JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

We describe a surgical technique that produces wire injury in the femoral artery of mice to induce neointimal hyperplasia to serve as a model testing system for the perivascular delivery of therapeutic compounds for the inhibition of restenosis.

Özet

Percutaneous interventions including balloon angioplasty and stenting have been used to restore blood flow in vessels with occlusive vascular disease. While these therapies lead to the rapid restoration of blood flow, these technologies remain limited by restenosis in the case of bare metal stents and angioplasty, or reduced healing and possibly enhanced risk of thrombosis in the case of drug eluting stents. A key pathophysiological mechanism in the formation of restenosis is intimal hyperplasia caused by the activation of vascular smooth muscle cells and inflammation due to arterial stretch and injury. Surgeries that induce arterial injury in genetically modified mice are useful for the mechanistic study of the vascular response to injury but are often technically challenging to perform in mouse models due to the their small size and lack of appropriate sized devices. We describe two approaches for a surgical technique that induces endothelial denudation and arterial stretch in the femoral artery of mice to produce robust neointimal hyperplasia. The first approach creates an arteriotomy in the muscular branch of the femoral artery to obtain vascular access. Following wire injury this arterial branch is ligated to close the arteriotomy. A second approach creates an arteriotomy in the main femoral artery that is later closed through localized cautery. This method allows for vascular access through a larger vessel and, consequently, provides a less technically demanding procedure that can be used in smaller mice. Following either method of arterial injury, a degradable drug delivery patch can be placed over or around the injured artery to deliver therapeutic agents.

Giriş

Arterial injury and inflammation caused by angioplasty and stent implantation can induce neointimal hyperplasia that contributes to the thickening of the arterial wall, a process known as restenosis.1,2 The formation of restenosis is major mode of failure for interventions such as angioplasty and stenting with bare metal stents.3 Due to recent concerns with the inhibition of vascular healing in arteries treated with drug eluting stents, there is also a need to find compounds that can inhibit restenosis while maintaining vascular healing and re-endothelialization.4-7 In addition, while stents have had success in the coronary vasculature, percutaneous interventions of all types in the peripheral arteries continue to fail at a higher rate due to restenosis.8-10 Mouse models of surgical interventions allow the use of powerful genetic manipulations that can provide mechanistic insight into the mechanisms underlying the failure of clinical therapies and can provide an initial test bed for compounds to inhibit intimal hyperplasia.

Here, we describe a mouse model of vascular injury that allows the testing of therapeutic compounds to inhibit neointimal hyperplasia and assess whether their effects on re-endothelialization following endothelial denudation. A key challenge in executing vascular injury in mice is the technical skill needed to obtain vascular access and to restore flow to the injured artery following the wire injury. For this reason, simple arterial ligation models have been used to study neointimal hyperplasia in mice that do not require endovascular manipulations but are easier to implement.11 However, this type of surgical model differs substantially from the mechanical and biological aspects of a percutaneous intervention, lacking key aspects including arterial wall stretch, endothelial denudation and luminal blood flow following injury.

We present two methods for obtaining and closing vascular access for wire injury of the femoral artery in mice. The first technique is the conventional method described by several groups previously and uses vascular access through a side branch of the femoral artery.12-14 This method requires older, larger mice and more surgical skill to implement the endoluminal access through the smaller artery. It also requires the ligation of the muscular branch of the femoral artery following the procedure. The second method we describe uses an arteriotomy in the branch point of the main and side branch and thereby allows for a larger access to the artery for performing wire injury. In this method, the arteriotomy is closed using controlled local cauterization that leaves both branches with blood flow following the procedure. The conventional method is applicable to mice of at least 20 weeks of age while the alternative method can be used in mice of at least 15 weeks of age. In both methods, the wire creates arterial stretch and abrasion leading to injury and endothelial denudation. Following either procedure a perivascular drug delivery patch can be implanted that allows the delivery of compounds to alter the response to injury. The use of the drug delivery patch allows mice to be used as a test bed for new compounds to inhibit restenosis through perivascular therapies.15,16

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

NOT: Bu protokolde gösterilen tüm yöntemler Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından onaylanmıştır.

Cerrahi Tablo 1. Hazırlık

  1. Diseksiyon mikroskobu altında, cerrahi masada sıcak su sirkülasyon ısıtma pedi ayarlayın. Isıtma pedi üzerine paslanmaz çelik taban plakası yerleştirin. Taban plakası ve ısıtma yastığı steril emici ped yerleştirin.
  2. Bir komşu steril emici ped üzerine steril cerrahi aletler düzenleyin. Açılı ince uçlu forseps iki çift açılı forseps iki çift, üç hemostatik forseps, iki Retraktörler teller, küçük cerrahi makas, mikro-makas, bir anjiyoplasti tel (0.15 inç çap) ve 6.0 ipek sütür üç 6-inç segmentleri toplayın .
  3. Femoral arter eğrilik maç anjiyoplasti tel yuvarlak ucunu bükün. Bu daha kolay ameliyat sırasında tel ilerletmek için yapacak.

2. HazırlıkCerrahi Fare

  1. % 2.5 izofluran sürekli inhalasyon yoluyla bir fare anestezisi. Prosedür boyunca hayvanın durumunu izlemek için emin olun. Tam anestezi olduğunu doğrulamak için fare ayak bir tutam testi yapın. Tutam testi uygulandığında hareket etmiyor hayvan sağlayın.
  2. Kurumayı önlemek için hayvanın gözlerine bir yağlama merhem sürün. Cerrahi bant kullanarak emici ped ile yatar pozisyonda hayvan sabitleyin. Burun konisi üzerinden% 2.5 izofluran uygulanmasını devam edin.
  3. Bir tüy dökücü krem ​​kullanmak, orta hattına bacak ve karın kürk çıkarın. Su ile iyice durulayın cildi. Depilasyon cerrahi bir gün önceden gerçekleştirilebilir. Cilt tahrişe yol açabilir krem ​​ile bu aşırı tedavi unutmayın.
  4. Hemen ameliyat öncesi, cildi sterilize etmek için bir pamuk uçlu bir aplikatör ile tüy dökücü krem ​​alana povidon-iyot uygulayın. % 70 etanol ve kurutulur cımbız çiftleri cilt durulayınsteril pamuk uçlu bir aplikatör ile. 3 kez tekrarlayın.
  5. Deri altına enjeksiyon ile karprofen 5 mg / kg'lık bir ameliyat öncesi dozu uygulayın.

Femoral Arter 3. İzolasyonu

  1. Küçük cerrahi makas kullanarak, femoral arter üzerinde deride kavisli bir kesi yapmak. Açık açık femoral artere bulmak için retraktörler manyetik retraktör fiksatörler kullanarak çevredeki dokuları incelemek ve güvenli. Steril pamuk uçlu bir aplikatör kullanılarak tuzlu uygulayın sulama için periyodik serum fizyolojik ile dokuları nemlendirin.
  2. Forseps kullanarak femoral arter izole edin. Yavaşça ince uçlu forseps kullanılarak damar paket gelen sinir ayrı. Ven delinmesiyle kaçının ve sinir zarar vermez. Bunu önlemek için uyarıcı uzakta paket gelen sinir itin.
  3. Yavaşça femur çatallanma yerini, femoral arter femoral ven ayrı. çatallanma bölgesi incelemek için özellikle zordur.
  4. Posterior çatallanma, döngü hemostatla femoral arter ve güvenli altında 6.0 ipek sütür. Bu proksimal sütür arter kan akışını kısıtlamak için kullanılır.
    NOT: dağlama yöntemiyle karşı ligasyonu yöntemi yaparken bağları hafif bir varyasyon vardır (Şekil 1 ve Şekil 2).
  5. Bifürkasyonun distalinde, döngü 6.0 ipek femoral arter altında dikiş ve hemostatla güvenli. Arter konumlandırma Bu uzak sütür yardımcıları.
  6. Femoral arter kas dalı altında Döngü iki dikiş, onları ön-kravat ve bir hemostatla sabitleyin. Tuzlu su ile dokuları nemlendirmek için unutmayın. Tel yaralanma koter yöntemi gerçekleştirmek ise, yalnızca bir ilmekli dikiş kas şube gereklidir.

Femoral Arter Tel Yaralanma 4. Performans

  1. Proksimal sütür çekerek femoral artere kan akışını kısıtlamak. Biraz uzak Memost çekinhemostat şube güvence altına ve arteriotomi için site ortaya çıkarmak. Etrafında dikiş bağlayarak kas şube Arter.
    NOT: yukarı arteri Kaldırma daha etkili yatay yalnız çekerek daha kan akışını kısıtlamak olur.
  2. İki sütür arasındaki koter ile küçük şube Sever. Mikro-makas kullanarak, çatallanma yan dalında bir arteriyotomi gerçekleştirin. Mikro-makas stabilize etmek için cerrahi bant rulo üzerinde dengeli forseps kullanın.
  3. Ince uçlu forseps kullanarak arteriotomi varlığını onaylayın. Yavaşça forseps Arteriyotomi açılmasını kaldırın. Forseps kullanarak arteriotomi içine tel yuvarlak ucunu tanıtın. Telin ilerlemesini kolaylaştırmak için, bir şırınga kullanılarak bölgeye lidokain, bir veya iki damla ekleyin.
  4. Tel proksimal sütür ulaştığında, dikiş bırakın ve tel ilerleme engel olamaz ki ayarlayın. Daha da ileri edemez kadar tel yerleştirin. th ucue tel inguinal ligament bölgede durması gerekir.
  5. Tel, bir dakika için femoral arter içine kalmasına izin verir. Zarar ve femoral arter endoteli denude için on kez bir dakika sonra, geri ve bir testere hareket tel ilerlemek. Daha az şiddette bir yaralanma için, tel ve arterin dışarı çekilir sayısını azaltmak veya sadece 1 dakika arterde tel bırakın.
  6. Yavaş yavaş teli geri çekin. Tel yuvarlak ucu proksimal sütür geçtiğinde, proksimal sütür çekerek artere akışını kısıtlamak. Tamamen teli geri çekin.

5. Musküler Şubesi bağlanması

  1. Kas şube kalan dikiş sıkın. Bu arteriotomi kanamayı önlemek olacaktır. Kas şube akışını dönün ve bu kan ondan sızıntı değil onaylayın. Kas dalı üzerinde dikişler gelen uçlarını kesin.

6. Alternatif Yöntem: Lokalize Cauarteriyotomi yon

NOT: Alternatif bir yaklaşım kas şube bağlanmasını önlemek ve daha büyük ana femoral arter yoluyla damar erişime izin vermek için alınabilir.

  1. 4.1 itibaren, proksimal sütür çekerek femoral artere akışını kısıtlamak. Distal sütür ve arteriotomi için site (Şekil 1 ve Şekil 2) ortaya çıkarmak için hafifçe kas şube güvence dikiş çekin.
  2. Mikro-makas kullanarak, femoral arter ve kas şube şube noktada bir arteriyotomi gerçekleştirin. Kesi arter tarafında yapılır, bu dağlamak daha kolay olabilir. Mikro-makas stabilize etmek için cerrahi bant rulo üzerinde dengeli forseps kullanın.
  3. Dağlama başarısını test etmek için, proksimal sütür gevşeterek femoral artere akışını geri. Kanama arteriotomi gelen oluşursa, koter tekrarlayın. Koter başarılı olursa, kan akışı yeniden edilecekarteriotomi distalinde saklı.
  4. Tel tanıtılması ve bölüm 4'te tarif edildiği gibi tel yaralanma yerine getirir.
  5. Femoral artere kan akışını kısıtlayan devam edin. En az 6 inç uzakta fare ince uçlu koter ısıtın. Koter ucu soğudukça, kesi kapatmak için arteriotomi yan hafifçe uygulayın.
  6. Dağlama başarısını test etmek için, proksimal sütür gevşeterek femoral artere akışını geri. Kanama arteriotomi gelen oluşursa, koter tekrarlayın. Koter başarılı olursa, kan akışı arteriotomi distalinde restore edilecek. Geçici yakın ve uzak bağları çıkarın.

Perivasküler İlaç Dağıtım Patch 7. implantasyonu

  1. Daha önceki çalışmalarda 11 veya benzer yöntemler kullanılarak tarif edildiği gibi bir perivasküler ilaç yama oluşturma oluşturulabilir. Steril makaslar kullanılarak İlaç sağlama yaması hücresinden köşelerini kör
  2. Ilaç dağıtım pat yerleştirinarter bakan ilaç salan tarafı yaralı femoral arter üzerine ch. Gerekirse, yama konumunu iyileştirmek için forseps kullanabilir.

8. Yara Kapatma ve Kurtarma

  1. Kare knot oluşan basit bir kesintiye dikiş ile yarayı kapatın. Bir süreksiz sütür hayvan dikiş kaldırmak için çalışır durumda yara kapanmasını uzatır.
  2. Anestezi kapatın ve set up hayvan çıkarın. Hayvan ısınma pad üzerinde kurtarmak için izin verin.
  3. Farenin kurtarma izlemeye devam edin. O kapalı kalmasını sağlamak için her gün kesi sitesini kontrol edin. Ameliyat sonrası ağrının tedavi edilmesi için, 2 gün sonra, her 12 saat cerrahi sonrası 5 mg / karprofen, her 12 saat kg deri altı enjeksiyon vermek ve. Ağrı ilk 2 gün ötesine devam ederse, daha fazla ağrı ilaç tarifini bir veteriner danışın.

Histoloji 9. Hasat Femoral Arter

  1. Ameliyat sonrası 28 gün sonra, fare karbondioksit ötenazi yapmak.
    NOT: karbon dioksit uygun akış hızı, dakikada odasının% 10-30 yerinden olmalı ve kullanılan oda büyüklüğüne bağlı olarak değişecektir. Diyafram ve kalp ponksiyonu kesme ötenazi ikincil yöntem olarak yapılmalıdır.
  2. Cerrahi bant kullanarak yatar pozisyonda fare sabitleyin. İlk cerrahi kesi yapıldı femoral arter üzerinde bir kesi yapmak.
  3. Yaralı arter ve karşı bacak yaralanmamış arter, her ikisi için de açık açık incelemek ve femoral arter bulmak için Ekartörleri ve manyetik retraktör fiksatörler kullanarak dokuları çevreleyen sabitleyin. Periyodik sulama için tuzlu su kullanılarak dokuların nemlendirin. Steril pamuk uçlu bir aplikatör kullanılarak tuzlu su uygulayın. Arterin zarar değil dikkat edin.
  4. Femoral arter abdominal aorta orijinal arteriotomi site izole edildikten sonra, bir segmen kravatarteriotomi orijinal sitenin yakınında ipek sütür ment. Bu dikiş femoral arter en uzak ucunu tanımlamak ve örnek işleme kolaylığı yardımcı olacaktır.
  5. Mikro-diseksiyon makas kullanarak femoral arter çıkarılması için. Dikiş bir kesi uzak olun. Abdominal aorta yanında, femoral arter ters ucunda diğer kesi yapmak.
  6. Tuzlu su içeren bir cam petri eksize arter aktarın. Aşırı bağ dokusu veya yağ çıkarmak için daha fazla arter disseke. Yavaşça serum fizyolojik ile durulayarak lümeninin kan çıkarın.
  7. % 10 tamponlu formalin bir şişeye arter aktarın. Yumuşak 48 saat için sallanarak 4 ° C'de şişe saklayın.
  8. Bu histoloji için işlenene kadar saklamak için,% 70 etanol ile sabitlenmiş arter aktarın.
  9. Parafin blok ve bölüm boyama için bloklar halinde arteri gömün.
  10. Yaralanma ve intimal HYP boyutunu değerlendirmek için histokimyasal ve immunokimyasal boyama yapınerplasia.
    NOT: temsilcisi sonuçları için, biz elastik lameller ve diğer arter bileşenleri görselleştirmek için çekirdek ve genel morfoloji veya Movat en pentakrom leke görselleştirmek için hematoksilen ve eozin kullanılır.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Tel yaralanma sonrasında, neointimal hiperplazi zamanla gelişir ve tipik olarak 14 ile 28 gün sonra incelenir. Şekil histolojik sonuçlar gösterildiği gibi farelerde intimal hiperplazi sağlam nesil bu iş kurşun açıklanan teknikler 3. Bir yaralanmamış femoral arter sağlam elastik lameller ve normal kalınlık ve çevresini gösterecek. Bir yaralı femoral arter intimal hiperplazi göstermek elastik lameller bozulmuş ve daha sonra zaman noktalarında yeniden endotelizasyon ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

We have presented a method for performing vascular injury in mice and delivery therapeutic compounds to the injured region through a perivascular cuff. The ligation method for femoral and carotid arteries has been described in conventional methods papers and characterized extensively11-14,19-23 and we present an alternative method for achieving the same vascular injury that is less technically demanding procedure that can often be used in younger mice. One of the chief advantages of the using a mouse wire inju...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

None.

Teşekkürler

The authors would like to acknowledge support through the American Heart Association (10SDG2630139), the Welch Foundation and through the NIH Director’s New Innovator Grant (1DP2 OD008716-01). The authors would like to thank the services provided by the ICMB (Institute of Cellular and Molecular Biology) core facility and TherapeUTex at University of Texas at Austin.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Straight spring wire, 0.15” diameterCookG02426
High Temperature cauteryBovie Medical Corp.HIT1
High-temperature fine tip for cauteryBovie Medical Corp.H101
Micro-scissorsFine Science Tools15000-13For performance of arteriotomy
Angled fine-tipped forcepsFine Science Tools11251-35For blunt dissection of vascular bundle
Angled forcepsRobozRS-5069For clearing tissues
Surgical scissorsRobozRS-5840For cutting skin
RetractorFine Science Tools18200-10
Retractor wireFine Science Tools18200-05Attached to retractor
Base plateFine Science Tools18200-03For use with retractor
Magnetic retractor fixatorFine Science Tools18200-01
Needle HolderRobozRS-7822
Hemostatic forcepsBiomedical Research Instruments, Inc.34-1000
Dissecting microscopeMeiji TechnoEMZ-5TR
Microscope light sourceMeiji TechnoFT191
Warm water recirculatorGaymarTP-500For maintaining mouse body temperature
Reusable heating padGaymarTP-R 22GFor maintaining mouse body temperature
LidocaineVarious
4.0 Vicryl suture with half circle needleEthiconJ494GFor post-surgical wound closure
Sterile cotton-tipped applicatorsPuritan25-806-2WCFor application of depilatory cream and absorbing fluids
Depilatory creamNair
IsofluraneVarious
BetadineVarious
70% ethanolVarious
6.0 braided silk sutureTeleflex Medical4-SFor isolation of femoral artery during surgery
0.9% sodium chlorideVariousFor irrigating tissues
Gel eye lubricantVarious
Glass Petri dishPyrex3160-60For femoral artery harvest
10% buffered formalinVariousFor fixation of femoral artery
70% ethanolVariousFor fixation of femoral artery
Bouin's fluidElectron Microscopy SciencesFor Movat's Pentachrome staining
Alcian blue, 1%Electron Microscopy Sciences26385-01For Movat's Pentachrome staining
Alkaline alcoholElectron Microscopy Sciences26385-02For Movat's Pentachrome staining
Orcein, 0.2%Electron Microscopy Sciences26385-03For Movat's Pentachrome staining
Hematoxylin alcoholic, 5%Electron Microscopy Sciences26385-04For Movat's Pentachrome staining
Ferric chloride, 10%Electron Microscopy Sciences26385-05For Movat's Pentachrome staining
Lugol's IodineElectron Microscopy Sciences26385-06For Movat's Pentachrome staining
Woodstain scarlet-acid fuchsin working solutionElectron Microscopy Sciences26385-07For Movat's Pentachrome staining
Acetic acid, 0.5%Electron Microscopy SciencesVariousFor Movat's Pentachrome staining
Phosphotungstic acid, 5%Electron Microscopy Sciences26385-09For Movat's Pentachrome staining
Alcoholic saffron, 6%Electron Microscopy Sciences26385-10For Movat's Pentachrome staining

Referanslar

  1. Hoffmann, R., Mintz, G. S. Coronary in-stent restenosis - predictors, treatment and prevention. Eur Heart J. 21 (21), 1739-1749 (2000).
  2. Erbel, R., et al. Coronary-artery stenting compared with balloon angioplasty for restenosis after initial balloon angioplasty. Restenosis Stent Study Group. N Engl J Med. 339 (23), 1672-1678 (1998).
  3. Farooq, V., Gogas, B. D., Serruys, P. W. Restenosis: delineating the numerous causes of drug-eluting stent restenosis. Circ Cardiovasc Interv. 4 (2), 195-205 (2011).
  4. Iqbal, J., Gunn, J., Serruys, P. W. Coronary stents: historical development, current status and future directions. Br Med Bull. 106, 193-211 (2013).
  5. Garg, S., Serruys, P. W. Coronary stents: current status. J Am Coll Cardiol. 56 (10 Suppl), S1-S42 (2010).
  6. Park, S. J., Kim, Y. H. Current status of percutaneous coronary intervention with drug-eluting stents in Asia. Circulation. 118 (25), 2730-2737 (2008).
  7. Alfonso, F. Treatment of drug-eluting stent restenosis the new pilgrimage: quo vadis. J Am Coll Cardiol. 55 (24), 2717-2720 (2010).
  8. Dake, M. D., et al. Paclitaxel-eluting stents show superiority to balloon angioplasty and bare metal stents in femoropopliteal disease: twelve-month Zilver PTX randomized study results. Circ Cardiovasc Interv. 4 (5), 495-504 (2011).
  9. Bosiers, M., et al. Results of the Protege EverFlex 200-mm-long nitinol stent (ev3) in TASC C and D femoropopliteal lesions. J Vasc Surg. 54 (4), 1042-1050 (2011).
  10. Duda, S. H., et al. Drug-eluting and bare nitinol stents for the treatment of atherosclerotic lesions in the superficial femoral artery: long-term results from the SIROCCO trial. J Endovasc Ther. 13 (6), 701-710 (2006).
  11. Kumar, A., Lindner, V. Remodeling with neointima formation in the mouse carotid artery after cessation of blood flow. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 17 (10), 2238-2244 (1997).
  12. Sata, M., et al. A mouse model of vascular injury that induces rapid onset of medial cell apoptosis followed by reproducible neointimal hyperplasia. J Mol Cell Cardiol. 32 (11), 2097-2104 (2000).
  13. Roque, M., et al. Mouse model of femoral artery denudation injury associated with the rapid accumulation of adhesion molecules on the luminal surface and recruitment of neutrophils. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 20 (2), 335-342 (2000).
  14. Lindner, V., Fingerle, J., Reidy, M. A. Mouse model of arterial injury. Circ Res. 73 (5), 792-796 (1993).
  15. Edelman, E. R., Adams, D. H., Karnovsky, M. J. Effect of controlled adventitial heparin delivery on smooth muscle cell proliferation following endothelial injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 87 (10), 3773-3777 (1990).
  16. Stemerman, M. B., Ross, R. Experimental arteriosclerosis. I. Fibrous plaque formation in primates, an electron microscope study. J Exp Med. 136 (4), 769-789 (1972).
  17. Brouchet, L., et al. Estradiol accelerates reendothelialization in mouse carotid artery through estrogen receptor-alpha but not estrogen receptor-beta. Circulation. 103 (3), 423-428 (2001).
  18. Filipe, C., et al. Estradiol accelerates endothelial healing through the retrograde commitment of uninjured endothelium. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 294 (6), H2822-H2830 (2008).
  19. Feuls, R., et al. Microvascular denudation of the femoral artery of the mouse as a model for restenosis. Rofo. 175 (7), 952-957 (2003).
  20. Holt, A. W., Tulis, D. A. Experimental Rat and Mouse Carotid Artery Surgery: Injury & Remodeling Studies. ISRN Minim Invasive Surg. 2013, (2013).
  21. Iafrati, M. D., et al. Estrogen inhibits the vascular injury response in estrogen receptor alpha-deficient mice. Nat Med. 3 (5), 545-548 (1997).
  22. Sullivan, T. R., et al. Estrogen inhibits the response-to-injury in a mouse carotid artery model. J Clin Invest. 96 (5), 2482-2488 (1995).
  23. Yin, Y., Zhao, X., Fang, Y., Huang, L. Carotid artery wire injury mouse model with a nonmicrosurgical procedure. Vascular. 18 (4), 221-226 (2010).
  24. Nam, D., et al. Partial carotid ligation is a model of acutely induced disturbed flow, leading to rapid endothelial dysfunction and atherosclerosis. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 297 (4), H1535-H1543 (2009).
  25. Nam, D., et al. A model of disturbed flow-induced atherosclerosis in mouse carotid artery by partial ligation and a simple method of RNA isolation from carotid endothelium. J Vis Exp. (40), (2010).
  26. Kuhlmann, M. T., et al. Implantation of a carotid cuff for triggering shear-stress induced atherosclerosis in mice. J Vis Exp. (59), (2012).
  27. Carmeliet, P., et al. Vascular wound healing and neointima formation induced by perivascular electric injury in mice. Am J Pathol. 150 (2), 761-776 (1997).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

T pSay 96vask ler yaralanmaneointimal hiperplaziperivask ler ila da t mtel yaralanmasrestenoz fare cerrahi modeli

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır