A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
Este trabalho explica como transformar mitocôndrias de levedura usando um método biolístico. Também mostramos como selecionar e purificar os transformantes e como introduzir a mutação desejada na posição alvo dentro do genoma mitocondrial.
A levedura de padeiro Saccharomyces cerevisiae tem sido amplamente utilizada para entender a biologia mitocondrial há décadas. Este modelo forneceu conhecimento sobre vias mitocondriais essenciais e conservadas entre eucariotos e fungos ou vias específicas de leveduras. Uma das muitas habilidades de S. cerevisiae é a capacidade de manipular o genoma mitocondrial, o que até agora só é possível em S. cerevisiae e na alga unicelular Chlamydomonas reinhardtii. A transformação biolística das mitocôndrias de levedura nos permite introduzir mutações dirigidas ao local, fazer rearranjos genéticos e introduzir repórteres. Essas abordagens são usadas principalmente para entender os mecanismos de dois processos altamente coordenados nas mitocôndrias: tradução por mitorribossomos e montagem de complexos respiratórios e ATP sintase. No entanto, a transformação mitocondrial pode potencialmente ser usada para estudar outras vias. No presente trabalho, mostramos como transformar mitocôndrias de leveduras por bombardeio de microprojéteis de alta velocidade, selecionar e purificar o transformante pretendido e introduzir a mutação desejada no genoma mitocondrial.
A levedura Saccharomyces cerevisiae é um modelo amplamente reconhecido usado para estudar a biogênese mitocondrial. Como a levedura é um organismo anaeróbico e facultativo, é possível estudar extensivamente as causas e consequências da introdução de mutações que prejudicam a respiração. Além disso, este organismo possui ferramentas genéticas e bioquímicas amigáveis para estudar as vias mitocondriais. No entanto, um dos recursos mais poderosos para explorar os mecanismos de montagem de complexos respiratórios e síntese de proteínas mitocondriais é a capacidade de transformar as mitocôndrias e modificar o genoma da organela. Anteriormente, foi útil introduzir n....
NOTA: Recomendamos fazer seis transformações para cada construção, pois a eficiência da transformação mitocondrial geralmente é baixa. A composição dos diferentes meios de crescimento é mostrada na Tabela 2.
1. Preparação de partículas de tungstênio
Esta seção apresenta alguns resultados representativos dos diferentes estágios da transformação mitocondrial. A Figura 6 mostra um procedimento de bombardeio. As células rho sintéticas carregavam um plasmídeo bacteriano com o gene repórter ARG8m, que substituirá a sequência codificadora de um gene mitocondrial (Figura 6A). Após o bombardeio, a placa foi replicada em um meio sem uracila (-URA); esta é a placa me.......
O presente trabalho descreveu como transformar mitocôndrias da levedura S. cerevisiae com sucesso. O processo, desde o bombardeio de microprojéteis de alta velocidade até a purificação da cepa de levedura pretendida, leva ~ 8-12 semanas, dependendo de quantas rodadas de purificação da cepa de rho- sintética são necessárias. Algumas das etapas críticas do método são as seguintes. Primeiro, quanto maiores as regiões flanqueadoras adicionadas ao redor do local da mutação na construção d.......
Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.
Esta publicação foi financiada pelo Programa de Apoio a Projetos de Investigação e Inovação Tecnológica (PAPIIT), UNAM [IN223623 a XP-M]. UPD é um membro do CONAHCYT (CVU:883299). Queremos agradecer à Dra. Ariann Mendoza-Martínez pela ajuda técnica com as imagens do microscópio óptico. Licenças de biorender: DU26OMVLUU (Figura 2); BK26TH9GXH (Figura 3); GD26TH80R5 (Figura 4); PU26THARYD (Figura 7); ML26THAIFG (Figura 9).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 mL pipette tips | Axygen | T-1000-B | |
1.5 mL Microtube | Axygen | MCT-150-C | |
10 μL pipette tips | Axygen | T-10-C | |
15 mL conical bottom tube | Axygen | SCT-25ML-25-S | |
200 μL pipette tips | Axygen | T-200-Y | |
50 mL conical bottom tube | Axygen | SCT-50ML-25-S | |
AfiII | New England BioLabs | R0520S | |
Agarose | SeaKem | 50004 | |
Analytic balance | OHAUS | ARA520 | |
Autoclave | TOMY | ES-315 | |
Bacto agar | BD | 214010 | |
Bacto peptone | BD | 211677 | |
Biolisitic Macrocarrier holder | BIO-RAD | 1652322 | |
Bunsen burner | VWR | 89038-528 | |
Calcium chloride | Fisher Scientific | C79-500 | |
CSM -ADE | Formedium | DCS0049 | |
CSM -ARG | Formedium | DCS0059 | |
CSM -LEU | Formedium | DCS0099 | |
CSM -URA | Formedium | DCS0169 | |
Culture glass flask | KIMAX KIMBLE | 25615 | |
Culture glass tube | Pyrex | 9820 | |
Dextrose | BD | 215520 | |
Ethanol | JT Baker | 9000 | |
Forceps | Millipore | 620006 | |
Glass beads | Sigma | Z265926 | |
Glass handle | Sigma | S4647 | |
Glycerol | JT BAKER | 2136-01 | |
Helium tank grade 5 (99.99 %) | - | - | |
HSTaq Kit | PCR BIO | ||
Microcentrifugue | Eppendorf | 022620100 | |
NdeI | New England BioLabs | R0111L | |
Orbital shaker | New Brunswick scientific | NB-G25 | |
PCR tubes | Axygen | PCR-02-C | |
PDS-1000/He TM Biolistic Particle Delivery System | BIO-RAD | 165-2257 | |
Petri dishes (100X10) | BD | 252777 | |
QIAprep Spin Miniprep | Qiagen | 27106 | |
Raffinose | Formedium | RAF03 | |
Replica plater | Scienceware | Z363391 | |
Rupture discs 1350 Psi | BIO-RAD | 1652330 | |
Sorbitol | Sigma | S7547 | |
Spermidine | Sigma | S0266 | |
T4 DNA Ligase | Thermo Scientific | EL0011 | |
Tissue Culture Rotator | Thermo Scientific | 88882015 | |
Tungsten microcarriers M10 | BIO-RAD | 1652266 | |
Vaccum pump of 100L/min capacity | - | - | |
Velvet pads | Bel-Art | H37848-0002 | |
Vortex | Scientifc Industries | SI-0236 | |
Wood aplicator stick | PROMA | 1820060 | |
Yeast extract | BD | 212750 | |
Yeast Nitrogen base without aminoacids | BD | 291920 |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
ABOUT JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved