle hPSC utilizzando condizioni di coltura chimicamente definite (Figura 1A-B). La generazione di neuroni di alta qualità dipende da un'efficiente fase di induzione della cresta neurale enterica. Questo può essere valutato visivamente controllando la morfologia delle sfere fluttuanti che dovrebbero apparire rotonde con superfici lisce con una dimensione di circa 0,1 - 0,4 mm.......
Il protocollo di differenziazione qui descritto fornisce un robusto metodo in vitro per ottenere neuroni enterici da hPSC entro 30-40 giorni (Figura 1E) e glia enterica che esprimono proteina acida fibrillare gliale, GFAP e SOX10 in colture più vecchie (> giorno 55)13,14,19,22. Questi neuroni e la glia sono indotti dalla differenziazione graduale delle hP.......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Il lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni del Programma UCSF per la ricerca biomedica rivoluzionaria e della Sandler Foundation, dalla sovvenzione March of Dimes n. 1-FY18-394 e 1DP2NS116769-01, dal NIH Director's New Innovator Award (DP2NS116769) a F.F. e dal National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases (R01DK121169) a F.F., H.M. è supportato dalla borsa di studio post-dottorato della Larry L. Hillblom Foundation, Borsa di studio NIH T32-DK007418 e borsa di studio post-dottorato indipendente UCSF Program for Breakthrough Biomedical Research.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A5960 | |
B27 supplement (serum free, minus vitamin A) | Gibco | 12587-010 | |
Basement membrane matrix, Geltrex | Gibco | A14133-2 | |
BMP4 | R&D systems | 314-BP | |
Cell culture centrifuge | Eppendorf, model no. 5810R | 02262501 | |
Cell detachment solution, Accutase | Stemcell Technologies | 07920 | |
CHIR99021 | Tocris | 4423 | |
Conical tubes | USA scientific | 1475-0511, 1500-1211 | |
Differentiation base medium, Essential 6 | Life Technologies | A1516401 | |
DMEM/F-12 no glutamine | Life Technologies | 21331020 | |
EDTA | Corning | MT-46034CI | |
Feeder-free hPSC maintenance medium, Essential 8 Flex Medium Kit | Life Technologies | A2858501 | |
FGF2 | R&D systems | 233-FB/CF | |
Fibronectin | Corning | 356008 | |
GDNF | Peprotech | 450-10 | |
Hemocytometer | Hausser Scientific | 1475 | |
Human pluripotent stem cells, H9 ESC | WiCell | RRID: CVCL_1240 | |
Incubator with controlled humidity, temperature and CO2 | Thermo Fisher Scientific | Herralcell 150i | |
Inverted microscope | Thermo Fisher Scientific | EVOS FL | |
Laminar flow hood | Thermo Fisher Scientific | 1300 series class II, type A2 | |
Laminin | Cultrex | 3400-010 | |
L-glutamine supplement, Glutagro | Corning | 25-015-CI | |
MEM NEAAs | Corning | 25-025-CI | |
Multiwell plates, Falcon | BD | 353934, 353075 | |
N-2 Supplement | CTS | A1370701 | |
Neurobasal Medium | Life Technologies | 21103049 | |
PBS (Ca and Mg free) | Life Technologies | 10010023 | |
Pipette filler | Eppendorf | Z768715-1EA | |
Pipette tips | USA scientific | 1111-2830 | |
Pipettes | Fisherbrand | 13-678-11E, 13-678-11F | |
PO | Sigma-Aldrich | P3655 | |
polymer coverslip bottom imaging plates, ibidi | ibidi | 81156 | |
RA | Sigma-Aldrich | R2625 | |
SB431542 | R&D systems | 1614 | |
Trypan blue stain, 0.4% | Thermo Fisher Scientific | 15250-061 | |
Ultra-low attachment plates | Fisher Scientific | 07-200-601 | |
Y-27632 dihydrochloride | R&D systems | 1254 |
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