JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol, bakım davranışı ölçmek için sağlam, nicel veri üreten, Drosophila'daki ölçeklendirilebilir bireysel bakım tezgah tekniğini tanımlamaktadır. Yöntem, bakımsız ve bakımlı hayvanlar arasındaki boya birikimindeki farkın belirli bir süre boyunca karşılaştırılmasına dayanmaktadır.

Özet

Drosophila tımar etme davranışı hem ön hem arka kıskaçların koordine hareketini gerektiren karmaşık, çok adımlı bir lokomotif programdır. Burada, damlama deneyi protokolünü ve Drosophila damatlaştırma konusundaki küçük ölçekli veya büyük ölçekli araştırmalar için uygun maliyetli ve ölçeklendirilebilir yeni oda tasarımı sunuyoruz. Sinekler Brilliant Yellow boya ile vücudun her tarafına tozlanır ve boya oda içindeki bedenlerinden uzaklaştırılması için zaman verilir. Sinekler daha sonra, boya çözündürmek için belirli bir hacimde etanol içine çöker. Dezenilmemiş hayvanlara kıyasla bakımsız hayvanlar için boya etanol numunelerinin göreceli spektral absorbansı ölçülür ve kaydedilir. Protokol, tek tek sinekler için boya birikiminin niceliksel verilerini verir; bunlar kolaylıkla ortalanabilir ve örnekler arasında karşılaştırılabilir. Bu, deneysel tasarımların mutant hayvan çalışmaları veya devre manipülasyonları için damat yeteneğini kolayca değerlendirmesini sağlar. Bu verimli prosedür çok yönlü ve ölçeklenebilir. WOrk akışını ve Drosophila tip I Dopamin Reseptörü ( DopR ) için WT hayvanları ve mutant hayvanlar arasındaki karşılaştırma verileri.

Giriş

Drosophila melanogaster ( D. melanogaster ) 'de tımarlama , birden fazla bağımsız motor programının koordinasyonunu içeren sağlam bir doğuştan gelen davranıştır 1 . Meyve, toz, mikrop ve diğer patojenler vücutlarını temizler; bu da, görme ve uçuş gibi normal fizyolojik fonksiyonları engelleyebilir veya önemli bağışıklık sorunlarına yol açabilir. Hem mekanik 2 hem de bağışıklık aktivasyonunu 3 algılar ve yanıt verirken, sinekler yeterli derecede temizleninceye ve vücudun bir başka bölümüne doğru ilerleyinceye kadar bacaklarını birlikte ya da hedeflenen bir vücut bölgesine tekrar ovarlar. Sinekler, kalıplaşmış desenler 1 , 4'te büyük oranda ortaya çıkan belirgin vuruşlarda tımar etme hareketleri gerçekleştirirler. Davranışsal bir hiyerarşi, tımar sinyalleri önceliklendirildiğinde ortaya çıkar. Etkinlik devreleri ve kalıpları;hiyerarşinin en üstünde tımar programlar sonradan 5 bakımlı vücut bölgelerinden paralel sinyallerini ilk oluşur ve bastırmak fa modeli. Başa en yüksek öncelik verilir, daha sonra karın, kanatlar ve nihayetinde toraks 5 verilir .

D. melanogaster'ın tımar programı, sinirsel devreleri, modüle edici moleküler sinyaller ve nörotransmitterleri incelemek için ideal bir sistemdir. Örneğin, nörofibromin fonksiyonunun 6 uzlaşılması, Drosophila kırılgan X zihinsel gerilik proteininin ( dfmrl ) 7 kaybı ve bisfenol A (BPA) 8'e maruz kalma, aşırı nevrofibromatozis , kırılgan X semptomlarına benzeyen aşırı bakımı ve diğer davranışlara neden olur Sendromu ve otistik spektrum bozukluklarının ve Dikkat Eksikliği Hiperaktivite Bozukluğunun (DEHB) yönlerini içerir. Bakım davranışı aynı zamanda habitua da olabilirBu motor programını davranışsal plastisite çalışmaları için ödünç alan mutant suşlar 2 boyunca farklı şekilde ölçülmüştür. Drosophila tarafından modellenebilen nörolojik olayların genişliği, sineklerin kendilerini damatlama yeteneğini ölçmek için yeni bir karşılaştırmalı yaklaşım gerektirir.

Vesiküler monoamin taşıyıcılarının ve vücudun içindeki diğer dopamin ve diğer biyojenik aminlerin bol miktarda biraraya getirilmesinin, meyve sineği tımar etme davranışına aracılık ettiği gösterildi 9 , 10 . Tiramin, oktopamin bir öncüsü, aynı zamanda daha az bir oranda 7 bakım tetikler oktopamin ve dopamin, başları sinekler karşılaştırılabilir Arka bacak bakım aktivitesini uyarır. D. melanogaster 11 , 12 , 13 , 14'te dört dopamin reseptörü tanımlanmıştır . Bu protokol açıklanan tımar tahlil yöntemi kullanarak, davranış 15 tımar Tip I ailesi Dopamin Reseptör DopR (dilsiz DopR, dDA1) Arka bacak içinde bir rol belirlendi.

Bakım dolaylı olarak, bir hayvanın tüm vücudu bir işaretleyici boya veya flüoresan tozu 5 , 16 ile tozladıktan sonra tamamen damat olabileceği temizlik derecesine bakarak nicelleştirilebilir. Vücutta kalan tozun geri kalanı genel davranış için göreceli bir işaretleyici olarak kullanılabilir. Damlamaya yetecek vakit verildikten sonra tozlu sinekler tımar davranışında belirgin bir eksikliği gösterebilirler. Tımar araştırmalar daha geniş olmak gibi, protokoller boyun bağ sinirler 10 üzerine farmakolojik tedaviler ekleme kafaları kesilmek gibi uygulamalar dahil olması, bakım yanıtı 2 ortaya çıkarmak için, kılların dokunsal uyarılmasıVe davranış video kaydı 15 . Tımar doğrudan gözlenmesi, kolaylıkla görsel gözlem ile ve elle belirli bakım etkinlikleri 4 süresini ve sıklığını kaydedilmesiyle incelenebilir.

Bir 3B yazıcı veya lazer kesici ile yapılabilecek on beş kuyu bakım odasını tasarladık ve üretim planı tasarımları üreme için hazırdır 15 . Tasarım, sırasıyla sinek ve / veya boya yüklü, örgü ve iki ek kayar üst ve alt plaka ile birbirine uyan açıklıklar olan iki birleştirilmiş merkezi plakalar kullanıyor. Toz haline getirilmiş sinekler damat kılmaya izin verdikten sonra, onları boya çözündürmek ve bu solüsyonun emiciliğini boyanın dalga boyunda ölçmek için etanolde bırakırız. Birden fazla paralel numune için bir plaka okuyucu kullanılabilir veya tekli numuneler için tekli okunur bir spektrofotometre kullanılabilir. Bu yöntem kullanım ve harekete geçirme hatalarını en aza indirir.Daha düşük, daha düşük maliyetli bir ölçekte yapılacak tımar testleri için düşükler. Bu yöntem, elde edilen ve sıcaklığa duyarlı devre manipülasyonlar için 5 ısıtma elemanları ile daha büyük bir bakım odaları kullanımı Julie Simpson ve Andrew tohumları, öncülük metotlardan modifiye edilmiştir. Aşağıdaki protokol, vücudun her bölümünde boya birikiminin nicelleştirilmesi için alternatif yöntemlerin yanı sıra, tüm vücut bakımlarının sayısallaştırılmasını gösterir. Ayrıca, WT ve DopR mutantları arasında örnek karşılaştırma verisinin yanı sıra bakım davranışı için basit bir performans indeksinin hesaplanması için yöntemler sunuyoruz .

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

1. Hazırlık

  1. Canlı Drosophila'yı kültür şişesinden damat odasına taşımak için bir aspiratör hazırlayın. Aspiratörler, anestezinin sonraki davranışsal gözlemi etkilememesini sağlamak için bilinçli hayvanların davranış odasına transfer edilmesine izin verir.
    1. Makas kullanarak, 1 fitlik tek kullanımlık mikropipet ucunun ucundan en az 1 inç uzakta, 1.5 fit tigon borusu ID 1/8 kes. Kesme ucu üzerine 1 cm'lik kare mesh (açıklık 0.196 inç) tutun.
      NOT: Çoğu 1mL ipucu, tipin paket kutusuna oturduğu, genellikle o satıra kesilen bir derecelendirme çizgisine sahiptir.
    2. Örgü / kesme ucu üzerine taze 1 mL'lik bir mikropipet ucu yerleştirin. Örgü şeklini iki ipucu arasında sıkı bir engel oluşturarak izleyin. Yeni ucun içi sinekler için bir tutma odası oluşturur.
    3. Tek bir sineğin geçişini sağlayacak kadar genişliği açmak için yeni mikropipet ucunun ucunu kesin. KulübeYakıt deposunun deliğine yaklaşık olarak uyacaktır (yaklaşık 1.5-2 mm çapında).
    4. İç içe geçmiş ipuçlarını tygon hortumunun ucuna tam olarak oturtun. Vakum basıncına izin vermek için sıkı bir şekilde oturmasını sağlamak için uçları borunun içine doğru itin.
    5. Borunun diğer ucunda 200 μL'lik bir mikropipet ucunun ucunu kesin ve borunun içine dar kesim ucunu yerleştirin. Bu aspiratörün "ağız" tarafıdır.
  2. Toz alikot tüpleri hazırlayın. Katranlı tartı kağıdına yaklaşık 5 mg Parlak Sarı boya tartın. Tozu 0.6 mL'lik bir mikrosantrifüj tüpüne boşaltın ve kapağı sıkıca kapatın.
    NOT: Bazı lateks eldivenleri boya geçirgen olduğu için, kısımların hazırlanması sırasında nitril eldiven kullanmanızı öneririz.
  3. Denemedeki tüm numuneler için (her odadaki her sinek için bir tane) adım 1.2'yi tekrarlayın.
  4. Etanol (EtOH) tüpleri hazırlayın: 1 mL% 100 EtOH, 1.5 mL mikrosantrifüj tüplerine pipetleyin. Genotipler veya koşullar için etiket tüpleri.
  5. Denemedeki tüm numuneler için (her odadaki her sinek için bir tane) adım 1.4'ü tekrarlayın. Bakım testinin tamamlanması için EtOH tüplerini kapatın ve kaydedin. Negatif kontroller için sadece bir sinek olmadan sadece 1 mL EtOH olacak en az bir "Boş" numune de ekleyin.
  6. Her damat haznesini, kayan üst plakayı (daha küçük deliklerle) vidalayın, ancak alt plakayı (daha büyük deliklerle birlikte) toz eklenmesi için çıkartarak bir araya getirin.
  7. Her gerekli bakım odasını üst kısmı aşağı bakacak şekilde masanın üzerine koyun. Sinek giriş tarafı yüzü aşağı bakar.
  8. Tüp, istenen kuyunun üstündeki haznenin yüzeyine dokunarak her bölmeye 5 mg Brilliant Yellow boya alikuotu yükleyin. Tüm tozların kafesden üst plakaya düşmesini sağlamak için odacığa masanın üzerine dokunun.
  9. Alt plakayı, konik deliklerin daha geniş uçları dışarıya bakacak ve delikler oyukların üzerine oturmayacak şekilde her hazneye vidalayın. Botu güvende tutunPlakayı sıkıca kapatın, böylece kaymaz ve boya bırakmaz.
  10. Odanın üstünü çevirin ve bir masaya birkaç kez vurarak toz alt plakaya dayanıncaya kadar düşer.
  11. Küçük deliklerin, on beş kuyuya hizalanması için odanın üst plakasını "açık pozisyon" a kaydırın, böylelikle tek tek kuyulara sineklerin girmesine izin verin.

2. Uçucu tozlama ve bakım

  1. Bir saman kullanıyormuş gibi aspiratörün bir ucundan hafifçe emerek ağız aspiratörüne bir sinek yükleyin. Hafifçe üfleme ve ağzı hedefe yönlendirerek sinekleri yatırın.
  2. Deney için kullanılan her oyuğa bir sinek havalandırın. Bir kuyu yüklendikten sonra üst plakayı kaydırın, böylece sinek oda içine sıkıştırabilir ve diğer kuyuları yüklerken sineğin kaçışını önlemek için odanın tamamı yüklenirken bandın üzerine iyi yerleştirilir. Birden fazla sinek bir şarkının içine asılırsaE, yalnızca bir sinek kalana kadar açıklığı bırakın.
  3. Gerekli oyukların hepsi sineklerle doldurulduktan sonra, odanın alt plakasının yukarıya gelecek şekilde çevirin; böylece toz, sineklerin ağdan düşerek katını tutma potansiyeline sahiptir.
  4. Vidaları sıkarak üst ve alt plakları sıkıca sabitleyin ve 4 saniye süreyle sinekleri süpürerek odayı vorteksleyin.
  5. Boyayı diğer tarafa düştüğü şekilde odacığı (üst plaka aşağı bakacak şekilde) bir masaya iki kez vurun. Ardından, boyayı, üst bölmede tutulan sinekten uzaktaki alt bölmenin zeminde yerleştiğinden emin olmak için bölmeyi çevirin (üst plaka yukarı bakınız) ve bölmeyi iki kez vurun.
  6. Sinirlenmeye izin verilmeyen kontrol sinekleri için, hemen protokolün 3. Adımına geçin. Testi tamamlayacak sinekler için Adım 2.7'ye geçin.
  7. Sineklerin damat olmasını sağlamak için odayı bir masa veya tezgah üzerinde, üst plaka ile yukarı doğru otuz dakika yukarıya doğru yatırın. Bölmeyi yerleştirinTüm tımar etme deneyleri (aydınlatma seviyeleri, nem ve sıcaklık) için ortamınızı sabit tutmak için bir gürültüye ve titreşimsiz yere yerleştirin. Oda sıcaklığında veya 25 ° C'de nem kontrollü bir masa üstü kuluçka makinesi idealdir.

3. Numunelerin Hazırlanması ve Absorpsiyon Analizi

  1. Üst tabla ile hazne seviyesini yukarı tutarak, yavaşça taban plakasını sökün ve boyayı kaybetmemeye özenerek bölmeden çıkarın.
  2. Odaları, sinekler anestezi edilinceye kadar düşük hava akımı ile bir Fly CO 2 pedine yerleştirin.
  3. Bölmeden üst plakayı çıkarın. Bir bacak kapmak için dikkatli bir şekilde forseps kullanın ve her bir odadan bir toz püskürtün ve EtOH içeren 1.5 mL mikrosantrifüj tüpüne yerleştirin. Her biri bir sinek içeren 15 odacık için transfer süresi yaklaşık 3-5 dakikadır. Deneycilerin, deneylerin verimli bir şekilde hazırlanmasını sağlamak için, birden fazla odayla deneyleri şaşırttığında / aktarma sürelerini dikkate almaları gerekir.
  4. Her mikro santrifüj tüpüne 1 sinek bulunduğunda kapağı kapatın ve tüpü çalkalamak için üç kez ters çevirin ve boya ve etanol çözeltisini karıştırın.
  5. Çözünürlüktaki sinekten boyanın tamamen çıkarılmasını sağlamak için etanol ve sinekler içeren tüpleri oda sıcaklığında 5 saat inkübe edin. 5 saat sonra, sineklerden boyanın temizlenmesini sağlamak için her tüpü (2 saniye) vorteksleyin.
  6. Plakada bulunan her numunenin yerini not edin, mümkünse, 96 oyuklu bir plakanın bir oyuğuna 50 uL deneysel 1.5 mL tüp ekleyin. Numuneyi 5 kat seyreltmek için 200 μL EtOH ekleyin. Seyreltme, aşırı tozlanmış sineklerin tavan etkilerini veya büyük tımar kusurlarını önler.
  7. Her numuneyi 397 nm'de analiz etmek için bir plaka okuyucu kullanın. Alternatif olarak, plaka okuyucu yoksa, görünür spektrumdaki standart bir spektrofotometre üzerinde tek tek numuneler ve boşluklar için absorbansı ölçün.
  8. Numuneyi plak okuyucu ile okuyun ve kaydedin ve elektronik tabloyu recorde ile kaydedinD numuneleri alıyor.

4. Sonuçların Nicelleştirilmesi

  1. Tüm örnekler için sonuçları derleyin ve her bir genotip veya durum için varyansı ölçün.
    NOT: 0 dakika ve 30 dakika sonra Boya birikimi, tek yönlü ANOVA ve Bonferroni düzeltme veya çoklu paralel karşılaştırmalar için diğer düzeltmeler ile istatistiksel analiz kullanılarak ayrı koşullar olarak kabul edilir.
  2. Aşağıdaki denklemi kullanarak her genotipli / durum için tımar yüzdesi farkını hesaplayın: [(zaman 0'daki boya birikim ortalama değeri - 30'da boya birikim ortalama değeri] / boya biriktirme ortalama değeri 0] x 100.
  3. Çubuk grafiklerdeki her bir genotip ve durum yüzdesini ifade edin ve genotipler ve koşulları karşılaştırın.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Damatlık tahlilinde, ayarlama için belirlenen bir süre boyunca (30 dakika) sineklerin bedenlerinde kalan biriken boyanın göreli geri kalanına dayanılarak davranış performansını değerlendirmek için niceliksel veriler elde edilir. Sürgülü damat odası tasarımının örnek görüntüleri ve tahlilin ana adımları Şekil 1'de vurgulanmaktadır. Sinekler, boya varlığında vorteks yaparak hemen tozlanma olayından önemli miktarda boya toplarlar (

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Bakım testi nispeten basittir, ancak deneyanları aşağıdaki hususlara özel dikkat etmeye özen göstereceğiz. Sinekler ve boyayı taktıktan sonra üst ve alt plakalardaki vidaları sıkarak sıkı bir sızdırmazlık korumak tekrarlanabilir sonuçlar için gereklidir. Parlak Sarı boya çok ince ve gevşek derzler odanın kenarlarından boya kaybına izin verecek. Her kuyu için boya içeriğindeki düzensizlik, tımar halindeki olaylar için varyasyon ve sahte pozitif oranları artıracak düzensiz tozlama gibi ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Yazarlar çıkar çatışması olmadığını beyan eder.

Teşekkürler

Bu metodoloji ve oda tasarımlarını test etme ve tesis etme konusunda erken çalışmalar yapmak için Brian Shepherd, Tat Udomritthiruj, Aaron Willey, Ruby Froom, Elise Pitmon ve Rose Hedreen'e teşekkür etmek istiyoruz. Yazıyı okumak ve düzenlemek için Kelly Tellez ve Graham Buchan'a teşekkür ediyoruz. Andrew Toeds ve Julie Simpson'a öncü çalışmaları ve Brilliant Yellow Dye (Sigma) kullanımını önermek için verdikleri tavsiye ve destekleri nedeniyle teşekkür ediyoruz. Bu çalışma kısmen Mary E. Groff Cerrahi ve Tıbbi Araştırma ve Eğitim Yardım Kuruluşu Güvenliği, Bronfman Bilim Merkezi ve Hellman Fellows Programı tarafından desteklenmektedir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
High-Flex Tygon PVC Clear TubingMcMaster-Carr5229K54ID 1/8", OD 1/4", used with micropipettor tips and mesh to construct mouth aspirators
Micropipette tips (1 mL and 200 μL)Genesee Scientific24-165, 24-150R
Nylon Mesh Screen, 2 x 2.6"McMaster-Carr9318T44Used to construct grooming chamber and mouth aspirators
Dumont #5 ForcepsRoboz Surgical InstrumentRS-5050
Brilliant Yellow DyeSigma-Aldrich201375-25Gwe recommend use of nitrile gloves while handling this product
VortexerFisher Scientific12-812set to "touch"
EthanolCarolina Biological Supply86-1282
1.5 mL microcentrifuge tubesVWR International10025-726
0.65 mL microcentrifuge tubesVWR International20170-293tubes can be reused with successive assays
UV 96-well plateCorning26014017
BioTek Synergy HTX PlatereaderBioTekneed to download catalog to access product numberhttp://www.biotek.com/products/microplate_detection/synergy_htx_multimode_microplate_reader.html?tab=overview
Gen5 Microplate Reader and Imager SoftwareBioTek
Microsoft ExcelMicrosofthttps://www.microsoftstore.com/store/msusa/en_US/pdp/Excel-2016/productID.323021400?tduid=(65d098c0e83b86c952bdff5b0719c83f)(256380)(2459594)(SRi0yYDlqd0-LI..ql4M2LoZBEhcBljvIA)()
Drosophila IncubatorTritechDT2-CIRC-TK
1/4" acrylic plasticMcMaster-Carr8473K341
8 - 32 nutsMcMaster-Carr90257A009
8 - 32 x 1" hex cap screwsMcMaster-Carr92185A199the bottom plate needs to be tapped for this size screw
8 - 32 x 1/2" hex cap screwsMcMaster-Carr92185A194the second plate from the top needs to be tapped
2 - 56 3/8" flat head phillips machine screwsMcMaster-Carr91500A088these hold the two middle plates together
0.175" ID, 1/4" OD, 0.34" aluminum pipeMcMaster-Carr92510A044Manufactured in-house; product listed is approximately the same dimensions and should work for size 8 screws.  These act as sheaths for the 1" screws and set the hex cap up slightly from the surface of the top plate

Referanslar

  1. Szebenyi, A. L. Cleaning Behaviour in Drosophila-Melanogaster. Animal. Behaviour. 17, (1969).
  2. Corfas, G., Dudai, Y. Habituation and dishabituation of a cleaning reflex in normal and mutant Drosophila. J Neurosci. 9 (1), 56-62 (1989).
  3. Yanagawa, A., Guigue, A. M. A., Marion-Poll, F. Hygienic grooming is induced by contact chemicals in Drosophila melanogaster. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 8, (2014).
  4. Dawkins, R., Dawkins, M. Hierarchical Organization and Postural Facilitation - Rules for Grooming in Flies. Animal Behaviour. 24 (Nov), 739-755 (1976).
  5. Seeds, A. M., et al. A suppression hierarchy among competing motor programs drives sequential grooming in Drosophila. Elife. 3, e02951(2014).
  6. King, L. B., et al. Neurofibromin Loss of Function Drives Excessive Grooming in Drosophila. G3-Genes Genomes Genetics. 6 (4), 1083-1093 (2016).
  7. Tauber, J. M., Vanlandingham, P. A., Zhang, B. Elevated Levels of the Vesicular Monoamine Transporter and a Novel Repetitive Behavior in the Drosophila Model of Fragile X Syndrome. Plos One. 6 (11), e27100(2011).
  8. Kaur, K., Simon, A. F., Chauhan, V., Chauhan, A. Effect of bisphenol A on Drosophila melanogaster behavior--a new model for the studies on neurodevelopmental disorders. Behav Brain Res. 284, 77-84 (2015).
  9. Chang, H. Y., et al. Overexpression of the Drosophila vesicular monoamine transporter increases motor activity and courtship but decreases the behavioral response to cocaine. Molecular Psychiatry. 11 (1), 99-113 (2006).
  10. Yellman, C., Tao, H., He, B., Hirsh, J. Conserved and sexually dimorphic behavioral responses to biogenic amines in decapitated Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 94 (8), 4131-4136 (1997).
  11. Feng, G. P., et al. Cloning and functional characterization of a novel dopamine receptor from Drosophila melanogaster. Journal of Neuroscience. 16 (12), 3925-3933 (1996).
  12. Gotzes, F., Balfanz, S., Baumann, A. Primary Structure and Functional-Characterization of a Drosophila Dopamine-Receptor with High Homology to Human D(1/5). Receptors. Receptors & Channels. 2 (2), 131-141 (1994).
  13. Han, K. A., Millar, N. S., Grotewiel, M. S., Davis, R. L. DAMB, a novel dopamine receptor expressed specifically in Drosophila mushroom bodies. Neuron. 16 (6), 1127-1135 (1996).
  14. Sugamori, K. S., Demchyshyn, L. L., Mcconkey, F., Forte, M. A., Niznik, H. B. A Primordial Dopamine D1-Like Adenylyl Cyclase-Linked Receptor from Drosophila-Melanogaster Displaying Poor Affinity for Benzazepines. Febs Letters. 362 (2), 131-138 (1995).
  15. Pitmon, E., et al. The D1 family dopamine receptor, DopR, potentiates hind leg grooming behavior in Drosophila. Genes Brain and Behavior. 15 (3), 327-334 (2016).
  16. Phillis, R. W., et al. Isolation of mutations affecting neural circuitry required for grooming behavior in Drosophila melanogaster. Genetics. 133 (3), 581-592 (1993).
  17. Hampel, S., Franconville, R., Simpson, J. H., Seeds, A. M. A neural command circuit for grooming movement control. Elife. 4, e08758(2015).
  18. Kays, I., Cvetkovska, V., Chen, B. E. Structural and functional analysis of single neurons to correlate synaptic connectivity with grooming behavior. Nature Protocols. 9 (1), 1-10 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

N robilimSay 125DrosophilaBak mdavran3B yaz cl me

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır