JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

The purpose of this protocol is to demonstrate the principles and techniques for measuring and calculating glomerular filtration rate, urine flow rate, and excretion of sodium and potassium in a rat. This demonstration can be used to provide students with an overall conceptual understanding of how to measure renal function.

Özet

Measurements of glomerular filtration rate (GFR), and the fractional excretion of sodium (Na) and potassium (K) are critical in assessing renal function in health and disease. GFR is measured as the steady state renal clearance of inulin which is filtered at the glomerulus, but not secreted or reabsorbed along the nephron. The fractional excretion of Na and K can be determined from the concentration of Na and K in plasma and urine. The renal clearance of inulin can be demonstrated in an anesthetized animal which has catheters in the femoral artery, femoral vein and bladder. The equipment and supplies used for this procedure are those commonly available in a research core facility, and thus makes this procedure a practical means for measuring renal function. The purpose of this video is to demonstrate the procedures required to perform a lab demonstration in which renal function is assessed before and after a diuretic drug. The presented technique can be utilized to assess renal function in rat models of renal disease.

Giriş

The most important function of the kidney is the homeostatic regulation of extracellular water and electrolyte content. The kidneys closely regulate extracellular water, sodium (Na) and potassium (K) to maintain normal physiological levels. Disturbances in renal function can result in serious metabolic disorders which can be fatal. The basic renal process occurs in the nephron and begins with the filtration of plasma at the glomerulus and ends with the excretion of urine. Other processes that determine the final concentration of water, Na and K in the urine are secretion and reabsorption within the nephron. Measurements of glomerular filtration rate (GFR) and the fractional excretion of Na and K are critical in assessing renal function in health and disease. The reader is referred to previously published review articles and textbooks for a more thorough discussion of kidney function1-4.

GFR can be measured as the steady state renal clearance of inulin which is filtered at the glomerulus, but not secreted or reabsorbed along the nephron5. While this technique requires anesthesia, surgical preparation, and a terminal experiment, it is considered the gold standard of GFR measurement. Using inulin that is tagged with fluorescein-isothiocyanate (FITC), plasma and urine concentration of FITC-inulin can be easily measured in small volumes and used to calculate GFR during multiple time points of an experiment. The fractional excretion of Na and K can be determined from the concentration of Na and K in plasma and urine.

The conceptual understanding of how to measure renal function can easily be demonstrated in a short lab designed to allow students to actively participate in some aspects of the experiment. This video depicts the pre-lab preparation, the renal function demonstration, and the post-lab evaluation of results. The surgical techniques necessary for making measurements of GFR are demonstrated in an anesthetized rat. In addition, example calculations for GFR, and the fractional excretion of Na and K are shown before and after administration of a diuretic drug.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

Önceden herhangi bir hayvan prosedürüne kurumsal hayvan bakımı ve kullanımı komitesi (IACUC) protokolünü onaylaması gerekir. Bu protokol Michigan State Üniversitesi IACUC tarafından onaylanmıştır.

FITC inulin Çözüm 1. Ön-lab Hazırlık

  1. Tüm inülin çözünene kadar yavaş yavaş ısınmaya 20 ila 70 ° C ml tuzlu su ve FITC inulin (5 mg / ml FITC-inülin) 100 mg ilave edin.
  2. Soğuk, oda sıcaklığına kadar çözeltisi ve sığır serum albümini 800 mg ekleyin (40 mg / ml BSA, liyofilize toz, esas olarak, agaroz jel elektroforezi ile arındırılmış, endotoksin, ≥98% saflığa globulin).
  3. Filtre kağıdı (grade 1) ile inulin-BSA çözüm Filtre. Bir şırınga ucu filtre (0,2 um) olan bir 20 ml şırınga içinde çözelti filtre koyun ve ışıktan korumak için folyo ile kapatın.

2. Anestezi ve Cerrahi

  1. Anestezi sağlamak üzere,% 5 izofluran ile dolu bir indüksiyon odasında sıçan yerleştirin. Kayıt body ağırlığı (250-350 g) ve deney boyunca 37 ° C vücut ısısını korumak için tasarlanmış bir ısıtılmış ameliyat işlemine sıçan yerleştirin. Yavaşça pençeleri üzerinde laboratuvar bant ile platforma sıçan sabitleyin. 0.8-1.0 L / dk hava akımı hızında tıbbi sınıf% 100 O 2 ile% 1-2 izofluran ile anestezi koruyun.
  2. Kan basıncı ve kalp hızı izleme ve kan örneklemesi için femoral arter içine bir kateter konik (damar içi ucu OD, 2.7f) yerleştirin.
  3. Inülin infüzyon için femoral damara bir kateter (PE-50) yerleştirin. 5-O örgülü ipek cerrahi sütür 6 çevreleyen doku kateter sabitleyin.
  4. Bir gerinim ölçer basınç dönüştürücü arteriyel kateter takın. Tutanak kan basıncı ve gerçek zamanlı bir bilgisayar ekranında veri toplama yazılım ve ekranını kullanarak kalp hızı. Bu teknik, video, 6 ayrıntılı olarak gösterilmiştir.
  5. Suprapubik insizyon yoluyla mesaneye Açığa. Küçük bir kesMesanenin ucu delik ve bir ısı ile bir kanül (PE-190) takın idrar toplama mesane içine ucu alevlendi. Bir çanta-string sütür ile mesane kanül sabitleyin.

3. İdrar ve Kan Alma

  1. (300 g ağırlığındaki bir sıçan için 3 ml / saat) vücut ağırlığının her 100 g başına 1 mi / saat ayarlanmış akış oranı ile, bir şırınga pompası FITC inülin şırınga yerleştirin. Femoral ven kateter için şırınga takın. Inülin infüzyon başlatın ve 1-2 saat dengeleme dönemi izin verir. Işıktan korumak için folyo ile kaplı şırınga tutun.
  2. Idrar akışı oranı sabit ve 10 dakikalık bir süre için önceden tartılmış toplama şişe içinde, bir idrar örneği toplayarak örnek analizi (20 ul / dak) için yeterli olup olmadığını belirler. Dijital ölçek ile gravimetrik idrar hacmi belirlemek. 10 dakika toplama dönemi için yeterli bir idrar hacmi, 0.2 ml olmuştur. Iki ardışık koleksiyon 20 ul / m idrar akım hızını gösterir kadar idrar örnekleri toplamaya devamveya daha fazlası.
  3. Ön İlaç Örnekleri
    1. 20 dakikalık bir süre boyunca idrar örneği toplamak. Idrar toplama dönemi orta noktasında arteriyel kateter kan örneği (0.5 ml) toplayın. 1 U heparin içeren bir koleksiyon şişede bir kan örneği toplama önce tuzlu tamamen açık arteriyel kateter dikkatli olun. Arteriyel kan 0.5 ml toplanmasını kolaylaştırmak için ses işaretleri ile toplama şişeleri kullanın.
    2. Kan (yaklaşık. 0.1 mi) ve kateter temizlemek için heparin tuz çözeltisi (20 U / ml) ile arteriyel kateter yıkayın. temizlemek için gerekli olan heparin tuz hacmini sınırlamak için mümkün olduğu kadar arteriyel kateterin boyu kadar kısa olmalıdır.
      Not: Seyreltilmiş kan örnekleri GFR ve Na ve K fraksiyonel atılımının yanlış hesaplamalar üretmek
    3. 10 dakika bekleyin ve ikinci ön ilaç idrar ve kan örneği toplanmasını tekrarlayın.
  4. İki ilaç öncesi numune alındıktan sonra, bir diüretik dru tatbikg, furosemid (10 mg / kg), arteriyel kateter vasıtasıyla. İlacın kateter temizlemek için heparinli serum fizyolojik ile arteriyel kateter yıkayın. Arteriyel kateter yoluyla hava enjeksiyonu önlemek için özen gösterin. Furosemid enjeksiyonu zamanını kaydedin.
  5. Mesaj-ilaç örnekleri: Aşağıda 3 zaman noktalarının her birinde, 10 dakika toplama süresi boyunca idrar numunesi, ve idrar toplama süresi arasında orta nokta yakınında bir kan örneği (0.5 mi) toplanır.
    1. Post-İlaç Örnek 1 için - daha sonra furosemid beş dakika toplamak.
    2. Post-İlaç Örnek 2 için - sonra furosemid on dakika toplamak.
    3. Post-İlaç Örnek 3 - sonra furosemid onbeş dakika toplamak.
  6. Tüm numuneler toplanmıştır sonra, torakotomi ve kalp çıkarılmasıyla kurumsal prosedürlerine uygun olarak sıçan euthanize. Her iki böbreği çıkarın. Açarlar (çevreleyen membran kaldırmak) ve aşırı kan çıkarmak için böbrekleri kurulayın. Böbrekler tartılır.

4. Numune Analizi

  1. Tüm gravimetrik bir dijital ölçekli idrar örneği hacimleri ve kayıt ağırlıkları ölçün.
  2. Bir masa üstü santrifüj (1.800 xg) ile Santrifüj tam kan numuneleri plazma ayırmak için. Küçük etiketli şişelere plazma örnekleri aktarın.
  3. Bir sodyum / potasyum analizörü ile idrar ve plazma örneklerinde Na ve K konsantrasyonları analiz edin.
  4. Plazma ve idrar FITC inulin ölçümü
    1. Ilaç öncesi idrar ile seyreltilir ve HEPES tampon maddesi (500 mM, pH 7.4) ile birlikte, son ilaç idrar (1:10) (1: 400: 200-1).
    2. 96 oyuklu bir plakanın (oyuk başına bir örnekte) 'de HEPES tamponu standart veya numune ve 60 ul 40 ul ekle ve alüminyum folyo ile kaplı ise, 10 dakika boyunca karıştırın izin verir.
    3. Konsantrasyonlarda FITC-inulin bir standart eğri oluşturmak 6.25, 12.5, 25, 50, 100, 200, 400 ug / ml (Şekil 1). Ex bir mikroplaka okuyucu kullanılarak numuneler ve standartlar FITC-inülin floresan belirlemesırasıyla 485 ve 538 nm atıf ve emisyon dalga boylarında.
    4. 4 menü noktası lojistik fonksiyon regresyon analizine standartlar için floresan değerleri takınız. regresyon işlev parametreleri plazma ve idrar örneklerinde (Tablo 1) FITC-inülin konsantrasyonunu hesaplamak için kullanılır.

Sonuçların 5. Post-lab Analizi: Hesaplamalar

  1. (UV; ml / dak) İdrar Akış Hızı hesaplayın: [idrar hacmi toplanan (ml)] ÷ [toplama süresi (dak)]
  2. Glomerüler Filtrasyon Hızı hesaplayın (GFH; ml / dak): ÷ [Plazma inulin konsantre [İdrar inulin konsantrasyonu (ug / ml) UV (ml / dk) x]. (Ug / ml)]
  3. Serum sodyum konsantrasyonu (umol / ml) x GFR (ml / dak): Filtrelenmiş sodyum Yük (umol / dakika) hesaplamak
  4. Sodyum atılım hızı (U Na V; umol / dakika) hesaplayın: İdrar sodyum konsantrasyonu (umol / ml) (ml / dk) UV x
  5. Hesaplayın Sodyum Fraksiyonel Atılım (FE Na;%): [U Na V (ľmol / dk)] ÷ [Filtreli Sodyum Yükü (ľmol / dk)] x 100
  6. Filtreli Potasyum Load (ľmol / dak) hesaplayın: Plazma potasyum konsantrasyonu (mol / ml) GFR x (ml / dak)
  7. Potasyum atılım hızı (U K V, umol / dakika) hesaplayın: İdrar potasyum konsantrasyonu (umol / ml) (ml / dk) UV x
  8. Hesaplayın Potasyum Fraksiyonel Atılım (FE K;%): [U K V (ľmol / dk)] ÷ [Filtreli Potasyum Yükü (ľmol / dk)] x 100

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

laboratuvar gösteride kullanılan diüretik çok hızlı ilaç uygulama birkaç dakika içinde artmış Na, K sonuçlanan böbrek ve su atılımı tarafından filtre Na ve K emilimini inhibe furosemid oldu. Birincil mekanizma ile, furosemid GFH ve Na ve K filtrelenmiş yük üzerinde minimal etkisi olmalı, ama Na ve K idrar akışını ve fraksiyonel atılımını artacak

Bir anestezi uygulanmış sıçanlarda, GFR ilaç öncesi değerlerin ortalaması / dakika, Na atılımı 0.58 umol / d...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Dört kriterleri karşılaması gerekir GFH ölçümünde uygun bir işaretleyici: glomerülden serbestçe süzülür edilmesi, plazma proteinlerine bağlanmamış olması ve ne emilir ne nefron salgılandığı. İnülin bu ölçütlerini karşılayan bir fruktoz polimerdir. Sonuç olarak, inulin renal klirensi GFH 7 ölçmek için altın standart olarak kabul edilir. gösterdi tekniği inulin 8,9 sabit bir infüzyon sırasında Zamanlı idrar koleksiyonları kullanılarak inulin renal klerensini ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarını olduğunu beyan ederim. görüş veya burada yer alan iddiaların yazarın özel görünümleri vardır ve resmi ya da Ordu Bölümü veya Savunma Bakanlığı görüşlerini yansıtan şeklinde olması değildir.

Teşekkürler

laboratuvar gösteri için fon kaynağı NIGMS hibe oldu: GM077119. Biz Bütünleştirici ve Organ Sistemleri Farmakoloji Kısa Couse onların desteği için Dr. Joseph R. Haywood ve Dr. Peter Cobbett teşekkür ederim. Biz de laboratuvar gösteri onu teknik destek için Sayın Hannah Garver teşekkür ederiz.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
5-0 Braided Silk Surgical SutureSurgical Specialties CorpSP1033
Assay Plate, 96-WellCostar 3922
Bovine Serum AlbuminSigma Chemical CoA2934-25G
CentrifugeBeckman CoulterMicroFuge 18, 357160
Conical Sample TubesDot Scientific Inc. #711-FTG
Cotton Tipped ApplicatorsSolon Manufacturing Co56200
Data Acquisition SoftwareADInstrumentsLabChart Pro 7.0
Digital Scale Denver InstrumentAPX-4001
FITC-InulinSigma Chemical CoF3272-1G
Gauze SpongesCovidien2146
Heated Surgical BedEZ-AnesthesiaEZ-212
HeparinSagnetNDC 25021-402-10
HEPESSigma Chemical CoH3375
IsofluraneAbbott Animal HealthIsoFlo, 5260-04-05
Isoflurane VaporizerEZ-AnesthesiaEZ-190F
Micro Dissecting ForcepsBiomedical Research Instruments Inc.70-1020
Microplate Reader - FluoroskanThermoScientificAscent FL, 5210460
NOVA 5+ Sodium/Potassium AnalyzerNOVA BioMedical14156
Olsen-Hegar Needle Holders with ScissorsFine Science Tools12002-12
PE-190 (for bladder catheter)BD Medical427435
Pressure Transducer ADInstrumentsMLT1199
Pyrex Culture TubesCorning Inc.99445-12
Rat Femoral Tapered Artery CatheterStrategic Applications Inc.RFA-01
Salix Furosemide 5%Intervet#34-478
Strabismus ScissorsFine Science Tools14075-11
Student Surgical ScissorsFine Science Tools91402-12
Surgical GlovesKimberly-ClarkSterling Nitrile Gloves
Syringe pumpRazel ScientificR99-E
Tissue ForcepsFine Science Tools91121-12
Tissue ScissorsGeorge Tiemann  Co105-420

5-0 Braided Silk Surgical Suture Surgical Specialties Corp SP1033 Assay Plate, 96-Well Costar  3922 Bovine Serum Albumin Sigma Chemical Co A2934-25G Centrifuge Beckman Coulter MicroFuge 18, 357160 Conical Sample Tubes Dot Scientific Inc.  #711-FTG Cotton Tipped Applicators Solon Manufacturing Co 56200 Data Acquisition Software ADInstruments LabChart Pro 7.0 Digital Scale  Denver Instrument APX-4001 FITC-Inulin Sigma Chemical Co F3272-1G Gauze Sponges Covidien 2146 Heated Surgical Bed EZ-Anesthesia EZ-212 Heparin Sagnet NDC 25021-402-10 HEPES Sigma Chemical Co H3375 Isoflurane Abbott Animal Health IsoFlo, 5260-04-05 Isoflurane Vaporizer EZ-Anesthesia EZ-190F Micro Dissecting Forceps Biomedical Research Instruments Inc. 70-1020 Microplate Reader - Fluoroskan ThermoScientific Ascent FL, 5210460 NOVA 5+ Sodium/Potassium Analyzer NOVA BioMedical 14156 Olsen-Hegar Needle Holders with Scissors Fine Science Tools 12002-12 PE-190 (for bladder catheter) BD Medical 427435 Pressure Transducer  ADInstruments MLT1199 Pyrex Culture Tubes Corning Inc. 99445-12 Rat Femoral Tapered Artery Catheter Strategic Applications Inc. RFA-01 Salix Furosemide 5% Intervet #34-478 Strabismus Scissors Fine Science Tools 14075-11 Student Surgical Scissors Fine Science Tools 91402-12 Surgical Gloves Kimberly-Clark Sterling Nitrile Gloves Syringe pump Razel Scientific R99-E Tissue Forceps Fine Science Tools 91121-12 Tissue Scissors George Tiemann  Co 105-420

Referanslar

  1. Silverthorn, D. U. Human Physiology: An integrated approach. , Pearson. (2012).
  2. Hall, J. E. Guyton and Hall Textbook of Medical Physiology. , 303-344 (2011).
  3. Levey, A. S. Measurement of renal function in chronic renal disease. Kidney International. 38 (1), 167-184 (1990).
  4. Thurau, K., Valtin, H., Schnermann, J. Kidney. Annual Review of Physiology. 30, 441-524 (1968).
  5. Shannon, J. A., Smith, H. W. The excretion of inulin, xylose, and urea by normal and phoriziniaed man. Journal of Clinical Investigation. 14, 393-401 (1935).
  6. Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements. Journal of Visualized Experiments. (59), (2012).
  7. Sterner, G., et al. Determining 'true' glomerular filtration rate in healthy adults using infusion of inulin and comparing it with values obtained using other clearance techniques or predictive equations. Scandinavian Journal of Urology and Nephrology. 42, 278-285 (2008).
  8. Toto, R. D. Conventional measurement of renal function utilizing serum creatinine, creatinine clearance, inulin and para-aminohippuric acid clearance. Current Opinion in Nephrology and Hypertension. 4 (6), 505-509 (1995).
  9. Matavelli, L. C., Kadowitz, P. J., Navar, L. G., Majid, D. S. Renal hemodynamic and excretory responses to intra-arterial infusion of peroxynitrite in anesthetized rats. Americam Journal of Physiology. 296, F170-F176 (2009).
  10. Davidson, W. D., Sackner, M. A. Simplification of the anthrone method for the determination of inulin in clearance studies. Journal of Laboratory, & Clinical Medicine. 62, 351-356 (1963).
  11. Symes, A. L., Gault, M. H. Assay of inulin in tissues using anthrone. Clinical Biochemistry. 8 (1), 67-70 (1975).
  12. Shalmi, M., Lunau, H. E., Petersen, J. S., Bak, M., Christensen, S. Suitability of tritiated inulin for determination of glomerular filtration rate. Americam Journal of Physiology. 260 (2 Pt 2), F283-F289 (1991).
  13. Denton, K. M., Anderson, W. P. Glomerular untrafiltration in rabbits with superficial glomeruli. EUropean Journal of Physiology. 419 (3-4), 235-242 (1991).
  14. Jobin, J., Bonjour, J. -P. Measurement of glomerular filtration rate in conscious unrestrained rats with inulin infused by implanted osmotic pumps. Americam Journal of Physiology. 248 (5 Pt 2), F734-F738 (1985).
  15. Lorenz, J. N., Gruenstein, E. A simple, nonradioactive method for evaluating single-nephron filtration rate using FITC-inulin. Americam Journal of Physiology. 276 (1 Pt 2), F172-F177 (1999).
  16. Qi, Z., et al. Serial determination of glomerular filtration rate in conscious mice using FITC-inulin clearance. Americam Journal of Physiology. 286 (3), F590-F596 (2004).
  17. Bivona, B. J., Park, S., Harrison-Bernard, L. M. Glomerular filtration rate determinations in conscious type II diabetic mice. Americam Journal of Physiology. 300 (3), F618-F625 (2011).
  18. Rosen, S. M. Effects of anaesthesia and surgery on renal hemodynamics. British Journal of Anesthesiology. 44, 252-258 (1972).
  19. Cousins, M. J. Anesthesia and the kidney. Anaesthesia and intensive care. 11 (4), 292-320 (1983).
  20. Walter, S. J., Zewde, T., Shirley, D. G. The effect of anaesthesia and standard clearance procedures on renal function in the rat. Quarterly Journal of Experimental Physiology. 74, 805-812 (1989).
  21. Rieg, T. A. A high-throughput method for measurement of glomerular filtration rate in conscious mice. Journal of Visualized Experiments. (75), (2013).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

FizyolojiSay 101b breks anglomer ler filtrasyon h zidrar ak h zsodyum at l mpotasyum at l mfiltrelenmi y kkan bas nc

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır