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  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • Representative Results
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Este trabalho explica como transformar mitocôndrias de levedura usando um método biolístico. Também mostramos como selecionar e purificar os transformantes e como introduzir a mutação desejada na posição alvo dentro do genoma mitocondrial.

Abstract

A levedura de padeiro Saccharomyces cerevisiae tem sido amplamente utilizada para entender a biologia mitocondrial há décadas. Este modelo forneceu conhecimento sobre vias mitocondriais essenciais e conservadas entre eucariotos e fungos ou vias específicas de leveduras. Uma das muitas habilidades de S. cerevisiae é a capacidade de manipular o genoma mitocondrial, o que até agora só é possível em S. cerevisiae e na alga unicelular Chlamydomonas reinhardtii. A transformação biolística das mitocôndrias de levedura nos permite introduzir mutações dirigidas ao local, fazer rearranjos genéticos e introduzir repórteres. Essas abordagens são usadas principalmente para entender os mecanismos de dois processos altamente coordenados nas mitocôndrias: tradução por mitorribossomos e montagem de complexos respiratórios e ATP sintase. No entanto, a transformação mitocondrial pode potencialmente ser usada para estudar outras vias. No presente trabalho, mostramos como transformar mitocôndrias de leveduras por bombardeio de microprojéteis de alta velocidade, selecionar e purificar o transformante pretendido e introduzir a mutação desejada no genoma mitocondrial.

Introduction

A levedura Saccharomyces cerevisiae é um modelo amplamente reconhecido usado para estudar a biogênese mitocondrial. Como a levedura é um organismo anaeróbico e facultativo, é possível estudar extensivamente as causas e consequências da introdução de mutações que prejudicam a respiração. Além disso, este organismo possui ferramentas genéticas e bioquímicas amigáveis para estudar as vias mitocondriais. No entanto, um dos recursos mais poderosos para explorar os mecanismos de montagem de complexos respiratórios e síntese de proteínas mitocondriais é a capacidade de transformar as mitocôndrias e modificar o genoma da organela. Anteriormente, foi útil introduzir n....

Protocol

NOTA: Recomendamos fazer seis transformações para cada construção, pois a eficiência da transformação mitocondrial geralmente é baixa. A composição dos diferentes meios de crescimento é mostrada na Tabela 2.

1. Preparação de partículas de tungstênio

  1. Pesar 30 mg de partículas de tungstênio de 0,7 μm (WPs, microtransportadores) em um microtubo. Adicione 1,5 mL de etanol a 70% (EtOH) para esterilizar. Vortex os WPs e deixe-os descansar.......

Representative Results

Esta seção apresenta alguns resultados representativos dos diferentes estágios da transformação mitocondrial. A Figura 6 mostra um procedimento de bombardeio. As células rho sintéticas carregavam um plasmídeo bacteriano com o gene repórter ARG8m, que substituirá a sequência codificadora de um gene mitocondrial (Figura 6A). Após o bombardeio, a placa foi replicada em um meio sem uracila (-URA); esta é a placa me.......

Discussion

O presente trabalho descreveu como transformar mitocôndrias da levedura S. cerevisiae com sucesso. O processo, desde o bombardeio de microprojéteis de alta velocidade até a purificação da cepa de levedura pretendida, leva ~ 8-12 semanas, dependendo de quantas rodadas de purificação da cepa de rho- sintética são necessárias. Algumas das etapas críticas do método são as seguintes. Primeiro, quanto maiores as regiões flanqueadoras adicionadas ao redor do local da mutação na construção d.......

Acknowledgements

Esta publicação foi financiada pelo Programa de Apoio a Projetos de Investigação e Inovação Tecnológica (PAPIIT), UNAM [IN223623 a XP-M]. UPD é um membro do CONAHCYT (CVU:883299). Queremos agradecer à Dra. Ariann Mendoza-Martínez pela ajuda técnica com as imagens do microscópio óptico. Licenças de biorender: DU26OMVLUU (Figura 2); BK26TH9GXH (Figura 3); GD26TH80R5 (Figura 4); PU26THARYD (Figura 7); ML26THAIFG (Figura 9).

....

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1 mL pipette tipsAxygenT-1000-B
1.5 mL MicrotubeAxygenMCT-150-C
10 μL pipette tipsAxygenT-10-C
15 mL conical bottom tube AxygenSCT-25ML-25-S
200 μL pipette tipsAxygenT-200-Y
50 mL conical bottom  tubeAxygenSCT-50ML-25-S
AfiIINew England BioLabsR0520S
AgaroseSeaKem50004
Analytic balanceOHAUSARA520
AutoclaveTOMYES-315
Bacto agarBD214010
Bacto peptoneBD211677
Biolisitic Macrocarrier holder BIO-RAD1652322
Bunsen burnerVWR89038-528
Calcium chlorideFisher ScientificC79-500
CSM -ADEFormediumDCS0049
CSM -ARGFormediumDCS0059
CSM -LEUFormediumDCS0099
CSM -URAFormediumDCS0169
Culture glass flaskKIMAX KIMBLE25615
Culture glass tubePyrex9820
DextroseBD215520
EthanolJT Baker 9000
ForcepsMillipore620006
Glass beadsSigmaZ265926
Glass handleSigmaS4647
GlycerolJT BAKER2136-01
Helium tank grade 5 (99.99 %)--
HSTaq  KitPCR BIO
MicrocentrifugueEppendorf022620100
NdeINew England BioLabsR0111L
Orbital shakerNew Brunswick scientificNB-G25
PCR tubesAxygenPCR-02-C
PDS-1000/He TM Biolistic Particle Delivery SystemBIO-RAD165-2257
Petri dishes (100X10)BD252777
QIAprep Spin MiniprepQiagen27106
RaffinoseFormediumRAF03
Replica platerSciencewareZ363391
Rupture discs 1350 PsiBIO-RAD1652330
SorbitolSigmaS7547
SpermidineSigmaS0266
T4 DNA LigaseThermo ScientificEL0011
Tissue Culture RotatorThermo Scientific88882015
Tungsten microcarriers M10BIO-RAD1652266
Vaccum pump of 100L/min capacity--
Velvet padsBel-ArtH37848-0002
Vortex Scientifc IndustriesSI-0236
Wood aplicator stickPROMA1820060
Yeast extractBD212750
Yeast Nitrogen base without aminoacidsBD291920

References

  1. Bonnefoy, N., Fox, T. D. In vivo analysis of mutated initiation codons in the mitochondrial COX2 gene of Saccharomyces cerevisiae fused to the reporter gene ARG8m reveals lack of downstream reinitiation. Mol Gen Genet. 262 (6), 1036-1046 (2000).
  2. Franco, L. V. R., Su, C. H., McStay, G. P., Yu, G. J., Tzagoloff, A. <....

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