JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol ile veya trombin tedavi olmadan insan pulmoner mikrovasküler endotel hücrelerinde profili transcriptomes RNA-seq, güçlü bir nesil DNA dizileme teknolojisi, uygulamak için tam ve ayrıntılı prosedür sunar. Bu protokol, farklı reaktifler veya hastalık durumlarında etkilenen çeşitli hücreleri veya dokulara genellenebilir olduğunu.

Özet

MRNA seviyelerinin ölçümü yoluyla hücrelerinde gen ekspresyonu karakterizasyonu hücrenin transkripsiyonel makine harici sinyaller (örneğin uyuşturucu tedavisi), veya nasıl hücreler sağlıklı bir devlet ve bir hastalıklı durum arasındaki farklılıklar nasıl etkilendiğini belirlemede yararlı bir araçtır. Nesil DNA dizileme teknolojinin gelişi ve sürekli arıtma ile, RNA-sıralama (RNA-seq), transkript bütün türlerin kataloğa tüm ifade genlerin transkripsiyonel yapısını belirlemek ve ölçmek için transcriptome analiz giderek daha popüler bir yöntem haline gelmiştir belirli bir hücre, doku veya organizma 1,2 transkript toplam grubu değişen ifade seviyeleri. RNA-seq kademeli olarak tam bir profil transcriptome avantajlara sahiptir çünkü, transcriptome analiz için tercih edilen bir yöntem olarak DNA mikroarrayleri yerine bir tür dijital veri (herhangi bir transkript kopya sayısı) sağlayan ve bilinen herhangi bir genomik istif güvenmek içince 3.

Burada, biz veya trombin tedavi olmadan insan pulmoner mikrovasküler endotel hücrelerinde profili transcriptomes RNA-seq uygulamak için tam ve ayrıntılı bir protokol mevcut. Bu protokol başlıklı bizim son yayınlanan araştırmaya dayanmaktadır başarılı insan pulmoner mikrovasküler endotel hücrelerinin ilk tam transcriptome analizi icra ettiği 4 "RNA-seq Trombin ile Tedavi İnsan pulmoner mikrovasküler endotel hücrelerinde Genlerin ve Bunların İzoformlar, Romanı transcriptome ortaya çıkarır" trombin RNA-seq kullanarak tedavi. Bu inflamatuvar koşulları, kanser, diyabet ve koroner kalp hastalığı patogenezinde trombin aracılı endotel disfonksiyonu moleküler mekanizmaları içgörüler kazanmak için daha sonraki denemeler için görülmemiş kaynaklar vermiştir ve bu hastalıklar için tedavi hedefleri için potansiyel yeni müşteriler sağlar.

Bu protokolün açıklayıcı metindört bölüme ayrılmıştır. Birinci bölüm trombin ve RNA izolasyonu, kalite ve miktar ile analiz insan akciğer mikrovasküler endotel hücrelerinin tedavisi açıklanmaktadır. İkinci bölümde kütüphane oluşturma ve sıralama açıklar. Üçüncü kısım veri analizi açıklanmıştır. Dördüncü bölüm, bir RT-PCR testi doğrulama açıklanmaktadır. Birkaç kilit adımlar Temsilcisi sonuçları görüntülenir. Önemli adımlar başarı artırmak için Yararlı ipuçları veya önlem Tartışma bölümünde verilmiştir. Bu protokol trombin ile tedavi insan pulmoner mikrovasküler endotel hücrelerinde kullanmasına rağmen, memeli ve non-memeli hücrelerinde hem de farklı uyaranlara veya inhibitörleri, ya da sağlıklı bir devlet arasındaki hücre veya dokularda transcriptomes karşılaştırmak ile tedavi dokularda profili transcriptomes jeneralize olabilir ve bir hastalık durumu.

Protokol

Bu protokol özetleyen bir akış şeması Şekil 1 'de gösterilir.

1. Trombin, RNA İzolasyonu, RNA Kalitesi Değerlendirme ve Ölçülmesi ile Hücre Tedavisi

  1. % 5 FBS, büyüme faktörleri ve antibiyotik ile EGM-2 orta boy 6-kuyucuğu yılında% 90-100 izdiham Kültür İnsan Akciğer Mikrovasküler Endotel Hücreleri (HMVEC-LBL) (Lonza, cat # CC-3202).
  2. Açlık medya (0% FBS) öncesinde trombin ile tedaviye 30 dakika ortam değiştirin.
  3. 0.05 U / ml trombin ile hücrelerin tedavi ya da ° C ve% 5 CO2 37, 6 saat süreyle, bir kontrol olarak tedavi bırakın.
  4. Üreticinin talimatlarına uygun olarak Ambion mir Vana kiti kullanılarak tedavi edilen ve kontrol hücrelerinden toplam RNA izole edin.
  5. Experion Otomatik Elektroforez İstasyonu (ilgili standart protokole göre bir Experion StdSense Ökaryotik RNA çip ile RNA kalitesini değerlendirmek= "_blank"> Www.bio-rad.com).
  6. Bir standart spektrofotometrik yöntem kullanılarak RNA ölçülmesine imkan verirler.

2. Kütüphane İnşaat ve Dizileme

  1. Başlangıç ​​maddesi olarak örnek için yüksek kalitede toplam RNA'nın 1 mg kullanımı.
  2. Kütüphane oluşturmak için, Illumina (protokol # 15008136 Rev A) 'dan standart prosedürü izleyin. Bu protokolde, poli iki tur (A) içeren mRNA seçimleri rRNA dizi minimize etmek rRNA kaldırmak için yapılır.
  3. Experion Otomatik Elektroforez İstasyonu (ilgili standart protokole göre bir Experion DNA 1K çip kullanan kütüphanelerin kalitesini değerlendiriniz www.bio-rad.com ).
  4. QPCR kullanarak kütüphane sayısal: önce bir standart eğri ve bağlanan bağdaştırıcıları için spesifik primerler olarak dizisi edilmiş bir kütüphane kullanın. Bilinmeyen kütüphaneleri (yani 1:100, 1:500 ve 1:1,000) dilüsyonlarının bir dizi kullanın. QPCR ACCO çalıştırınSyberGreen MM protokol rding ve her kütüphanenin orijinal stok miktarını hesaplamak.
  5. Küme bir akış hücresi hazır olana kadar -20 ° C'de 10 nM ve saklamak için kütüphane stok sulandırınız.
  6. Ne zaman küme bir akış hücresi hazır, bir su banyosunda CBOT reaktif plaka eritin. CBOT küme oluşturma sürecini hızlandırmak için kullanılan bir Illumina araçtır.
  7. CBOT enstrüman yıkayın.
  8. Kütüphaneleri denatüre:, tüpün yönünde 13 ul TE 1x ve 6 ul 10 uM ve kütüphane, Kombine 1 ul 1 N NaOH (Illumina tarafından sağlanan) ekleyin. Vorteks, aşağı dönüş 5 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir ve buz üzerinde denatüre kütüphaneleri yerleştirin.
  9. Kütüphaneleri inceltilir 12:00 arasında bir nihai konsantrasyon için 996 ul HT1 ve 4 ul denatüre kütüphane birleştirilmesi ile önceden soğutulmuş bir hibridizasyon tampon ile denatüre kütüphaneleri (HT1, Illumina tarafından sağlanmaktadır) seyreltilir. Buz üzerinde denatüre ve seyreltilmiş kütüphaneler yerleştirin.
  10. , CBOT levha tüplerin her sıra InvertTüm reaktifler çözülmüş olmasının sağlanması. Plaka aşağı Spin, / delinmeye folyo mühürler kaldırmak ve CBOT üzerine yerleştirin.
  11. Bir şerit tüp seyreltilmiş, denatüre kütüphanelerin kısım 120 ul, 1-8 etiketli. Bir kontrol başak-gibi her tüpe 1,2 ul seyreltilmiş, denatüre phix kontrol kitaplığı (Illumina dan itibaren) ekleyin. Vortex ve tüpler aşağı spin ve doğru yönde CBOT (sağ tüp # 1) yükleyin.
  12. CBOT üzerine bir akış hücresi ve manifoldu yükleyin.
  13. Akışını kontrol ve kümelenme çalışma başlar tamamlayın.
  14. Çalışma tamamlandıktan sonra, tüm kulvarları arasında reaktif teslim edin. Herhangi bir anormallik not edin. Ya 4 ° C'de hemen dizi çalışma başlatmak veya sağlanan tüp içinde akış hücresi depolamak
  15. Sıralama-by-sentez (SBS, Illumina) reaktifler çözülme.
  16. Dilinim karışımı dokunduktan sonra diğer reaktifler dokunmamaya dikkat ederek, reaktif tepsileri uygun noktalar reaktifleri yerleştirin.
  17. Bir hayır kullanman-sıralama akış hücresi (yani önceden sıralandı biri), asal reaktif çizgiler iki kez.
  18. İyice% 70 EtOH ve lens kağıt ardından% 70 EtOH ve Kimwipes ile sıralama akış hücresi, temizleyin. Herhangi çizgiler akış hücresi inceleyin. Gerekirse yeniden temizleyin.
  19. Sequencer üzerine akış hücresi yükleyin ve manifoldlar ve akış hücresi arasındaki mühür sıkı olduğundan emin olmak için kontrol akışı gerçekleştirin.
  20. Sıralama çalışma başlatın.
  21. Onlar çalıştırması sırasında kullanılabilir hale kalite ölçütleri (küme yoğunluğu, örneğin filtre geçen kümeleri, S30, yoğunluk) değerlendirin.
  22. Çalışma süresince yoğunluğunu izleyin.
  23. 101 döngüleri tamamlandıktan sonra, ikinci okumak tamamlamak için dönüş kimya gerçekleştirin: Eşleştirilmiş sonuna reaktifler ve ikinci okuma Ortaklığımız Buffer (ICB, SBS reaktiflerin bir bileşeni, Illumina) çözülme ve reaktifler yükleyin.
  24. 2. yoğunluğu, S30 bir okuma değerlendirirken, sıralama çalışma devamçalışma ilerledikçe nd diğer kalite ölçütleri.

3. Veri Analizi

  1. Her numune için tek fastq dosyasının oluşturulmasını sağlamak için 0 fastq-küme sayısı ayarı. Fastq dosyaları tabanı çağrı dosyaları (. Bcl) dosyalarını dönüştürmek için casava (Illumina, şu anda 1.8.2) en son sürümünü kullanın . Aşağı analiz için fastq dosyaları açın.
  2. RNA-seq ultra high-throughput kısa okuma hizalama (Papyon, 0.12.7) 6 ve SAMtools (0.1 kullanarak memeli ölçekli genom okur hizalar Tophat (1.4.1) 5, en son sürümlerini kullanarak eşleştirilmiş sonuna hizalama gerçekleştirin. 17) 7. SAMtools SAM biçiminde sonrası işleme hizalanmalar için çeşitli araçlar uygular. Referans insan transcriptome iGenomes (indirilebilir www.illumina.com ). Tophat çalıştıran, biz fr-unstranded (varsayılan) olarak kütüphane türü seçeneği dahil olmak üzere tüm varsayılan parametre ayarları kullanılır.
  3. Bize8. yazılım paketi programı CuffDiff, kol düğmesi parçası (1.3.0) 'a ing insan referans transcriptome esas olarak önceki farklı olarak ifade edilen gen transkript dışarıda bırakmak için, kontrol hücreleri ile trombin ile tedavi edilen hücreler karşılaştırın. Bu karşılaştırma bilinen transkript diferansiyel ifadesi algılar. Tablo şeklinde sonuç görselleştirmek için Microsoft Excel kullanın. Kol Düğmeleri program çalışırken, biz tüm varsayılan parametre ayarları kullanılır. FPKM <0.05 ve p> olanlar gen transkript 0.05 filtrelenir.
  4. Roman izoformları algılamak için, bir referans transcriptome olmadan Kol Düğmeleri çalıştırın. Cuffcompare kullanılarak referans genomuna örnek transkript dosyaları karşılaştırın ve bir analiz için referans genomu ve bir ikinci analiz için referans genom olarak birleştirilmiş kontrol transkript dosyaları olarak birleştirilmiş trombin transkript dosyaları kullanılarak Cuffdiff ile diferansiyel ifade test edin. Tablo biçiminde sonuç görselleştirmek için Microsoft Excel kullanın. Yine, ThosFPKM <0.05 ve p> E gen transkript 0.05 filtrelenir. Bu adımdan sonra, araştırmacılar UCSC Genom Tarayıcı web sitesi (için yeni rapor transkript bir listesini yüklemeyi tercih edebilirler http://genome.ucsc.edu/ bir elle muayene ederek geçerliliğini doğrulamak için).
  5. Yaratıcılık Pathway Analizi (IPA, değişik şekillerde ifade genlerin listeleri gönderin www.ingenuity.com trombin tedavi etkilenen genlerin ve yolların karakterizasyonu için). Bu adımda, müfettişler kuşak (kullanmayı tercih edebilir http://compbio.mit.edu/cummeRbund/ görselleştirmek, yönetmenize yardımcı olmak için), Kol Düğmeleri RNA-seq çıkış irdeleme görevini yardım ve kolaylaştırmak için tasarlanmış bir R paketi, ve bir analiz Cuffdiff tarafından üretilen verinin her entegre.

4. Kantitatif Gerçek-zamanlı-Po tarafından RNA-seq Sonuçlar Validasyonulymerase Zincir Reaksiyonu (qRT-PCR)

  1. Kontrol ve trombin-işlenmiş HMVEC-LBL hücreleri, RNA kalite değerlendirmesi ve 1.6 Adımlar 1,4 açıklanan RNA miktarının toplam RNA izolasyonu gerçekleştirin.
  2. Üreticinin talimatlarına (Invitrogen, 18080-051) takip Üst Simge III Üretim-Strand Sentez Sistemi RT Kitleri ile her bir örnek 1 mg total RNA, gelen tamamlayıcı DNA oluşturun.
  3. CUGBP, Elav-likefamilymember1 (CELF1, Hs00198069_m1), Fanconianemia, complementationgroupD2 (FANDCD2, Hs00276992_m1), TNFreceptor tespiti için Taqman Assay-on-Demand tasarlanmış oligonükleotidler kullanılarak Uygulamalı Biyosistem VIIa 7 Real-Time PCR Sistemi qRT-PCR analizi gerçekleştirin ilişkili faktör 1 (TRAF1, Hs01090170_m1) ve β-aktin (ACTB, Hs99999903_m1). Her numune toplam RNA 5 ng eşdeğer bir şablon vardı. DDCt yöntemiyle kantitatif ölçün ve β-aktin normalleştirmeniz. Her bir tahlil çoğaltır, en az üç biyolojik karşısında gerçekleştirildi.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Adım 1 için: 28s: 18s oranı geleneksel RNA bozulmanın bir göstergesi olarak kullanılmaktadır. İdeal olarak, 28s tepe 18s bant (2 oranında) yaklaşık iki katı alan olmalıdır, ancak bu ideal oran genellikle uygulamada görülmemektedir. Ayrıca, 28s: spektrofotometrik yöntem ile elde edilen 18s oranları RNA bozulma miktarı göz ardı edebilir. Daha doğru bir şekilde parçalanması ve bu nedenle RNA örnek kalitesini ölçmek için, Experion sistem, bir RNA kalite göstergesi (RQI) sayıs...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Anahtar adımlar

RNA Elleçleme: RNaz, hatta en yüksek kalitede RNA düşer dolayısıyla bakım RNA 10 izolasyonu, depolanması ve kullanılması sırasında alınmalıdır. Eldiven her zaman insan elinde bulunan RNaz tarafından kirlenmesini önlemek için giyilir. Eldiven, özellikle dokunma deri, kapı kolu ya da başka ortak yüzeyleri sonra, sık sık değiştirilmesi gerekir. Pipetler bir dizi çalışma RNA sadece adanmıştır edilmeli ve tüm ipuçları ve...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Çıkar çatışması ilan etti.

Teşekkürler

Yazarlar bizim veri analizi için kendi bilgisayar kümelerinin kullanımı için Çocuk Merhamet Hastaneler ve Klinikler Dr Stephen Kingsmore ve Pediatrik Genom Tıp Merkezi teşekkür etmek istiyorum, Illumina saha servis ekibi (Elizabeth Boyer, Scott Cook ve Mark Cook) ve teknik Onların hızlı tepkiler ve yeni nesil DNA dizileme enstrüman, HiScanSQ ve veri kalitesi analizi çalışmasını yararlı öneriler için danışman ekibi. Bu çalışma Sağlık Hibe HL080042 (SQY için) Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından kısmen desteklenen ve Çocuk Merhamet Hastaneler ve Klinikler start-up fon ve bağış, Kansas City Missouri Üniversitesi (SQY için). Edildi

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Reaktifler ve Ekipmanları Şirket Katalog numarası Yorumlar
İnsan Akciğer mikrovasküler endotel hücrelerinde Lonza CC-2815
Lonza, Bullet Takımı Lonza CC-3202 EGM-2, FBS, büyüme faktörleri ve antibiyotik içerir
Trombin Sigma T4393
Ambion mir Vana Kiti Yaşam Teknolojileri AM 1560
RNaz-Zap Yaşam Teknolojileri AM9782
Experion StdSens RNA Bio-Rad 700-7103
TruSeq RNA HazırlıkTakımı Illumina FC-122-1001
AMPureXP Boncuk Beckman Coulter A63881
Üstsimge Ters transkriptaz II Yaşam Teknolojileri 18064-014
Experion DNA 1K Bio-Rad 700-7107
QuantiTect SyberGreen Qiagen 204163
PE Küme Nesil Takımı Illumina PE-401-3001
Phix Kontrol Kiti Illumina FC110-301
200 Döngü SBS Takımı Illumina FC-401-3001
* HiScanSQ Illumina SY-103-2001
CBOT Illumina SY-301-2002
qPCR makinesi - Viia7 Yaşam Teknolojileri Model # VIIA7 / Ekipman # 10631261 Veya eşdeğeri
Experion Sistemi Bio Rad 7007001 Bioanalyzer alternatif bir sistemi
Spektrofotometre Bio-Tek Epoch Mikroplaka Spektrofotometre Veya eşdeğeri
Santrıfüj - Sorvall Legend XTR Thermo Scientific 75004521 Veya eşdeğeri
Manyetik standı Yaşam Teknolojileri AM10027
PCR 96- Genel Lab Tedarikçi
Anahtar Reaktifler ve Binbaşı E Tablo 3. Listequipment. *, Video, yerine HiScanSQ arasında HiSeq1000 gösterilmiştir.

Referanslar

  1. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nat. Rev. Genet. 10, 57-63 (2009).
  2. Shendure, J., Ji, H. Next-generation DNA sequencing. Nat. Biotechnol. 26, 1135-1145 (2008).
  3. Marioni, J. C., Mason, C. E., Mane, S. M., Stephens, M., Gilad, Y. RNA-seq: an assessment of technical reproducibility and comparison with gene expression arrays. Genome Res. 18, 1509-1517 (2008).
  4. Zhang, L. Q., et al. RNA-seq Reveals Novel Transcriptome of Genes and Their Isoforms in Human Pulmonary Microvascular Endothelial Cells Treated with Thrombin. PLoS One. 7, e31229(2012).
  5. Trapnell, C., Pachter, L., Salzberg, S. L. TopHat: discovering splice junctions with RNA-Seq. Bioinformatics. 25, 1105-1111 (2009).
  6. Langmead, B., Trapnell, C., Pop, M., Salzberg, S. L. Ultrafast and memory-efficient alignment of short DNA sequences to the human genome. Genome Biol. 10, R25(2009).
  7. Li, H., et al. The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics. 25, 2078-2079 (2009).
  8. Trapnell, C., et al. Transcript assembly and quantification by RNA-Seq reveals unannotated transcripts and isoform switching during cell differentiation. Nat. Biotechnol. 28, 511-515 (2010).
  9. Khatri, P., Sirota, M., Butte, A. J. Ten years of pathway analysis: current approaches and outstanding challenges. PLoS Comput. Biol. 8, e1002375(2012).
  10. Nielsen, H. Working with RNA. Methods. Mol. Biol. 703, 15-28 (2011).
  11. Trapnell, C., et al. Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks. Nat. Protoc. 7, 562-578 (2012).
  12. Robertson, G., et al. De novo assembly and analysis of RNA-seq data. Nat. Methods. 7, 909-912 (2010).
  13. Garber, M., Grabherr, M. G., Guttman, M., Trapnell, C. Computational methods for transcriptome annotation and quantification using RNA-seq. Nat. Methods. 8, 469-477 (2011).
  14. Martin, J. A., Wang, Z. Next-generation transcriptome assembly. Nat. Rev. Genet. 12, 671-682 (2011).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

GenetikSay 72Molek ler Biyolojimm nolojiT pGenomikProteinlerRNA seqYeni Nesil DNA DizitranscriptomeTranskripsiyonTrombinendotel h creleriy ksek verimlilikDNAgenomik DNART PCRPCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır