JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Here we describe a method to visualize the oncogenic bacterial organelle known as the Cag Type IV Secretion System (Cag-T4SS). We find that the Cag-T4SS is differentially produced on the surface of H. pylori in response to varying conditions of iron availability.

Özet

Helicobacter pylori is a helical-shaped, gram negative bacterium that colonizes the human gastric niche of half of the human population1,2. H. pylori is the primary cause of gastric cancer, the second leading cause of cancer-related deaths worldwide3. One virulence factor that has been associated with increased risk of gastric disease is the Cag-pathogenicity island, a 40-kb region within the chromosome of H. pylori that encodes a type IV secretion system and the cognate effector molecule, CagA4,5. The Cag-T4SS is responsible for translocating CagA and peptidoglycan into host epithelial cells5,6. The activity of the Cag-T4SS results in numerous changes in host cell biology including upregulation of cytokine expression, activation of proinflammatory pathways, cytoskeletal remodeling, and induction of oncogenic cell-signaling networks5-8. The Cag-T4SS is a macromolecular machine comprised of sub-assembly components spanning the inner and outer membrane and extending outward from the cell into the extracellular space. The extracellular portion of the Cag-T4SS is referred to as the “pilus”5. Numerous studies have demonstrated that the Cag-T4SS pili are formed at the host-pathogen interface9,10. However, the environmental features that regulate the biogenesis of this important organelle remain largely obscure. Recently, we reported that conditions of low iron availability increased the Cag-T4SS activity and pilus biogenesis. Here we present an optimized protocol to grow H. pylori in varying conditions of iron availability prior to co-culture with human gastric epithelial cells. Further, we present the comprehensive protocol for visualization of the hyper-piliated phenotype exhibited in iron restricted conditions by high resolution scanning electron microscopy analyses.

Giriş

H. pylori infection is a significant risk factor for gastric cancer1. However, disease outcomes vary and depend on numerous factors such as host genetics, genetic diversity of H. pylori strains, and environmental elements such as host diet11. Previous reports have established that a correlation exists between H. pylori infection, iron deficiency (as measured by decreased blood ferritin and hemoglobin concentrations), and increased proinflammatory cytokine production, including IL-8 secretion, which ultimately leads to increased gastric disease progression12. Acute H. pylori infection is also associated with hypochlorhydria which impairs the host’s ability to absorb nutrient iron, and ultimately leads to changes in iron homeostasis13. These clinical findings suggest that iron availability within the gastic niche could be an important factor in disease outcome. In fact, animal models of H. pylori infection have demonstrated that low dietary iron consumption exacerbates gastric disease14. The reduced iron levels in these animals necessitate that H. pylori induce an iron-acquisition response in order to obtain the iron needed for bacterial replication. H. pylori has the capacity to perturb iron trafficking within host cells to facilitate bacterial replication in a CagA-dependent fashion15. Interestingly, the cag-pathogenicity island has been shown to be regulated by the iron-responsive transcription factor Fur16,17. Furthermore, Cag+ strains are associated with increased inflammation and gastric diseases such as cancer1. These findings support a model whereby H. pylori alters Cag-T4SS expression in an effort to obtain iron from host cells that reside in an iron deplete environment resulting in exacerbated disease outcomes.

Two factors that increase inflammation and morbidity are Cag expression and low dietary iron intake. These facts support the hypothesis that reduced iron availability increases the production of Cag-T4SS pili at the host pathogen interface resulting in worse gastric disease11-14. The goal of the method provided in this manuscript is to establish the role of the micronutrient iron in the regulation of the Cag-T4SS pilus biogenesis. In previous work, we utilized two approaches to observe an iron-dependent increase in Cag-T4SS expression. First, output strains from animals maintained on high and low iron diets were analyzed and revealed that low-iron diet output strains produced more Cag-T4SS pili than high-iron diet strains14. Second, growing the H. pylori 7.13 strain in vitro in iron replete conditions resulted in reduced pili formation while cells grown in the presence of an iron chelator produced significantly more pili.

We have continued to investigate the iron-dependent regulation of Cag-T4SS pili phenotype and offer the following optimized protocol and representative results performed with an additional Helicobacter pylori strain, PMSS1. The rationale behind the development of this technique was to correlate increased Cag-T4SS activity in conditions of iron-limitation with increased Cag-T4SS pilus formation. The broader implication and use of this technique will provide optimized culture conditions that result in elevated production of the Cag-T4SS pili. This assay will be useful to researchers seeking to determine the composition and architecture of the Cag-T4SS by enriching for this important bacterial surface feature. The sample preparation and visualization by field-emission gun electron microscopy has numerous advantages over alternative techniques such as light-microscopy methods to visualize the Cag-T4SS and will be appropriate to investigators interested in studying the regulation of this organelle10.

Protokol

1. H. İnsan Gastrik Hücrelerine ile Demir Durumu ve Co-kültür Çeşitli Koşullar pylori Büyüme

  1. H. seçin Bu çalışmalar için pylori soyu PMSS1 bir sağlam cağ patojenite adası ve işleyen bir tip IV sekresyon sistemi ifade çünkü. Aynı zamanda, bir negatif kontrol olarak izogenik bir kafes mutant (PMSSI Δ kafesi) kullanmaktadır. % 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 24 saat boyunca% 5 koyun kanı (kan agar plakaları) ile takviye edilmiş TSA plakaları üzerine bakteri büyütün.
    NOT: reaktifleri hazırlayın ve Malzemeleri ve Ekipmanları Tablo belirtildiği gibi malzemeleri bir araya getirin. Her bir reaktifin son konsantrasyonları parantez içinde belirtilmiştir.
  2. Steril pamuk uçlu bir aplikatör kullanılarak plaka bakteri kazıyın ve bileşenlerden hazırlanan modifiye brusella et suyu içine aşılamak (Malzeme ve Ekipmanları Tabloya bakınız) ve kolesterol ile desteklenmiş. 37 ° C'de gece boyunca kültürler inkübeDakika (rpm), 200 dönüş çalkalayarak,% 5 CO2 ilave edilmiş, havada bulunan ° C.
    Not: Kolesterol bağlı olarak serum karmaşık olmasından fetal sığır serumu yerine kullanılır; Bu tür sonuçlar değişkenlik neden heme gibi besin demir sayısız kaynaklar içeren.
  3. Bakteriyel kültür gününde, AGS insan gastrik epitel hücreleri, tohum (ATCC CRL-1739), 12-gözlü levhalar (oyuk başına yaklaşık 1 x 10 5 hücre) poli-D-lizin muamele edilmiş, kapak slipleri üzerine.
  4. Ertesi gün, tadil edilmiş, Brucella et suyu, tek başına veya 100 uM FeCl3, 200 uM dipiridil (sentetik demir kenetleme maddesi) ya da 200 uM dipiridil artı 250 uM FeCl3 ile desteklenmiş 0.3 bir OD600'e bakteri kültürleri seyreltin. 200 rpm'de çalkalanarak,% 5 CO2 ilave edilmiş, havada bulunan 37 ° C de 4 saat süre ile, bu kültürleri inkübe edin.
  5. 1000 xg'de santrifüj bakteri hücreleri toplamak ve i resuspending önce süpernatanlan kaldırmak içinn, taze değiştirilmiş Brucella Et suyu eşit hacimde kolesterol ile takviye edilmiştir. Kültür (OD600 = 1.0 = 5.5 x 10 8 hücre / ml) ölçümü OD600 ve enfeksiyon 20 (İB) 'in bir çokluğu epitel hücrelerine bakteri ekleyin: 1 arasındadır. Bakteriyel hücre canlılığını değerlendirmek için kan agar plakaları üzerine seri dilüsyonlarını ve plaka bakteri hücreleri gerçekleştirin.
  6. H. inkübe taramalı elektron mikroskobu (SEM) örnek hazırlama gerçekleştirmeden önce statik koşullarda% 5 CO2 varlığında 37 ° C'de 4 saat boyunca pilori AGS insan mide epitel hücrelerinin ko-kültürler.

2. SEM H. Visualize'a Numune Hazırlama H. pylori Çağ-T4SS Pili

  1. H. Kaldır H. pylori ve inkübatör ve dökme sıvı kültür süpernatanından AGS ko-kültürler (IL-8 ELISA ile) kaydedin. 0.05 M sodyum kakodilat buferi (pH 7.4) hafifçe üç kez yıkayın. ,% 2.0 paraformaldehit çözeltisi içinde 2,5, oda sıcaklığında 2-4 saat boyunca örnekleri saptamak% Gluteraldehit, ve 0.05 M sodyum kakodilat tamponu. Birincil tespit sonra örnekler 0.05 M sodyum kakodilat tamponu ile üç kez yıkayın.
  2. İki ardışık 10 dakika sabitleştirme adımlarında 0.05 M sodyum kakodilat tampon maddesi içinde% 0.1 osmiyum tetroksit ile ikinci tespit gerçekleştirin. İkinci tespit sonra örnekler 0.05 M sodyum kakodilat tamponu ile üç kez yıkayın.
  3. Birincil ve ikincil tespit edildikten sonra, Tablo 1 'deki gibi etanol artan konsantrasyonları ile art arda yıkama ile örnekleri dihidrat.
  4. Etanol dehidratasyon sonra sıvı karbon dioksit, sıralı üç yıkama yapar. 1073 PSI 31.1 ºC sıcaklık ve basınçta bir kritik nokta kurutma makinesi kullanılarak kritik bir noktada sonra kuru örnekleri.
  5. Dağı alüminyum SEM örnek taslakları üzerine lamelleri ve uygun topraklama sağlamak ve SEM görüntüleme sırasında şarj önlemek için numune kenarında kolloidal gümüş ince bir çizgi ile boyayın.
  6. Coat örnekleri 5 nm ileörnek ikincil elektron sinyal ve kenar etkisini artırmak için bir püskürtme ceket makinesi kullanarak altın-paladyum.

Yüksek Çözünürlüklü SEM Analizleri 3. Görüntüleme Parametreleri

  1. Saha-Emisyon Gun Taramalı Elektron Mikroskobu (FEG-SEM) ile View örnekler.
  2. 5-10 mm çalışma mesafesi yüksek bir vakum modunda görüntü.
  3. 5 kV hızlandırma voltajı ayarlayın.
  4. 2-2,5 spot boyutunu ayarlayın.
  5. Konak-patojen arayüzü daha iyi bir görünüm elde etmek için 15-25 derece arasında örnek eğin.
  6. Konak-patojen etkileşimlerinin bu alanlarda Pili oluşturan bakteriler için zenginleştirilmiş olarak, yüksek büyütme görüntüleme için epitel hücrelerinin kenarlarına yapışmış bakteri görüntüleme öncelik.

4. İstatistiksel Analizler Pili quantifications değerlendirin

  1. H. analiz ImageJ yazılımı kullanılarak H. pylori Çağ-T4SS piluslar piliated Phe arzeden hücre zarları / hücre sayısının yanı sıra yüzde ölçmek içinAşağıdaki talimatlara göre notype.
  2. ImageJ yazılım açık mikrografiğidir dosyaları. Düzgün genişlikte (10-13 nm) ve uzunluğu (60-150 nm) bakteriyel hücre ve konakçı hücre arasında oluşturulan yapılar olarak Pili belirlenmesi.
    Not: pilus yapısı büyük ATPaz güçler tip IV sekresyon pilus düzeneği kodlayan gende bir etkisiz hale liman bu Δ kafesini mutant soylar olarak izogenik suşları ilgilidir WT bakteriyel suşlar üzerinde mevcut olan, ancak mevcut değildir.
  3. "Analiz" sekmesine tıklayarak ardından düz çizgi aracıyla bir çizgi çizerek tarafından ölçme aracı kalibre. Açılan menüden "Set Ölçeği" seçin ve kutuya etiketli "Bilinen uzaklık" içine büyütme bar değerini girin ve uygun ayarı (nm) uzunluğu birimini ayarlayın. "Tamam" ı tıklayın.
  4. Pilus uzunluğu veya genişliği boyunca çizmek için düz çizgi aracını kullanarak Çağ-T4SS Pili ölçün ve sonra her Pilus ölçmek için "Ctrl-M" tuşuna basın. Ölçülen değerler ile bir diyalog kutusu gözlemlemek. Bu değerleri kaydedin veya kopyalayın ve bir elektronik tablo programı yapıştırın.
  5. Uzunluğu kullanın ve genişlik parametreleri önceden Çağ-T4SS profilini uymayan 24, göz ardı özellikleri kurdu. Sonra 10-13 nm genişlik ve 60-150 nm uzunluk eşik dahilinde değerlere dayalı pili sayısını ölçmek.
  6. GraphPad Prism yazılımı kullanılarak iki kuyruklu Student t testi ile istatistiksel pili ve miktarının analiz.

5. İsteğe bağlı: IL-8 salgısını değerlendirilmesi Pilus üretimi ile ilişkilendirir için

  1. Adım 2.1 süpernatanlarm kullanarak, kit ile üreticinin talimatlarına (Malzeme ve Ekipmanları Tablo bakınız) başına bir IL-8 ELISA gerçekleştirin.
  2. IL-8 konakçı hücreler tarafından salgılanan analiz eder ve tek başına ortam içinde yetiştirildiğinde, WT PMSS1 göre yüzde IL-8, indüksiyon hesaplar. Böylece GraphPad Prism kullanılarak iki kuyruklu Student t testi kullanılarak istatistiksel analizftware.

Sonuçlar

Bu yazıda, demir kullanılabilirliği değişen koşulları H. modüle kapasitesine sahip olduğunu göstermiştir ana patojen arayüzünde pilori Çağ-T4SS pilus biyogenez. H. tek başına ortamda kültürlenen zaman H. pylori 3 Pili / hücre ortalama oluşturur. H. H. pylori demir yetiştirilir tüketen bakteri büyümesi (Şekil 1), alt inhibitördür (sentetik kenetleyici dipiridil kullanılarak) şartları altında, bakteriler üreten bir çok Çağ-T4...

Tartışmalar

Demir, bakteriyel patojenler dahil olmak üzere yaşamın birçok formları için önemli bir mikrobesleyicidir. Mikroorganizmaları istila canlılığı kısıtlamak için bir çaba, omurgalı ana "beslenme dokunulmazlığı" 18 olarak bilinen bir süreç içinde besin demir müsadere. Buna karşılık olarak, bakteriyel patojenler çevrelerini algılamak ve demir toplama sistemleri, toksinler ve toksin salgı makine 19,20 olarak virülans özelliklerinin detaylandırılması düzenleyen...

Açıklamalar

The authors declare that they have no competing financial interests.

Teşekkürler

This research was supported by the Department of Veterans Affairs Career Development Award 1IK2BX001701 and the CTSA award UL1TR000445 from the National Center for Advancing Translational Sciences. Its contents are solely the responsibility of the authors and do not necessarily represent official views of the National Center for Advancing Translational Sciences or the National Institutes of Health. Scanning electron microscopy experiments were performed in part through the use of the VUMC Cell Imaging Shared Resource, supported by NIH grants CA68485, DK20593, DK58404, DK59637 and EY08126.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Modified brucella broth
Peptone from casein (10 g/L)Sigma70172
Peptic digest of animal tissue (10 g/L)Sigma70174
Yeast extract (2 g/L)Sigma92144
Dextrose (1 g/L)SigmaD9434
Sodium chloride (5 g/L)Thermo FisherS271-10
Cholesterol (250X) (4 ml/L)Life Technologies12531018
Ferric chloride (100 or 250 uM)Sigma157740-100G
Dipyridyl (200 uM)SigmaD216305-100G
Modified RPMI
RPMI+HEPES (1X)Life Technologies22400-121
Fetal bovine serum (100 ml/L)Life Technologies10438-026
Electron Microscopy Preparation
Paraformaldehyde (2.0% aqueous)Electron Microscopy Sciences15713
Gluteraldehyde (2.5% aqueous)Electron Microscopy Sciences16220
Sodium cacodylate (0.05 M)Electron Microscopy Sciences12300
Osmium tetroxide (0.1% aqueous)Electron Microscopy Sciences19150
Ethanol (absolute)SigmaE7023
Colloidal silver paintElectron Microscopy Sciences12630
SEM sample stubsElectron Microscopy Sciences75220
CoverslipsThermo Fisher08-774-383
IL-8 Secretion Evaluation
Quantikine IL-8 ELISA kitR&D SystemsD8000C

Referanslar

  1. Cover, T. L., Blaser, M. J. Helicobacter pylori in health and disease. Gastroenterology. (6), 1863-1873 (2009).
  2. Sycuro, L. K., et al. Peptidoglycan crosslinking relaxation promotes Helicobacter pylori's helical shape and stomach colonization. Cell. 141 (5), 822-833 (2010).
  3. Kodaman, N., et al. Human and Helicobacter pylori coevolution shapes the risk of gastric disease. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 111 (4), 1455-1460 (2014).
  4. Tegtmeyer, N., Wessler, S., Backert, S. Role of the cag-pathogenicity island encoded type IV secretion system in Helicobacter pylori pathogenesis. FEBS J. 278 (8), 1190-1202 (2011).
  5. Fischer, W. Assembly and molecular mode of action of the Helicobacter pylori Cag type IV secretion apparatus. FEBS J. 278 (8), 1203-1212 (2011).
  6. Odenbreit, S., Puls, J., Sedlmaier, B., Gerland, E., Fischer, W., Haas, R. Translocation of Helicobacter pylori CagA into gastric epithelial cells by type IV secretion. Science. 287 (5457), 1497-1500 (2000).
  7. Bourzac, K., Guillemin, K. Helicobacter pylori-host cell interactions mediated by type IV secretion. Cell Microbiol. 7 (7), 911-919 (2005).
  8. Bronte-Tinkew, D. M., et al. Helicobacter pylori cytoxin-associated gene A activates the signal transducer and activator of transcription 3 pathway in vitro and in vivo. Cancer Res. 69 (2), 632-639 (2009).
  9. Johnson, E. M., Gaddy, J. A., Cover, T. L. Alterations in Helicobacter pylori triggered by contact with gastric epithelial cells. Front. Cell. Infect. Microbiol. (2), 17 (2012).
  10. Rohde, M., Puls, J., Buhrdorf, R., Fischer, W., Haas, R. A novel sheathed surface organelle of the Helicobacter pylori cag type IV secretion system. Mol. Microbiol. 49 (1), 219-234 (2003).
  11. Cover, T. L., Peek, R. M. Diet, microbial virulence and Helicobacter pylori induced gastric cancer. Gut Microbes. 4 (6), 482-493 (2013).
  12. Queiroz, D. M., et al. Increased gastric IL-1β concentration and iron deficiency parameters in Helicobacter pylori infected children. PLoS One. 8 (2), 57420 (2013).
  13. Harris, P. R., et al. Helicobacter pylori-associated hypochlorhydria and development of iron deficiency. J. Clin. Pathol. 66 (4), 343-347 (2013).
  14. Noto, J. M., et al. Iron deficiency accelerates Helicobacter pylori-induced carcinogenesis in rodents and humans. J. Clin. Invest. 123 (1), 479-492 (2013).
  15. Tan, S., Noto, J. M., Romero-Gallo, J., Peek, R. M., Amieva, M. R. Helicobacter pylori perturbs iron trafficking in the epithelium to grow on the cell surface. PLoS Pathog. 7 (5), (2011).
  16. Danielli, A., Roncarati, D., Delany, I., Chiarini, V., Rappouli, R., Scarlato, V. In vivo dissection of the Helicobacter pylori Fur regulatory circuit by genome-wide location analysis. J. Bacteriol. 188 (13), 4654-4662 (2006).
  17. Pich, O. Q., Carpenter, B. M., Gilbreath, J. J., Merrell, D. S. Detailed analysis of Helicobacter pylori Fur-regulated promoters reveals a Fur box core sequence and novel Fur-regulated genes. Mol. Microbiol. 84 (5), 921-941 (2012).
  18. Cassat, J. E., Skaar, E. P. Iron in infection and immunity. Cell Host Microbe. 13 (5), 509-519 (2013).
  19. Nielubowicz, G. R., Mobley, H. L. Host-pathogen interactions in urinary tract infection. Nat. Rev. Urol. 7 (8), 430-441 (2010).
  20. Brickman, T. J., Cummings, C. A., Liew, S. Y., Relman, D. A., Armstrong, S. K. Transcriptional profiling of the iron starvation response in Bordatella pertussis provides new insights into siderophore utilization and virulence gene expression. J. Bacteriol. 193 (18), 4798-4812 (2011).
  21. Mobley, H. L. Helicobacter pylori factors associated with disease development. Gastroenterology. 113 (6), 21-28 (1997).
  22. Testerman, T. L., Conn, P. B., Mobley, H. L., McGee, D. L. Nutritional requirements and antibiotic resistance patterns of Helicobacter species in chemically defined. J. Clin. Microbiol. 44 (5), 1650-1658 (2006).
  23. Senkovich, O., Ceaser, S., McGee, D. J., Testerman, T. L. Unique host iron utilization mechanisms of Helicobacter pylori revealed with iron-deficient chemically defined media. Infect. Immun. 78 (5), 1841-1849 (2010).
  24. Shaffer, C. L., et al. Helicobacter pylori exploits a unique repertoire of type IV secretion system components for pilus assembly at the bacteria-host cell interface. PLoS Pathog. 7 (9), (2011).
  25. Barrozo, R. M., et al. Functional plasticity in the type IV secretion system of Helicobacter pylori. PLoS Pathog. 9 (2), (2013).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

EnfeksiyonSay 93Helikobakter piloriDemir sat n almaCa Patojenisite adatip IV sekresyonpili

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır