A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Descrevemos um protocolo para extrair núcleos de alta qualidade de tipos de células estromais/endoteliais e sanguíneas derivadas de células-tronco pluripotentes induzidas por criopreservas, para apoiar análises de sequenciamento de próxima geração de núcleo único. A produção de núcleos intactos e de alta qualidade é imperativa para experimentos multiômicos, mas pode ser uma barreira à entrada no campo para alguns laboratórios.
Modelos baseados em células-tronco pluripotentes induzidas (iPSC) são excelentes plataformas para entender o desenvolvimento do sangue, e as células sanguíneas derivadas de iPSC têm utilidade translacional como reagentes de testes clínicos e terapias de células transfusíveis. O advento e a expansão da análise multiômica, incluindo, entre outros, o sequenciamento de RNA de núcleo único (snRNAseq) e o sequenciamento de cromatina acessível por transposase (snATACseq), oferece o potencial de revolucionar nossa compreensão do desenvolvimento celular. Isso inclui biologia do desenvolvimento usando modelos hematopoiéticos in vitro . No entanto, pode ser tecnicamente desafiador isolar núcleos intactos de células cultivadas ou primárias. Diferentes tipos de células geralmente requerem preparações nucleares personalizadas, dependendo da rigidez e do conteúdo celular. Essas dificuldades técnicas podem limitar a qualidade dos dados e atuar como uma barreira para os investigadores interessados em realizar estudos multiômicos. A criopreservação de amostras é frequentemente necessária devido a limitações na coleta e/ou processamento de células, e amostras congeladas podem apresentar desafios técnicos adicionais para o isolamento nuclear intacto. Neste manuscrito, fornecemos um método detalhado para isolar núcleos de alta qualidade de células derivadas de iPSC em diferentes estágios de desenvolvimento hematopoiético in vitro para uso em fluxos de trabalho multiômicos de núcleo único. Focamos o desenvolvimento do método no isolamento de núcleos de células estromais/endoteliais aderentes derivadas de iPSC e células progenitoras hematopoiéticas não aderentes, pois representam tipos de células muito diferentes em relação à identidade estrutural e celular. As etapas de solução de problemas descritas limitaram a aglomeração e os detritos nucleares, permitindo a recuperação de núcleos em quantidade e qualidade suficientes para análises a jusante. Métodos semelhantes podem ser adaptados para isolar núcleos de outros tipos de células criopreservadas.
A hematopoiese é um sistema de desenvolvimento relativamente bem caracterizado, mas a incapacidade de recapitular a formação de células sanguíneas in vitro demonstra uma compreensão incompleta dos fatores relacionados. Modelos de hematopoiese baseados em células-tronco pluripotentes induzidas (iPSC) podem ajudar a elucidar os principais fatores de desenvolvimento e a biologia relacionada. O sistema iPSC também oferece um excelente modelo para estudar distúrbios sanguíneos, e células sanguíneas baseadas em iPSC foram desenvolvidas para produzir reagentes traducionais e terapeuticamente relevantes 1,2,3,4.
1. Criopreservação de células
Empregamos o protocolo acima mencionado para extrair núcleos de células estromais/endoteliais aderentes derivadas de iPSC criopreservadas e células progenitoras hematopoiéticas não aderentes (flutuantes). Uma representação esquemática detalhada do procedimento de isolamento nuclear pode ser encontrada na Figura 1.
Para o exame morfológico, os núcleos isolados foram corados com azul de tripano e visualizados ao microscópio. O exame morfológico nuclear ?.......
Etapas críticas dentro do protocolo
Isolar núcleos de alta qualidade é essencial para a implementação bem-sucedida das atuais modalidades de sequenciamento de próxima geração baseadas em núcleo único, que estão evoluindo rapidamente. Em reconhecimento às barreiras existentes para laboratórios interessados nessas abordagens, particularmente para espécimes criopreservados, nossa intenção era criar uma técnica de isolamento nuclear adaptada para células previamente congeladas. O isolame.......
Os autores não têm conflito de interesses a divulgar.
Os autores agradecem a Jason Hatakeyama (10x Genomics) e Diana Slater (Children's Hospital of Philadelphia Center for Applied Genomics) por orientação e sugestões. Este estudo foi apoiado pelo National Institutes of Health (HL156052 ao CST).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cell Culture Reagents | |||
Dimethyl sulfoxide solution (DMSO) | Sigma | 673439 | |
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) | Corning | 21031CV | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GeminiBio | 100106 | |
RPMI Medium 1640 (1X) | Gibco | 11875093 | |
Cells | |||
Induced pluripotent stem cells | N/A | N/A | The iPSCs used in this study were obtained through the CHOP Human Pluripotent Stem Cell Core Facility |
Cell Staining Reagents | |||
Trypan Blue Solution | Corning | 25900CI | |
Dead Cell Removal Reagents | |||
Calcium chloride (CaCl2) | Sigma | C4901 | |
EasySep Dead Cell Removal (Annexin V) Kit | StemCell Technologies | 17899 | This kit is designed for the depletion of unwanted cell types labeled with biotin. The kit includes Dead Cell Removal (Annexin V) Cocktail, Biotin Selection Cocktail, and Dextran beads. This kit targets phosphatidylserine on the outer leaflet of the cell membrane of apoptotic cells using Annexin V. Unwanted cells are labeled with Annexin V, Biotinylated antibodies, and magnetic particles, and separated without columns using an EasySep magnet. Desired cells are simply poured off into a new tube. |
Materials | |||
10 µl Micropipette | Wards science | 470231606 | |
100 µl Micropipette | Wards science | 470231598 | |
1000 µl Extended Universal Tip | Oxford Lab Products | OAR-1000XL-SLF | |
1000 µl Micropipette | Wards science | 470231602 | |
2.0 ml Cryogenic vials | Corning | 431386 | |
20 µl Micropipette | Wards science | 470231608 | |
200 µl Micropipette | Wards science | 470231600 | |
5ml Polystyrene Round-Bottom Tube | Falcon | 352063 | |
Corning DeckWork 0.1-10 µl Pipet Tip Station | Corning | 4143 | |
Corning DeckWork 1-200 µl Pipet Tip Station | Corning | 4144 | |
Counting chamber | CytoSMART | 699910591 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
Magnet | StemCell Technologies | 18000 | |
NALGENE Cryo 1°C Freezing Container | Nalgene | 51000001 | |
Nuclei Isolation Reagents | Nuclei isolation reagents include Lysis Buffer, Wash buffer, and Diluted Nuclei Buffer,and Lysis Dilution Buffer. The constitution of these buffers are in the Table 1, 2, and 3. Our nuclei isolation method improved isolation from the standard kit protocols (e.g., 10x Genomics Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression User Guide [CG000338]). This protocol can be used with several commercial kits, including the Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 16 rxns (PN-1000283). | ||
Dead Cell Removal kit | STEMCELL | 17899 | |
Digitonin | Thermo Fisher Scientific | BN2006 | |
DL-Dithiothreitol solution (DTT) | Sigma | 646563 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
MACS bovine serum albumin (BSA) stock Solution | Miltenyi Biotec | 130091376 | |
Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma | 7786303 | |
Magnesium Chloride Solution, 1 M | Sigma | M1028 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma | 74385 | |
Nuclease-Free Water | Thermo Fisher Scientific | AM9937 | |
Nuclei Buffer (20X) | 10X Genomics | 2000153 | |
Protector RNase inhibitor | Sigma | 3335399001 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S7653-250G | |
Sodium Chloride Solution, 5 M | Sigma | 59222C | |
Trizma Hydrochloride Soultion, pH 7.4 | Sigma | T2194 | |
Trizma hydrochloride (Tris-HCl) (pH7.4) | Sigma | T3252-500G | |
Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
Other equipment | |||
Automated cell counter | CytoSMART | 699910591 | |
Microscope | Zeiss | Primostar 3 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
ABOUT JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved