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* These authors contributed equally
O presente protocolo descreve uma estratégia prática para agilizar a etapa de verificação das coordenadas de injeção estereotáxica antes de realizar o rastreamento viral usando corantes e seções congeladas.
A injeção estereotáxica de uma região específica do cérebro constitui uma técnica experimental fundamental na neurociência básica. Os pesquisadores geralmente baseiam sua escolha de parâmetros de injeção estereotáxica em atlas cerebrais de camundongos ou materiais publicados que empregaram várias populações/idades de camundongos e diferentes equipamentos estereotáxicos, necessitando de validação adicional dos parâmetros de coordenadas estereotáxicas. A eficácia das manipulações de imagens de cálcio, quimiogenéticas e optogenéticas depende da expressão precisa de genes repórteres dentro da região de interesse, muitas vezes exigindo várias semanas de esforço. Assim, é uma tarefa demorada se as coordenadas da região alvo do cérebro não forem verificadas com antecedência. Usando um corante apropriado em vez de um vírus e implementando a criossecção, os pesquisadores podem observar o local da injeção imediatamente após a administração do corante. Isso facilita ajustes oportunos para coordenar os parâmetros nos casos em que existem discrepâncias entre o local real da injeção e a posição teórica. Tais ajustes aumentam significativamente a precisão da expressão viral dentro da região-alvo em experimentos subsequentes.
Quase todas as ferramentas modernas de neuromodulação, incluindo registro de cálcio in vivo, ferramentas optogenéticas e quimiogenéticas, requerem o uso de coordenadas estereotáxicas para atingir a área de interesse do cérebro 1,2,3, formando a base da manipulação neural. As coordenadas estereotáxicas para as regiões do cérebro de camundongos são definidas em relação ao bregma e lambda, os marcos ósseos no crânio, formando o chamado sistema de coordenadas estereotáxicas derivado do crânio. Bregma ou lambda podem servir como o ponto zero das coordenadas tridimensionai....
Todos os experimentos com animais foram conduzidos em conformidade com as diretrizes do Animal Research Reporting In Vivo Experiments (ARRIVE) e o Guia do National Institutes of Health para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório. O presente estudo foi aprovado pelo Comitê de Cuidados e Uso de Animais do Hospital Renji, Escola de Medicina da Universidade Jiaotong de Xangai. Camundongos machos C57BL/6J com oito semanas de idade foram usados para o presente estudo. Os animais foram obtidos comercialmente (ver T.......
Este estudo identificou com sucesso o local da injeção em 30 minutos usando o método demonstrado. Inicialmente, uma solução de carregamento de amostra SDS-PAGE contendo azul de bromofenol foi injetada no LDTgV nos camundongos C57 / BL. A Figura 1A mostra uma representação esquemática da injeção da solução de corante. A distribuição do corante azul no LDTgV é ilustrada na Figura 1B.
O azul de bromofenol também foi injet.......
Este artigo descreveu uma estratégia estável para verificar a precisão das injeções cerebrais estereotáxicas 5,6 mais rápida e simplesmente antes do rastreamento viral, mas o aspecto insubstituível da expressão do gene repórter na região do cérebro é crucial para a rotulagem da região cerebral. O corante azul que usamos permitiu a visualização imediata do local da injeção.
Várias etapas críticas neste protocolo cont.......
Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (concessão nº 82101249 para XY Sun), Fundação de Pesquisa de Pós-Doutorado da China (concessão nº 2022M722125 para XY Sun). Programa de Vela de Xangai (concessão NO. 21YF1425100 para SH Chen). Projeto Especial de Pesquisa Clínica da Comissão Municipal de Saúde de Xangai (concessão Nº 202340088 a J Zhou). Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (concessão Nº 82101262 a X Zhang, concessão Nº 82101287 a SH Chen).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.0 µL, Neuros Syringe, Model 7001 KH, 32 G, Point Style 3 | Hamilton | 65458-01 | |
200 μL pipette tips | biosharp | BS-200-T | |
20 mL syringe | Kindly group | ||
3%H2O2 solution | Lircon Company | ||
6-well plate | Shengyou Biotech | 20006 | |
Anerdian | Likang High-tech | 31001002 | |
Anti roll plate | Leica | 14047742497 | |
BD insulin syringe | Becton,Dickinson and Company | 328421 | |
Bend toothed dissecting forceps | Jinzhong | JD1050 | |
Cellsens dimension software | Olympus | ||
Cotton swab | Fisher Scientific | 23-400-122 | |
Dapi-Fluoromount-G | Southernbiotech | 0100-20 | |
Drill | Longxiang | ||
Fine brushes | HWAHONG | ||
Fine scissors | Jinzhong | y00030 | |
Fluorescent microscopy | Olympus | BX63 | |
freezing microtome | Leica | CM1950 | |
Hemostatic forceps straight with tooth | Jinzhong | J31010 | |
Infusion needle 0.7 mm | Kindly group | ||
Lidocaine hydrochloride injection | Harvest Pharmaceutical Company | 71230803 | |
Magnifying glass | M&G Chenguang Stationery | ||
Male C57/BL mice | The Shanghai Institute of Planned Parenthood Research–BK Laboratory | ||
Mice coronal brain slice mold | RWD Life Science | 68713 | |
Microcentrifuge tube | biosharp | BS-02-P | |
Microtome blades | Leica | 819 | |
Ophthalmic ointment | Cisen Pharmaceutical Company | G23HDM9M4S5 | |
paraformaldehyde | Biosharp | BL539A | |
Peristaltic pumps | Harvard Apparatus | 70-4507 | |
Phosphate buffered saline | Servicebio | G4202 | |
Piette 2-200 μL | thermofisher | 4642080 | |
SDS-PAGE sample loading containing bromophenol blue | Beyotime | P0015A | |
Shaving blades | BFYING | 91560618 | |
Slides | Citotest Scientific | 188105 | |
Stereotaxic apparatus | RWD Life Science | 68807 | |
Straight toothed dissecting forceps | Jinzhong | JD1060 | |
Syringe Holder | RWD Life Science | 68206 | |
Tissue scissors | Jinzhong | J21040 | |
Tissue-Tek O.C.T compound | Sakura | 4583 | |
Tribromoethanol | Aibei Biotechnology | M2910 |
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