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Questo lavoro spiega come trasformare i mitocondri del lievito utilizzando un metodo biolistico. Mostriamo anche come selezionare e purificare i trasformanti e come introdurre la mutazione desiderata nella posizione target all'interno del genoma mitocondriale.
Il lievito di birra Saccharomyces cerevisiae è stato ampiamente utilizzato per decenni per comprendere la biologia mitocondriale. Questo modello ha fornito conoscenze sulle vie mitocondriali essenziali e conservate tra gli eucarioti e sulle vie specifiche dei funghi o dei lieviti. Una delle molte capacità di S. cerevisiae è la capacità di manipolare il genoma mitocondriale, che finora è possibile solo in S. cerevisiae e nelle alghe unicellulari Chlamydomonas reinhardtii. La trasformazione biolistica dei mitocondri del lievito ci permette di introdurre mutazioni sito-dirette, effettuare riarrangiamenti genici e introdurre reporter. Questi approcci sono utilizzati principalmente per comprendere i meccanismi di due processi altamente coordinati nei mitocondri: la traduzione da parte dei mitoribosomi e l'assemblaggio di complessi respiratori e ATP sintasi. Tuttavia, la trasformazione mitocondriale può potenzialmente essere utilizzata per studiare altri percorsi. Nel presente lavoro, mostriamo come trasformare i mitocondri del lievito mediante bombardamento di microproiettili ad alta velocità, selezionare e purificare il trasformante desiderato e introdurre la mutazione desiderata nel genoma mitocondriale.
Il lievito Saccharomyces cerevisiae è un modello ampiamente riconosciuto utilizzato per studiare la biogenesi mitocondriale. Poiché il lievito è un organismo anaerobio e facoltativo, è possibile studiare ampiamente le cause e le conseguenze dell'introduzione di mutazioni che compromettono la respirazione. Inoltre, questo organismo possiede strumenti genetici e biochimici amichevoli per studiare le vie mitocondriali. Tuttavia, una delle risorse più potenti per esplorare i meccanismi dell'assemblaggio dei complessi respiratori e della sintesi proteica mitocondriale è la capacità di trasformare i mitocondri e modificare il genoma dell'organello. In precedenza, è....
NOTA: Si consiglia di effettuare sei trasformazioni per ogni costrutto poiché l'efficienza della trasformazione mitocondriale è solitamente bassa. La composizione dei diversi mezzi di crescita è mostrata nella Tabella 2.
1. Preparazione delle particelle di tungsteno
Questa sezione presenta alcuni risultati rappresentativi delle diverse fasi della trasformazione mitocondriale. La Figura 6 mostra una procedura di bombardamento. Le cellule rho- sintetiche portavano un plasmide batterico con il gene reporter ARG8m, che sostituirà la sequenza codificante di un gene mitocondriale (Figura 6A). Dopo il bombardamento, la placca è stata replicata su un mezzo privo di uracile (-URA); questa è la
Il presente lavoro descrive come trasformare con successo i mitocondri dal lievito S. cerevisiae. Il processo, dal bombardamento di microproiettili ad alta velocità fino alla purificazione del ceppo di lievito previsto, richiede ~8-12 settimane, a seconda di quanti cicli di purificazione del ceppo sintetico di rho- sono necessari. Alcuni dei passaggi critici del metodo sono i seguenti. In primo luogo, più grandi sono le regioni fiancheggianti aggiunte intorno al sito di mutazione nel costrutto genic.......
Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.
Questa pubblicazione è stata sostenuta da Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT), UNAM [IN223623 a XP-M]. UPD è un borsista CONAHCYT (CCU:883299). Vogliamo ringraziare la dottoressa Ariann Mendoza-Martínez per l'aiuto tecnico con le immagini del microscopio ottico. Licenze Biorender: DU26OMVLUU (Figura 2); BK26TH9GXH (Figura 3); GD26TH80R5 (Figura 4); PU26THARYD (Figura 7); ML26THAIFG (Figura 9).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 mL pipette tips | Axygen | T-1000-B | |
1.5 mL Microtube | Axygen | MCT-150-C | |
10 μL pipette tips | Axygen | T-10-C | |
15 mL conical bottom tube | Axygen | SCT-25ML-25-S | |
200 μL pipette tips | Axygen | T-200-Y | |
50 mL conical bottom tube | Axygen | SCT-50ML-25-S | |
AfiII | New England BioLabs | R0520S | |
Agarose | SeaKem | 50004 | |
Analytic balance | OHAUS | ARA520 | |
Autoclave | TOMY | ES-315 | |
Bacto agar | BD | 214010 | |
Bacto peptone | BD | 211677 | |
Biolisitic Macrocarrier holder | BIO-RAD | 1652322 | |
Bunsen burner | VWR | 89038-528 | |
Calcium chloride | Fisher Scientific | C79-500 | |
CSM -ADE | Formedium | DCS0049 | |
CSM -ARG | Formedium | DCS0059 | |
CSM -LEU | Formedium | DCS0099 | |
CSM -URA | Formedium | DCS0169 | |
Culture glass flask | KIMAX KIMBLE | 25615 | |
Culture glass tube | Pyrex | 9820 | |
Dextrose | BD | 215520 | |
Ethanol | JT Baker | 9000 | |
Forceps | Millipore | 620006 | |
Glass beads | Sigma | Z265926 | |
Glass handle | Sigma | S4647 | |
Glycerol | JT BAKER | 2136-01 | |
Helium tank grade 5 (99.99 %) | - | - | |
HSTaq Kit | PCR BIO | ||
Microcentrifugue | Eppendorf | 022620100 | |
NdeI | New England BioLabs | R0111L | |
Orbital shaker | New Brunswick scientific | NB-G25 | |
PCR tubes | Axygen | PCR-02-C | |
PDS-1000/He TM Biolistic Particle Delivery System | BIO-RAD | 165-2257 | |
Petri dishes (100X10) | BD | 252777 | |
QIAprep Spin Miniprep | Qiagen | 27106 | |
Raffinose | Formedium | RAF03 | |
Replica plater | Scienceware | Z363391 | |
Rupture discs 1350 Psi | BIO-RAD | 1652330 | |
Sorbitol | Sigma | S7547 | |
Spermidine | Sigma | S0266 | |
T4 DNA Ligase | Thermo Scientific | EL0011 | |
Tissue Culture Rotator | Thermo Scientific | 88882015 | |
Tungsten microcarriers M10 | BIO-RAD | 1652266 | |
Vaccum pump of 100L/min capacity | - | - | |
Velvet pads | Bel-Art | H37848-0002 | |
Vortex | Scientifc Industries | SI-0236 | |
Wood aplicator stick | PROMA | 1820060 | |
Yeast extract | BD | 212750 | |
Yeast Nitrogen base without aminoacids | BD | 291920 |
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