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  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Descrevemos um protocolo para extrair núcleos de alta qualidade de tipos de células estromais/endoteliais e sanguíneas derivadas de células-tronco pluripotentes induzidas por criopreservas, para apoiar análises de sequenciamento de próxima geração de núcleo único. A produção de núcleos intactos e de alta qualidade é imperativa para experimentos multiômicos, mas pode ser uma barreira à entrada no campo para alguns laboratórios.

Abstract

Modelos baseados em células-tronco pluripotentes induzidas (iPSC) são excelentes plataformas para entender o desenvolvimento do sangue, e as células sanguíneas derivadas de iPSC têm utilidade translacional como reagentes de testes clínicos e terapias de células transfusíveis. O advento e a expansão da análise multiômica, incluindo, entre outros, o sequenciamento de RNA de núcleo único (snRNAseq) e o sequenciamento de cromatina acessível por transposase (snATACseq), oferece o potencial de revolucionar nossa compreensão do desenvolvimento celular. Isso inclui biologia do desenvolvimento usando modelos hematopoiéticos in vitro . No entanto, pode ser tecnicamente desafiador isolar núcleos intactos de células cultivadas ou primárias. Diferentes tipos de células geralmente requerem preparações nucleares personalizadas, dependendo da rigidez e do conteúdo celular. Essas dificuldades técnicas podem limitar a qualidade dos dados e atuar como uma barreira para os investigadores interessados em realizar estudos multiômicos. A criopreservação de amostras é frequentemente necessária devido a limitações na coleta e/ou processamento de células, e amostras congeladas podem apresentar desafios técnicos adicionais para o isolamento nuclear intacto. Neste manuscrito, fornecemos um método detalhado para isolar núcleos de alta qualidade de células derivadas de iPSC em diferentes estágios de desenvolvimento hematopoiético in vitro para uso em fluxos de trabalho multiômicos de núcleo único. Focamos o desenvolvimento do método no isolamento de núcleos de células estromais/endoteliais aderentes derivadas de iPSC e células progenitoras hematopoiéticas não aderentes, pois representam tipos de células muito diferentes em relação à identidade estrutural e celular. As etapas de solução de problemas descritas limitaram a aglomeração e os detritos nucleares, permitindo a recuperação de núcleos em quantidade e qualidade suficientes para análises a jusante. Métodos semelhantes podem ser adaptados para isolar núcleos de outros tipos de células criopreservadas.

Introduction

A hematopoiese é um sistema de desenvolvimento relativamente bem caracterizado, mas a incapacidade de recapitular a formação de células sanguíneas in vitro demonstra uma compreensão incompleta dos fatores relacionados. Modelos de hematopoiese baseados em células-tronco pluripotentes induzidas (iPSC) podem ajudar a elucidar os principais fatores de desenvolvimento e a biologia relacionada. O sistema iPSC também oferece um excelente modelo para estudar distúrbios sanguíneos, e células sanguíneas baseadas em iPSC foram desenvolvidas para produzir reagentes traducionais e terapeuticamente relevantes 1,2,3,4.

Protocol

1. Criopreservação de células

  1. Congele >1 x 106 células derivadas de iPSC isoladas por mL em 1 mL de 90% de FBS e 10% de DMSO. Coloque os criogenianos em um recipiente de congelamento a -80 ° C para reduzir a velocidade de congelamento e otimizar a recuperação de células viáveis (Tabela de Materiais). Antecipe uma perda celular considerável, que pode variar de acordo com as condições de cultura e a identidade celular.
  2. Passar de -80 °C para armaz.......

Representative Results

Empregamos o protocolo acima mencionado para extrair núcleos de células estromais/endoteliais aderentes derivadas de iPSC criopreservadas e células progenitoras hematopoiéticas não aderentes (flutuantes). Uma representação esquemática detalhada do procedimento de isolamento nuclear pode ser encontrada na Figura 1.

Para o exame morfológico, os núcleos isolados foram corados com azul de tripano e visualizados ao microscópio. O exame morfológico nuclear ?.......

Discussion

Etapas críticas dentro do protocolo
Isolar núcleos de alta qualidade é essencial para a implementação bem-sucedida das atuais modalidades de sequenciamento de próxima geração baseadas em núcleo único, que estão evoluindo rapidamente. Em reconhecimento às barreiras existentes para laboratórios interessados nessas abordagens, particularmente para espécimes criopreservados, nossa intenção era criar uma técnica de isolamento nuclear adaptada para células previamente congeladas. O isolame.......

Disclosures

Os autores não têm conflito de interesses a divulgar.

Acknowledgements

Os autores agradecem a Jason Hatakeyama (10x Genomics) e Diana Slater (Children's Hospital of Philadelphia Center for Applied Genomics) por orientação e sugestões. Este estudo foi apoiado pelo National Institutes of Health (HL156052 ao CST).

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Cell Culture Reagents
Dimethyl sulfoxide solution (DMSO)Sigma673439
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS)Corning21031CV
Fetal Bovine Serum (FBS)GeminiBio100106
RPMI Medium 1640 (1X)Gibco11875093
Cells
Induced pluripotent stem cellsN/AN/AThe iPSCs used in this study were obtained through the CHOP Human Pluripotent Stem Cell Core Facility
Cell Staining Reagents 
Trypan Blue SolutionCorning25900CI
Dead Cell Removal Reagents
Calcium chloride (CaCl2)SigmaC4901
EasySep Dead Cell Removal (Annexin V) KitStemCell Technologies17899This kit is designed for the depletion of unwanted cell types labeled with biotin. The kit includes Dead Cell Removal (Annexin V) Cocktail, Biotin Selection Cocktail, and Dextran beads. This kit targets phosphatidylserine on the outer leaflet of the cell membrane of apoptotic cells using Annexin V. Unwanted cells are labeled with Annexin V, Biotinylated antibodies, and magnetic particles, and separated without columns using an EasySep magnet. Desired cells are simply poured off into a new tube.
Materials
10 µl MicropipetteWards science470231606
100 µl MicropipetteWards science470231598
1000 µl Extended Universal TipOxford Lab ProductsOAR-1000XL-SLF
1000 µl MicropipetteWards science470231602
2.0 ml Cryogenic vialsCorning431386
20 µl MicropipetteWards science470231608
200 µl MicropipetteWards science470231600
5ml Polystyrene Round-Bottom TubeFalcon352063
Corning DeckWork 0.1-10 µl Pipet Tip StationCorning4143
Corning DeckWork 1-200 µl Pipet Tip StationCorning4144
Counting chamberCytoSMART699910591
Flowmi Cell Strainer, 40 µm Bel-ArtH136800040
MagnetStemCell Technologies18000
NALGENE Cryo 1°C Freezing ContainerNalgene51000001
Nuclei Isolation ReagentsNuclei isolation reagents include Lysis Buffer,  Wash buffer, and Diluted Nuclei Buffer,and Lysis Dilution Buffer. The constitution of these buffers are in the Table 1, 2, and 3. Our nuclei isolation method improved isolation from the standard kit protocols (e.g., 10x Genomics Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression User Guide [CG000338]). This protocol can be used with several commercial kits, including the Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 16 rxns (PN-1000283).
Dead Cell Removal kitSTEMCELL17899
DigitoninThermo Fisher ScientificBN2006
DL-Dithiothreitol solution (DTT)Sigma646563
Flowmi Cell Strainer, 40 µmBel-ArtH136800040
MACS bovine serum albumin (BSA) stock SolutionMiltenyi Biotec130091376
Magnesium chloride (MgCl2)Sigma7786303
Magnesium Chloride Solution, 1 MSigmaM1028
Nonidet P40 SubstituteSigma74385
Nuclease-Free WaterThermo Fisher ScientificAM9937
Nuclei Buffer (20X)10X Genomics2000153
Protector RNase inhibitorSigma3335399001
Sodium chloride (NaCl)SigmaS7653-250G
Sodium Chloride Solution, 5 MSigma59222C
Trizma Hydrochloride Soultion, pH 7.4SigmaT2194
Trizma hydrochloride (Tris-HCl) (pH7.4)SigmaT3252-500G
Tween 20Bio-Rad1662404
Other equipment
Automated cell counterCytoSMART699910591
MicroscopeZeissPrimostar 3

References

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