JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokolü biz galvanotaksis sırasında nöral prekürsör hücre translokasyon edilen erişkin beyninin time-lapse görüntüleme sağlamak için bir doğru akım elektrik alanın uygulanmasına izin özel odaları oluşturmak nasıl gösterilmektedir.

Özet

Nöral kök ve erişkin memeli beynindeki progenitor hücreler (toplu olarak adlandırılır sinir öncü hücreleri) (NPC) keşfedilmesi neuroregenerative stratejilerin geliştirilmesi için bu hücrelerin multipotent ve proliferatif özellikler kullanılarak yönelik araştırmalar bir gövde yol açmıştır. Bu tür stratejilerin başarısı için kritik bir adım eksojen Transplantasyon sonrası lezyon yerinde doğru veya MSS periventriküler bölgede bulunan endojen öncüleri yanıtı arttırmak için NPCs harekete geçirilmesidir. Buna göre, teşvik rehberlik ve NPC göç geliştirmek mekanizmaları anlamak için önemlidir. Galvanotaksis olarak bilinen bir olgu - Bizim iş tanıtmak için doğru akım elektrik alanların kullanımı (dcEFs) ve doğrudan NPC göç üzerinde duruluyor. Endojen fizyolojik elektrik alanları normal gelişimi ve yara onarımı sırasında hücre göçü için kritik ipuçları olarak işlev görür. Farmakolojik bozulmasıAxolotl embriyolar trans-nöral tüp potansiyeli ciddi gelişimsel malformasyonlar 1 neden olur. Yara iyileştirme bağlamında, yaralı, kornea tamir oranı doğrudan bu dcEF 2-3 farmakolojik olarak artırma ya da bozulma ile gösterildiği gibi, yaralanma sonrası ortaya çıkan epitel yara potansiyel büyüklüğü ile ilişkilidir. Biz bir şekilde dıştan uygulanan dcEF maruz kaldığında yetişkin subepandimal YZK'lar in vitro hızlı ve yönetmenliğini cathodal göç tabi olduğunu göstermiştir. Bu protokolü biz yüksek çözünürlüklü, bir tek hücre düzeyinde yönettiği hücre gövdesi translokasyon (göç) uzun vadeli gözlem için basit ve etkili bir galvanotaksis tahlil oluşturmak için laboratuvar tekniklerini açıklar. Bu tahlil, transgenik veya nakavt fareleri kısa müdahale RNA, ya da özel bir reseptör agonistleri / antagonistleri kullanımı yoluyla hücre hareketliliği içine dcEF transdüksiyon düzenleyen mekanizma araştırılması için uygun olacaktır.

Protokol

Hayvan taşıma içeren tüm prosedürler kurumsal düzenlemeler (protokol no. 20009387) uyarınca Toronto Hayvan Bakım Komitesince Üniversitesi tarafından onaylanmıştır. Aşağıdaki yöntemler uygulanabilir durumlarda bir laminer akış kaputu, steril alet ve teknikler kullanılarak yapılmalıdır.

Aşağıdaki protokol metninde, ifade "EFH-SFM" epidermal büyüme faktörü, temel fibroblast büyüme faktörü ve heparin ile takviye serum serbest medya anlamına gelir. Bu mitojenler kendi ayrışmamış devlet 4 YZK'lar korumak için farklılaşmamış NPCs galvanotaksis araştırılırken EFH-SFM kullanılır. Olgun hücre tipleri farklılaşması için indüklenebilir NPCs galvanotaksis araştırırken, "FBS-SFM"% 1 fetal sığır serumu serum serbest medya anlamına gelir. FBS olgun nöral fenotipleri 5 içine NPCs farklılaşma teşvik etmektedir.

1. Sinir Öncüleri izolasyonu ve Kültür (Değil) Videoda gösterilen

  1. Servikal dislokasyon yoluyla isofluorane ve özveri ile bir CD1 fare (6-8 haftalık) Anesteziyoloji.
  2. % 70 etanol içinde baş söndürün ve keskin disseksiyon makas ile hayvan başını kesmek.
  3. Cerrahi forseps ile kafa tutarken, kafatası maruz dorsal yüzeyi üzerinde cilt kaldırmak.
  4. Bir neşter ve hiçbir kullanma. 11 bıçak, mediyolateral eksen boyunca ön sinüs de kafatası puan, ve aynı zamanda rostro yönde dikiş boyunca sagital.
  5. Uzakta olmayan baş parietal kemikler Peel. 7 kavisli bir forseps, delmek için beyin dokusu umursamadı alıyor.
  6. Beyincik altından başlayarak ve olfaktor doğru ilerleyen beyin altında ince bir spatula yerleştirin. Forseps ile yerde kafatası tutarken, yavaşça kafatası beyin çekin ve hemen buz yapay beyin omurilik sıvısı (aşağıda tarifleri bakınız) yerleştirin.
  7. Bir diseksiyon mikroskobu altında, steril kullanarakDiseksiyon makas ve forseps orta hat boyunca yarım beyin kesti. Medial (kesim) yüzey yukarı bakacak şekilde her hemisferin döndürün.
  8. Bir hemisfer seçin ve medial yüzeyi yukarı bakacak şekilde, korpus kallozum (KK posterior bölgesi) splenium bulun.
  9. Korteks yüzeyinden dorsoventral ekseni boyunca korpus kallozum spleniumda bir kesi olun.
  10. Lateral ventrikül medial ve lateral duvarları açığa koku ampul doğru kazılı korteks Peel.
  11. Dorsal yüzeyi yukarı bakacak şekilde yarımkürede döndürün ve NPC'ler 6 ikamet periventriküler bölge içerir maruz medial ve lateral duvarlar, kesip toplamak için kavisli microscissors kullanın.
  12. Tekrar diğer yarımkürede için 1,8-1,11 adımları.
  13. Bir 15 cc tüp içinde tripsin solüsyonu (aşağıda tarif bakınız) 7 ml içine izole edilmiş doku pipet, ve 37 ° C de bir rocker tüp yerleştirmek25 dakika inkübatör.
  14. 5 dakika boyunca 1,500 rpm'de santrifüje tüp, süpernatan aspire, ve (aşağıda tarif bakınız) tripsin inhibitörü çözelti 2 ml doku tekrar süspansiyon.
  15. Yavaşça hava kabarcıkları önlemek için dikkatli bir küçük kuyu Pasteur pipeti 30-50 kez doku çiğnemek.
  16. 5 dakika boyunca 1,500 rpm'de santrifüje tüp, süpernatan aspire ve pelet 3-5 kez triturating ile SFM 1-2 ml (aşağıda tarif bakınız) içinde tekrar süspansiyon haline getirin.
  17. 3 dakika 1.500 rpm'de tüp santrifüjleyin, SFM + EFH arasında bölgesindeki süpernatant ve tekrar süspansiyon 1 ml aspire.
  18. SFM + EFH içinde başına 10 ul hücre yoğunluğunda bir T25 kültürü şişesi içinde bir haemocytometer ve plaka hücreler ile hücre yoğunluğu, canlı sayın.
  19. Kültür NPC oluşan serbest yüzen birincil neurospheres verim örselenmemiş 7 gün büyümeye izin verin.

2. Galvanotaksis Odası Hazırlama

  1. Hayır 3 kare cam yerleştirin. 1 kapak camları (22 x 22 x 0.17 mm) iGecede 6N hidroklorik asit na şişe.
  2. Ertesi gün, kare hiçbir gelen cam 6 dikdörtgen şeritler (22 x 5 x 0.17 mm) kesmek için bir elmas uçlu cam kesici kullanın. 1 kapak fişleri.
  3. Bir laminer akış kaputun içine asitle yıkanmış kare fişleri ve dikdörtgen fişleri aktarın. Doku kültürü dereceli otoklava su ile, sonra% 70 etanol ile ilk dikdörtgen ve kare şeritler yıkayın ve silin bir Kim üzerinde kurumasına izin (ilave sterilite, cam hava kuru izin verilebilir).
  4. Kare cam slaytlar bir yüzeyi çevre vakum gres sürün ve 60 mm plastik Petri kaplarının tabanına onları mühür.
  5. Dikdörtgen cam şeritleri bir yüzeyi uzun ekseni boyunca vakum uygula yağ, ve bir merkezi oluk oluşturmak için kare cam slaytların zıt kenarları (birbirlerine paralel olduğu gibi) ile geri kapatın.
  6. Laminer akış kaputu en az 15 dakika süreyle odaları UV sterilize.
  7. Poli-L-lysi pipetle 250-300 ul2 saat oda sıcaklığında inkübe odaları ve merkezi oluk üzerine ne.
  8. İnkübasyon süresinin sonunda önce yaklaşık 15 dakika, (aşağıda tarif bakınız) Matrigel solüsyon hazırlanır.
  9. , Poli-L-lizin aspire otoklavlanmış 1 mL su, ve merkezi oluklar üzerine Matrigel solüsyonu bir pipet 250-300 ul ile merkezi çukurların yıkayın.
  10. 1 saat boyunca 37 ° C'de inkübe odaları.
  11. Matrigel çözüm aspire ve yavaşça SFM 1-2 ml merkezi çukurların yıkayın.
  12. Pipet 100 merkez çukurların üzerine EFH-SFM veya FBS-SFM ul ve sayma mikroskop sahneye galvanotaksis odaları aktarın.
  13. Pipet 3-4 60 mm Petri kabı içine neurosphere içeren kültür ml ve sayma mikroskop aşamasına Petri kabı aktarın.
  14. 5x görüntüleme amacı, her galvanotaksis merkezi çukur üzerine 5-8 bütün neurospheres (dört bir defada) aktarmak için bir P10 pipet kullanınOnları dissociating ve dikkatle Matrigel substrat aksatmadan merkez çukur etrafında neurospheres yayılmış olmadan oda.
  15. Merkez oluklar üzerine EFH-SFM veya FBS-SFM ek 150-200 ul ekleyin.
  16. 37 ° C,% 5 CO2, 17-20 saat süreyle% 100 nemlendirilmiş kuluçka makinesi içine galvanotaksis odaları aktarın (eğer farklılaşmamış analiz NPC) Şekil 1 'de gösterildiği gibi neurospheres Matrigel substrata yapışır ve tek hücre halinde ayrıştırmak için izin vermek için . Farklılaşmış NPC analiz ise, kuluçka süresi, hücrelerin farklılaşması izin vermek için 69-72 saat için genişletilmelidir.

3. Hücre Time-Lapse Görüntüleme Canlı

  1. Canlı hücre görüntüleme sistemi 37, denge sağlaması için izin ° C,% 5 lik önce geçen zaman kaydının başlatılması için 30 dakika arasında, en az CO2.
  2. Bir ucundan 1 mm çaplı gümüş tel, bobin ikisi 12 cm parçalar koparıp ve Clorox b koyunleach 20 dakika için Ag / AgCI elektrotlar oluşturur.
  3. Bir sayma mikroskop sahneye galvanotaksis odaları aktarın ve aşağıdaki kriterlere göre canlı hücre görüntüleme göçü analiz için kullanılacak olan kamara seçin: i) neurospheres hücreleri sahip olmalıdır) tek hücreler ve ii içine neredeyse tamamen ayrılmış olmalıdır az-hayır süreçleri yuvarlak morfolojileri hücre gövdeleri uzanan.
  4. Ayrı bir kare hayır birlikte, bir laminer akış kaputun içine seçilen galvanotaksis odasına aktarın. 1 cam kapak kayma ve vakum gres.
  5. Kapak otoklavlanmış su ile, sonra% 70 etanol ile ilk kayma ve Kapak kayma iki paralel kenarlarında vakum gres bir şerit uygulayın yıkayın.
  6. , Odasının merkezi çukur gelen kültür ortamı aspire sonra hızlı bir şekilde, iki paralel dikdörtgen cam şerit üzerinde kalan yağ şeritler, etkili bir çatı yaratılması da bu tür oda üzerine kapak slipi (yağ-yüzü aşağı bakacak şekilde) yerleştirmekodasına.
  7. Kapiller eylem yoluyla merkezi çukur içine taze EFH-SFM veya FBS-SFM Pipet 100 ul.
  8. Şekil 2'de gösterildiği gibi, merkezi oluk her bir ucunda, kültür besiyeri havuzları için sınırlarını oluşturmak için vakum yağ kullanır.
  9. PVC boru, iki 15 cm parçalar koparıp ve dikkatle hiçbir kabarcıklar tüpler oluşmaya sağlanması, boru içine agaroz enjekte çözüm için bir 18 gauge iğne ile 10 cc şırınga kullanmak ve jel 5 dakika boyunca katılaşmaya izin.
  10. Agaroz jel tüpler, Ag / AgCI elektrodları, ve kültür ortamı rezervuar olarak kullanılmak üzere boş 60 mm Petri kapları bir çift ile birlikte, bir canlı hücre görüntüleme sistemi için galvanotaksis oda aktarın ve Ag / AgCI elektrot içerir. Galvanotaksis odası 37 içinde dinlenmek için izin ° C, 20-30 dakika süreyle% 5 CO 2 ortamında.
  11. Bu süre zarfında, sondaj delikleri ile 2 boş Petri kaplarının kapakları ve galvanotaksis odasının en Petri kabı kapağı hazırlamakbunların Şekil 3 'de gösterildiği gibi bir Dremel ya da benzer araç ile içine.
  12. Pipet her boş Petri kabına merkez çukur iki yüzüne EFH-SFM veya FBS-SFM 1-1.5 ml ve SFM 7-8 ml. Her yemeğin içine galvanotaksis odasının merkezi çukur ve yerde bir Ag / AgCl elektrot her tarafında il birini Petri. Şekil 4'te gösterildiği gibi agaroz jel köprüleri ile elektriksel süreklilik kurmak için galvanotaksis haznesi ve Petri kutularına arasındaki boşluğu.
  13. Elektrik akımı ölçmek için seri bir ampermetre ile, harici bir güç kaynağına Ag / AgCl elektrot bağlayın ve güç kaynağını açın. Doğrudan merkezi çukur boyunca elektrik alanın gücünü ölçmek için bir voltmetre kullanın ve istenen elektrik alan şiddeti (Bu laboratuarda yapılan deneyler ile 250 mV / mm dcEF gücü kullanmak elde edilene kadar güç kaynağının çıkış ayarlayabilirsiniz 1 ve 1.5 mA arasında elektrik akımı).
  14. Inisiyatifite time-lapse canlı hücre görüntüleme sistemi üzerinde modül ve deney süresi istenilen miktarda için çalışmasına izin. Tahlil tamamlanmasından sonra, standart bir immun analiz için% 4 paraformaldehit içinde hücreler düzeltmek.

Sonuçlar

Kinematik analizi bir 250 mV / mm dcEF varlığında, farklılaşmamış NPC katot karşı yönlendirilmiş ve çok hızlı galvanotaksis (Şekil 5A, Film 1) gösterdiğini ortaya koymaktadır. Bir dcEF yokluğunda, hücrelerin rasgele hareketi (Şekil 5B, Film 2) görülmektedir. Bu alan gücü az, farklılaşmamış NPCs>% 98'i yansıması olduğu için tüm 6-8 saat boyunca göç ve ölü hücreleri göç etmezler çünkü bu bir dcEF yokluğunda veya varlığında bu dönemde...

Tartışmalar

Bu protokol, önceki çalışmalarda 7-9 köklü yöntemler adapte edilmiştir. Galvanotactic odaları hücre ekimi kısıtlanmasının veya merkez çukur 10,11 mikroimalat için CO2 lazer ablasyonu kullanmak için de ayrı bir cam yapım dahil olmak üzere farklı teknikler kullanarak çeşitli inşa edilebilir. Bazı teknikler diğerlerinden daha zahmetli ve masraflı olabilir. Biz genellikle çoğu hücre biyoloji laboratuvarlarında bulunan malzemeler kullanılarak bir NPC galvanotak...

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Bu çalışma Doğa Bilimleri ve Kanada'nın Mühendislik Araştırma Kurumu (hibe # 249669 ve # 482986) ve Kalp ve Kanada İnme Vakfı (hibe # 485508) tarafından finanse edilmektedir. Yazarlar deney protokolleri geliştirmek onların yardım için Youssef El-Hayek ve Dr Qi Wan ederim.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Öğenin ismi Şirket Katalog numarası Yorumlar
Sinir Prekürsör Hücre İzolasyonu
2M NaCl Sigma S5886 11.688 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü
1M KCl Sigma P5405 7.456 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü
1M MgCl2 Sigma M2393 20.33 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü
155 mM NaHCO 3 Sigma S5761 1.302 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü
0.5M Glikoz Sigma G6152 9.01 g 100 içinde çözülmüşml dH 2 O
108 mM CaCl2 Sigma C7902 1.59 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü
Penisilin-streptomisin Gibco 15070
Sığır pankreasın tripsin Sigma T1005
Koyun hyaluronidaz testisler Sigma H6254
Kynurenic asit Sigma K3375
Ovomucoid tripsin inhibitörü Worthington LS003086
DMEM Invitrogen 12100046
F12 Invitrogen 21700075
% 30 Glikoz Sigma G6152
% 7.5 NaHCO3 Sigma S5761
1M Hepes Sigma H3375 23.83 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü
L-glutamin Gibco 25030
EGF Invitrogen PMG8041 20 ul birimler halinde hormon karışımı ve kısım 1 ml sulandırın.
FGF Invitrogen PHG0226 20 ul birimler halinde hormon karışımı ve kısım 0.5 ml sulandırın.
Heparin Sigma H3149
Apo-transferrin R & D Systems 3188-AT 0.1 g 4 ml dH 2 0 içine çözünmüş
Putressin Sigma P7505 Apo-transferrin içine 9,61 mg böylece çözülürgeçirdikleri evrim
Ensülin Sigma I5500 0.1N HCl 0.5 ml içine 25 mg çözülür ve dH 2 0 3.5 ml ekleyin
Selenyum Sigma S9133
Progesteron Sigma P6149
Standart Diseksiyon araçları Güzel Bilim Araçları
Diseksiyon mikroskobu Zeiss Stemi 2000
Galvanotaksis Odası Hazırlama
Kare cam kapak slaytlar VWR 16004
6N hidroklorik asit VWR BDH3204-1
Yüksek vakum gres Dow Corning
60 mm Petri kapları Fisher Scientific 0875713A
Poli-L-lisin Sigma P4707
Matrigel BD Biosciences 354234 150 ul birimler halinde çözülme ve kısım
FBS Invitrogen 10082139 NPC farklılaşma inducing Yalnızca kullanınız aksi SFM kullanımı + EFH kültür ortamı yukarıda da belirtildiği gibi
Mikroskop Sayma Olimpos CKX41
Hücre Time-Lapse Görüntüleme Canlı
Gümüş tel Alfa Aesar 11434
Ultrapure Agaroz Invitrogen 15510-027
Isı Inactivated FBS Sigma 16140071
PVC boru Fisher Scientific 80000006 3/32 "ID x 5/32" OD
Beyazlatıcı Clorox
10 cc şırınga BD 309604
18 gauge iğne BD 305195
Dremel matkap Dremel Model 750
Ters mikroskop nemlendirilmiş, İnkübe odası ile donatılmıştır Zeiss Axiovert-200M

Tarifler

Madde Hacim
2M NaCl 6.2 ml
1M KCl 0.5 ml
1M MgCl2 0.32 mi
155mm NaHCO 3 16.9 ml
1M Glikoz 1 mL
108 mM CaCl2 0,09256 mL
Penisilin-streptomisin 1 mL
Otoklavlanmış su 74 mL

Yapay beyin omurilik sıvısı

Madde Hacim veya Yığın
Yapay beyin omurilik sıvısı 30 ml
Sığır pankreasın tripsin 40 mg
Koyun hyaluronidaz testisler 22.8 mg
Kynurenic asit 5 mg

Tripsin Çözüm

Madde Hacim veya Yığın
SFM 15 ml
Ovomucoid tripsin inhibitörü 10 mg

Tripsin İnhibitör Çözüm

Madde Hacim
Otoklavlanmış su 37 ml
10X DMEM/F12 10 mL
% 30 Glikoz 2 ml
% 7.5 NaHCO3 1.5 ml'lik
1M Hepes 0.5 ml
Transferrin, putressin çözümü 4 mL
25 mg ensülin çözelti 4 mL
Selenyum 100 & Mu; L
Progesteron 100 ul

Hormon Mix (-20 ° C'de 100 ml toplam mağaza)

Madde Hacim
Otoklavlanmış su 37.5 ml
10X DMEM/F12 (3:1) 5 ml
% 30 Glikoz 1 mL
% 7.5 NaHCO3 0.75 ml
1M Hepes 0.25 ml'lik
Hormon mix 5 ml
L-glutamin 0.5 ml
Penisilin-streptomisin 0.5 ml

Serum Ücretsiz Media EFH-SFM: EGF 10 ul, FGF 10 ul ve Heparin FBS-SFM 3.66 ul ekleyin: 0.5 ml FBS ekleyin

Madde Hacim
Matrigel 150 ul
SFM 3.6 ml

Matrigel Çözüm Matrigel kısım bir buz kutusuna yerleştirilir ve SFM ile karıştırılmadan önce viskoz bir sıvı oluşturmak için 4-5 saat içinde yavaş yavaş çözülme izin verilmelidir. Bu alt tabaka Matrigel düzgün bir tabaka oluşumunu temin edecektir. Yavaş yavaş çözülmüş değil, elde edilen substrat muhtemelen hücre göçü engelleyen, Matrigel kümeleri ihtiva edecektir.

Madde Hacim veya Yığın
Ultrapure Agaroz 10 ml GKD 2 0 içinde 300 mg
SFM
Isı İnaktive FBS
8 ml
2 ml

MatrigelÇözelti bir 15 cc şahin tüp içinde 2 ml ısı ile aktifliği giderilmiş FBS SFM 8 ml karıştırılır. Mix 10 ml GKD bir Erlenmeyer şişesinde 2 0 ile agaroz ve 10 sn aralıklarla 30 saniye mikrodalga ısı, her 10 sn aradan sonra mikrodalga çözüm kaldırmak ve iyice karışması sağlanır. Son 10 sn mikrodalga döneminin ardından, 57 ° C su banyosunda SFM / FBS çözüm ve mağaza ile agaroz çözüm karıştırmak.

Referanslar

  1. Borgens, R. B., Shi, R. Uncoupling histogenesis from morphogenesis in the vertebrate embryo by collapse of the transneural tube potential. Dev. Dyn. 203, 456-467 (1995).
  2. Song, B., Zhao, M., Forrester, J. V., McCaig, C. D. Electrical cues regulate the orientation and frequency of cell division and the rate of wound healing in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 13577-13582 (2002).
  3. Song, B., Zhao, M., Forrester, J., McCaig, C. Nerve regeneration and wound healing are stimulated and directed by an endogenous electrical field in vivo. Journal of Cell Science. 117, 4681-4690 (2004).
  4. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  5. Reynolds, B. A., Weiss, S. Clonal and population analyses demonstrate that an EGF-responsive mammalian embryonic CNS precursor is a stem cell. Dev. Biol. 175, 1-13 (1996).
  6. Chiasson, B. J., Tropepe, V., Morshead, C. M., vander Kooy, D. Adult mammalian forebrain ependymal and subependymal cells demonstrate proliferative potential, but only subependymal cells have neural stem cell characteristics. J. Neurosci. 19, 4462-4471 (1999).
  7. Erickson, C. A., Nuccitelli, R. Embryonic fibroblast motility and orientation can be influenced by physiological electric fields. J. Cell Biol. 98, 296-307 (1984).
  8. Zhao, M., Agius-Fernandez, A., Forrester, J. V., McCaig, C. D. Orientation and directed migration of cultured corneal epithelial cells in small electric fields are serum dependent. J. Cell Sci. 109, 1405-1414 (1996).
  9. Li, L. Direct-Current Electrical Field Guides Neuronal Stem/Progenitor Cell Migration. Stem Cells. 26, 2193-2200 (2008).
  10. Song, B. Application of direct current electric fields to cells and tissues in vitro and modulation of wound electric field in vivo. Nat. Protoc. 2, 1479-1489 (2007).
  11. Huang, C. -. W., Cheng, J. -. Y., Yen, M. -. H., Young, T. -. H. Electrotaxis of lung cancer cells in a multiple-electric-field chip. Biosen Bioelectron. 24, 3510-3516 (2009).
  12. SATO, M. Input-output relationship in galvanotactic response of Dictyostelium cells. Biosystems. 88, 261-272 (2007).
  13. Meng, X. PI3K mediated electrotaxis of embryonic and adult neural progenitor cells in the presence of growth factors. Exp. Neurol. 227, 210-217 (2011).
  14. Zhao, M. Membrane lipids, EGF receptors, and intracellular signals colocalize and are polarized in epithelial cells moving directionally in a physiological electric field. The FASEB Journal. , (2002).
  15. Fang, K., Ionides, E., Oster, G., Nuccitelli, R., Isseroff, R. Epidermal growth factor receptor relocalization and kinase activity are necessary for directional migration of keratinocytes in DC electric fields. J. Cell Sci. 112, 1967-1976 (1999).
  16. McCaig, C. D. Controlling Cell Behavior Electrically: Current Views and Future Potential. Physiol. Rev. 85, 943-978 (2005).
  17. Morshead, C. M., Benveniste, P., Iscove, N. N., vander Kooy, D. Hematopoietic competence is a rare property of neural stem cells that may depend on genetic and epigenetic alterations. Nat. Med. 8, 268-273 (2002).
  18. Babona-Pilipos, R., Droujinine, I. A., Popovic, M. R., Morshead, C. M. Adult Subependymal Neural Precursors, but Not Differentiated Cells, Undergo Rapid Cathodal Migration in the Presence of Direct Current Electric Fields. PLoS ONE. 6, e23808 (2011).
  19. Deuschl, G. A Randomized Trial of Deep-Brain Stimulation for Parkinson's Disease. N. Engl. J. Med. 355, 896-908 (2006).
  20. Stone, S. S. D. Stimulation of Entorhinal Cortex Promotes Adult Neurogenesis and Facilitates Spatial Memory. J. Neurosci. 31, 13469-13484 (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

N robilimSay 68Biyomedikal M hendisli iH cresel BiyolojiFizyolojiMolek ler Biyolojin ral prek rs r h creleriningalvanotaksish cre gtime lapse g r nt lemeelektrik alanlar

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır