JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Verimli bir genom tek gen mutasyonu yöntemi kullanılarak oluşturulmuştur Streptococcus sanguinis Bir model organizma olarak. Bu yöntem yüksek verimlilik rekombinant PCR ve dönüşümler yoluyla elde etti.

Özet

Transposon mutagenez ve tek gen delesyonu bakteriler 1,2 genom gen nakavt uygulanan iki yöntem vardır. Transposon mutagenesis, daha az zaman alan daha az maliyetli ve tamamlanmış genom bilgi gerekli değildir olmasına rağmen, bu yöntem iki zayıf vardır: azalma ile rekabet mutantlar karşı seçer ve bu karışık mutant kütüphanesi içinde bir farklı mutantların (1) olasılığı; ve (2) kısmi gen inaktivasyonu olasılığını sayede genlerin tamamen transposonun yerleştirilmesinin ardından kendi işlevini kaybetmek yok. Tek gen silme analizi transpozon mutasyon ile ilgili dezavantajları telafi edebilir. Genom tek gen delesyonu verimini artırmak için, bir model organizma olarak Streptococcus sanguinis kullanarak genom tek gen delesyonu için yüksek-throughput tekniği kurmaya çalışacaktır. Her gen delesyonu S. inşa sanguinis genom 1 ihtiva şekilde tasarlanmıştırHedefli gen, APHA-3 geni kodlayan, kanamisin e dirençli protein ve hedeflenen gen 1-kb akış aşağı-yukarı kb. Primerler F1/R1, F2/R2, ve F3/R3 üç set, sırasıyla tasarlanmış ve her bir silme, bu üç parçalarını inşa PCR büyütmesi için-96-kuyucuklu bir plaka biçiminde sentezlenir. Primerler, R1 ve F3 kendi 5 'ucunda APHA-3 gen bölgeleri için tamamlayıcı olan 25-bp sekanslar içerir. APHA-3 geninin büyük ölçekli bir PCR amplifikasyon tüm tek gen silme yapıları oluşturmak için bir kez gerçekleştirilir. APHA-3 geninin promotörü başlangıçta kanamisin kaseti potansiyel kutup etkisini en aza indirmek için dahil edilir. Gen silme yapıları oluşturmak için yüksek verimli, PCR saflaştırma 96 çukurlu bir levha formatında gerçekleştirilir. Her gen delesyonu için doğrusal bir rekombinant PCR amplikon yüksek sadakat DNA polimeraz kullanılarak dört PCR reaksiyonları aracılığıyla yapılacaktır. Ilk exponS. ential büyüme fazı % 2.5 inaktive at serumu PCR-rekombinant yapıların dönüşümü için yeteneklerini artırmak için kullanılan Todd Hewitt broth kültürü sanguinis desteklenmiştir. S. Bu koşul altında,% 20'ye kadar sanguinis hücrelerin DNA ~ 50 ng kullanılarak dönüştürülebilir. Bu yaklaşıma göre, tek gen silinmesi ile 2.048 nihai mutant S. 2.270 genler elde edildi dört gen ORF hariç sanguinis S. başka ORF tamamen kaplayabilir sanguinis SK36 ve 218 potansiyel elzem genler. Gen delesyonu yapıları oluşturma konusunda teknik, yüksek verim ve herhangi bir dönüştürülebilir bakteri genomu tek gen delesyonlar kullanımı kolay olabilir.

Protokol

1. Primer Tasarım

  1. Astarlar S. dayalı ev komut kullanılarak tasarlanmıştır sanguinis SK36 genom dizisi. Primerler, F1/R1, F2/R2, ve F3/R3 üç set hedef gen, APHA-3 kodlaması, kanamisin e dirençli gen (Km r) protein 3 ve 1 1-kb yukarısında sekans amplifikasyonu için tasarlanmış sırasıyla, hedef gen, bir-kb aşağı sekansı (Şekil 1). Bu primerler arasında, F1 ve R3 programları EMBOSS paketi (içinde ePrimer3 kullanılarak tasarlanmıştır http://emboss.sourceforge.net/apps/cvs/emboss/apps/index.html hedefin yukarı veya aşağı komşu bölgeleri yükseltmek için) Gen. Gene özgü primerler, R1 ve F3, 5 've 3' dizileri hedef genin bağlı olarak tasarlanmıştır. R1 ve F3 primerler APHA-3 tamamlayıcı olan kendi 5 'ucunda 25 bp'lik adaptör dizisi içerenGen. Her bir primerin erime sıcaklığına yakın olan bir ila 60 ° C 96-gözlü formata bütün PCR reaksiyonları için tavlama sıcaklık üniform bir kullanımını sağlamaktır. Olacak şekilde tasarlanmıştır
  2. F1, R1, F3 ve R3, primerler bir gen sırasına göre 96 oyuklu levhalar içinde sentezlendi. Her bir plaka, aynı gen için primerlerin bir türünü içerir. Çok kanallı bir pipet kullanılarak PCR amplifikasyonu için 10 uM'lik bir son konsantrasyon 96-kuyu çalışma astar levha içinde primerler seyreltilir.

2. Yüksek throughput PCR Amplifikasyon ve Saflaştırılması

  1. High-throughput yükseltmek için 1-kb yukarısında veya hedef S. mansap sanguinis genler, 1640 ul GKD 2 O, 250 ul 10xHigh Fidelity PCR Tamponu, 10 mM dNTP karışımı 200 ul, 50 mM 100 ul MgSO4, 100 ul ihtiva eden bir 15-ml konik bir tüp içinde buz üzerinde bir PCR kokteyl karışım birleştirmek 10 ul / ng S. sanguinis SK36 genomik DNA ve 10 ul Platin Taq DNA polymerase yüksek sadakat ve transferi çok kanallı pipet kullanarak 96-PCR plaka üzerinde her kuyuya karışımı 23 ul. Kanallı bir pipet kullanılarak PCR plaka için astar plakalar çalışan 10 uM her F1 ve R1, (ya da F3 ve R3 taban düzenekleri) 1 ul aktarın. PCR plate Mühür ve 1.5 dk 30 sn ve 68 ° C 30 sn 1 dk ve 94 ° C 30 döngü, 54 ° C için 94 ° C'de amplifikasyon gerçekleştirin.
  2. % 1 agaroz jel 48 kuyu montaj kanallı pipet yükleme ile etidyum bromür içeren hazırlayın. 96-plaka üzerine 5xDNA yükleme tamponu 1 ul 4 ul PCR ürünü karıştırın ve 10-ul kanallı pipet kullanarak agaroz jel üzerinde örnekleri yükleyebilirsiniz. 30 dakika için 135 V elektroforez çalıştırın. UVP dokümantasyon ve analiz sistemi altında jel üzerinde bant inceleyin.
  3. Üreticinin talimatlarına göre santrifüj kullanılarak PureLink 96 PCR saflaştırma kiti ile PCR ürünleri arındırın. DNA salınımlı için, b kuyuya 40 ul steril GKD 2 O ekleyinplaka inding.
  4. Rasgele Nanodrop spektrofotometre kullanılarak DNA konsantrasyonları incelemek için plaka üzerinde birçok saflaştırılmış amplikonlarının almak. Plaka üzerinde amplikonlarının konsantrasyon ayarlama için ~ ul / 10 ng.
  5. Bir plazmid içeren Km r kaset PCR şablon olarak EcoR ben kullanılarak sindirilir. Sindirilen plazmid QIAquick PCR saflaştırma kiti ile arındırıldı ve doğrusal plazmid DNA son DNA konsantrasyonu 10 ng / ml 'den ayarlanır. SO 16.4 ul GKD 2 O, 2.5 ul 10xHigh Fidelity PCR Tamponu, 10 mM dNTP karışımı 2 ul 50 mM Mg 1 ul içeren Km r kaset amplikon için 25 ul karışım birleştirin 4, 10 uM, F2, 1 ul 1 ul 10 uM R2, 1 ul doğrusal plazmid DNA ve 0.1 ul Platin Taq DNA polimeraz yüksek aslına uygunluk. ° C 1 dakika, 30 saniye ve 68 saniye için 30 için 1 dakika, ve 94 ° C'de 30 döngü, 55 ° C de 94 ° C 'de PCR amplifikasyon gerçekleştirin. % 1 agaroz jel elektroforezi ile PCR ürünü inceleyin. PooQIAquick PCR saflaştırma kiti ile 10 ayrı PCR saflaştırılmış gelen Km r kaset Amplikon la toplu. 10 ng / ul Amplikon konsantrasyonunu ayarlayın.
  6. Son lineer rekombinant PCR amplikon elde etmek için, üç PCR amplikonlarının de PCR şablon olarak bir PCR plate her 1 ul (yaklaşık eşit molar miktarlarda) ile birleştirilir. Diğer bileşenler PCR SO 14.4 ul GKD 2 O, 2.5 ul 10xHigh Fidelity PCR Tamponu, 10 mM dNTP karışımı 2 ul 50 mM Mg 1 ul da dahil olmak üzere eklenir 4, 10 uM F1 1 ul, 10 uM, R3 1 ul, 0.1 ul Platinum Taq DNA polimeraz yüksek sadakat. PCR amplifikasyon 4 dk için 3.5 dakika ve son olarak da 68 ° C 30 sn için ve 68 ° C, 30 saniye 55 ° C, 2 dakika, 94 ° C'de 30 döngü için 94 ° C sıcaklıkta gerçekleştirilir.
  7. Agaroz jel üzerinde PCR amplikonlar inceleyin. Arındırmak ve yukarıda tarif edildiği gibi PCR amplikonlar ölçülmesine imkan verirler. -20 ° C'de rekombine PCR amplikonlarının dondurun

3. Competent Hücreler Hazırlık

  1. Todd Hewitt et suyu hazır hale getirilir, oda sıcaklığına kadar soğutuldu ve 0.22 um filtre polistiren 4 kullanarak sterilize sonra kaynamaya kadar ısıtıldı ve 10 N NaOH kullanılarak 7.6 pH değeri ayarlanmış. TH + HS orta telafi etmek için 15 ml konik tüp içinde 11.7 ml Todd Hewitt suyuna 300 ul ısı inaktive at serumu (% 2.5 final konsantrasyon) ekleyin. Tablet TH + HS orta 2 ml ve tüpler 10 ml içine.
  2. Stokta S. 5 ul inoküle sanguinis SK36 2 ml TH + HS ortama -80 ° C'de dondurulmuş ve 37 sıkıca kapatma ile gecede kültür inkübe 10 ml-TH + HS tüp pre-kuluçkaya eşliğinde ° C,.
  3. Gece boyunca sonra, 10 ml TH + HS içine 50 ul kültür aktarmak ve 3 saat (0,07-0,08 OD 660 tekabül eder), 37 ° C de inkübe tüp, hemen dönüşüm için kullanarak.

4. Hücre Dönüşüm ve Antibiyotik Seçimi

  1. 70 ng S. 2 ul ekleyin sanguinis SK36 yetsistans uyarıcı peptid (CSP) ve 37 blok 96-iyi ve onları ön ısıtma üzerine Eppendorf tüplerine 2 ul doğrusal rekombinant PCR amplikon (~ 50 ng) ° C Her tüpe 3 sa-inkübatöre SK36 kültürün 330 ul aktarın. 1 saat boyunca 37 ° C'de inkübe edin. Kontrol olarak steril GKD 2 O ile DNA değiştirin.
  2. Buz bloğu yerleştirin ve 500 mg / ml kanamisin beyin kalp infüzyon (BHI) agar plaka üzerinde her dönüşümün 100 ul yayıldı. Mikroaerobik koşullar altında 2 d, 37 ° C de inkübe plakaları.

5. Mutant Onay ve Depolama

  1. Her yedek mutant için, rastgele, 2 ayrı koloniler pick up 5 ml BHI 500 mg / ml kanamisin içeren haline koloni aşılamak ve 37 microaerobically gecede inokulum inkübe ° C -80% 30 gliserol, her kültür Cryopreserve ° C
  2. Beklenen gen replasman içeren mutant, koloni her mutant kullanarak F1 için PCR ve R3 gerçekleştirmek olmadığını incelemek için96-kuyulu plakalı olarak PCR primerleri. Tek koloni ila yaklaşık 1 ul gece boyunca kültür 25 ul PCR amplifikasyon reaksiyonu içinde şablon DNA olarak kullanılmıştır. PCR ° C'de 3.5 dakika ve son olarak da 68 ° C'de 4 dakika için 30 saniye ve 68 için 30 saniye, 55 ° C'de 5 dakika, 94 ° C'de 35 döngü için 94 ° C sıcaklıkta gerçekleştirilir.
  3. Tam çift bant mutantlar veya kirletici PCR amplikon tanımlamak için, etidyum bromid boyama ile> 12 cm uzunluğunda% 2'lik agaroz jel üzerinde 4 saat elektroforez ile PCR amplikon inceleyin. Bu agaroz jel elektroforez koşulu altında, ≥ 100 bp farkı ile herhangi amplikonlarının açıkça belirlenmiştir. Km r kaset amplifikasyon ve vahşi türdeki kaynaklanan bantları bir iç T1 astar vahşi tip geni PCR ile tespit edilebilir olup olmadığını belirlemek için kullanılır <100 bp, göre farklı beklenen zaman.
  4. İlave Silme işlemini onaylamak için, amplikonlarının PureLink 96 PCR saflaştırma kiti ile saflaştırılmış ve hangi P1 astar kullanılarak dizilerekKm r kaseti bağlanır. Sekanslama tarafından onaylandıktan sadece doğru mutantlar tutun.

Sonuçlar

Sonra PCR primerleri, F1 ve R1 kullanılarak amplifikasyon, ve F3 ve R3'ün her biri S. yaklaşık 1 kb yukan ve aşağı sanguinis gen 96-gözlü formata, sırasıyla (Şekil 2A) halinde elde edildi. Bizim PCR koşulları ve kullanılarak tasarlanmış primerler altında, belirli bir ürün S. amplifiye edildi Her bir PCR reaksiyonu içinde sanguinis genomik DNA. Bu sonuç primerlerin S. hedeflerine çok özel olduğunu göstermiştir sanguinis....

Tartışmalar

İlk astar tasarımı sırasında komşu genler üzerinde dışsal antibiyotik gen ile bir hedef genin değiştirilmesi mümkün polar etkilerini en aza indirmek için, iki adım alınır. Silinen genlerin çoğu için, primerler R1 ve F3 önce stop kodonu ile 30 bp için başlangıç ​​kodonu takip eden 6 bp gelen kodlama bölgesindeki silmek için tasarlanmıştır. Son 30 baz çifti bitişik aşağı gen tarafından kullanılan potansiyel ribozomal bağlanma yeri korumak için korunur. Iki komşu genler arasında...

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Bu çalışma, Virginia Commonwealth Üniversitesi Başkanlık Araştırma Teşvik Programı (PRIP) 144602-3 (PX) tarafından, Sağlık (PX) Ulusal Enstitüleri ile hibe R01DE018138 tarafından kısmen desteklenmiştir. Biz Dr teşekkür ederim. Lei Chen, genom çapında mutantların inşaatı ile yardım için Yuetan Dou ve Wang Xiaojing. Biz de DNA dizi için Virginia Commonwealth Üniversitesi'nde DNA Çekirdek Tesis ederim.

Malzemeler

İsimler Şirket Katalog # Yorumlar (isteğe bağlı) Amerikan

NameCompanyCatalog NumberComments
Astar F2 Entegre DNA Teknolojileri TGACTAACTAGGAGGAATAAATG
GCTAAAATGAGAATAT
Astar R2 Ibid CATTATTCCCTCCAGGTACTAAAA
CAATTCATCCAGT
Astar F2P Ibid GATAAACCCAGCGAACCATTTGA
Astar P1 Ibid GCTTATATACCTTAGCAGGAGACA
Astar P2 Ibid GTATGACATTGCCTTCTGCGTCC
Astar 5 'end_R1_seq Ibid GCCATTTATTCCTCCTAGTTAGTCA
Astar 5 'end_F3_seq Ibid GTTTTAGTACCTGGAGGGAATAATG
Astar 5 'end_R1p_seq Ibid CCTCAAATGGTTCGCTGGGTTTATC
CSP Synprep Dizi: NH2-DLRGVPNPWGWIFGR-COOH
DNA Polimeraz Invitrogen 11304-102 Platinum Taq DNA Polimeraz High Fidelity
EcoRI New England Biolabs Inc R0101S Restriksiyon enzimi
Agar AB01185
Agaroz Promega V3125
BHI BD Biosciences 237.500 Beyin Kalp İnfüzyon
At serumu Fisher Scientific SH3007403 At serumu
Km Fisher Scientific BP906-5 Kanamisin
TH broth BD Biosciences 249.240 Todd Hewitt broth
PureLink 96 Invitrogen K310096 PureLink 96 PCR saflaştırma kiti
QIAquick Qiagen 28106 QIAquick PCR saflaştırma kiti
Filtre Corning 431.117 0.22 mikron polistiren filtre
Anoxomat Sistemi Mart Mikrobiyoloji bv Anoxomat Mark II
Masa Üstü Santrifüj Thermo Scientific 75004377 Sorvall Legend RT Plus mikroplaka rotor
Jel Dökümantasyon UVP LLC BioDoc-O 210
İnkübatör Fisher Scientific 11-690-625D Isotemp
Labnet kullanıcısının Jel XL Labnet E0160 Labnet kullanıcısının Jel XL
Mikrosantrifüj Eppendorf 22621408 Mikrosantrifüj 5415 R
Çok Kanallı pipetler Termo scientfic 4661040, 4661020 Finnpipette F1
Termal Cycler Uygulamalı Biosystems Inc N805-0200 GeneAmp PCR sistemi 9700

Referanslar

  1. Sassetti, C. M., Boyd, D. H., Rubin, E. J. Genes required for mycobacterial growth defined by high density mutagenesis. Mol. Microbiol. 48, 77-84 (2003).
  2. Kobayashi, K., et al. Essential Bacillus subtilis genes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 4678-4683 (2003).
  3. Trieu-Cuot, P., Courvalin, P. Nucleotide sequence of the Streptococcus faecalis plasmid gene encoding the 3'5"-aminoglycoside phosphotransferase type III. Gene. 23, 331-341 (1983).
  4. Paik, S., et al. Identification of virulence determinants for endocarditis in Streptococcus sanguinis by signature-tagged mutagenesis. Infect. Immun. 73, 6064-6074 (2005).
  5. Lukomski, S., et al. Nonpolar inactivation of the hypervariable streptococcal inhibitor of complement gene (sic) in serotype M1 Streptococcus pyogenes significantly decreases mouse mucosal colonization. Infect. Immun. 68, 535-542 (2000).
  6. Baba, T., et al. Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection. Mol. Syst. Biol. 2, (2006).
  7. de Berardinis, V. A complete collection of single-gene deletion mutants of Acinetobacter baylyi ADP1. Mol. Syst. Biol. 4, 174 (2008).
  8. Rodriguez, A. M., et al. Physiological and molecular characterization of genetic competence in Streptococcus sanguinis. Mol. Oral. Microbiol. 26, 99-116 (2011).
  9. Perry, D., Kuramitsu, H. K. Genetic transformation of Streptococcus mutans Infect. Immun. 32, 1295-1297 (1981).
  10. Pakula, R., Walczak, W. On the nature of competence of transformable streptococci. J. Gen. Microbiol. 31, 125-133 (1963).
  11. Datsenko, K. A., Wanner, B. L. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 6640-6645 (2000).
  12. Xu, P., et al. Genome-wide essential gene identification in Streptococcus sanguinis. Sci. Rep. 1, (2011).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

GenetikSay 69MikrobiyolojiMolek ler BiyolojiBiyomedikal M hendisli iGenomikStreptococcus sanguinisStreptococcusGenom ap nda gen delesyonlargenlerY ksek verimlilikPCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır