Method Article
Drosophila melanogaster fotoreptörlerinden alınan bütün hücreli kayıtlar, çeşitli koşullar altında kendiliğinden oluşan karanlık yumruları, kuantum darbeleri, ışığa karşı makroskopik tepkileri ve akım-voltaj ilişkilerini ölçebilir. D. melanogaster genetik manipülasyon araçları ile birlikte bu yöntem, her yerde bulunan inositol-lipid sinyal yolunu ve TRP kanalının hedefini incelemeyi mümkün kılar.
Drosophila melanogaster fotoreseptörlerinden alınan tüm hücre voltaj kelepçesi kayıtları, inositol-lipid sinyal verme ve Geçici Alıcı Potansiyel (TRP) kanallarını tek molekül seviyesinde incelemek için D. melanogaster moleküler genetiğin kullanılmasını sağlayan omurgasız görsel transdüksiyon alanını devrim yarattı. Bir avuç laboratuvar, yüksek kontrollü koşullardaki ışığa fizyolojik cevapların analizini sağlayan bu güçlü tekniği hakimiyet altına almıştır. Bu teknik, hücre içi ve hücre dışı ortamları kontrol etmeye izin verir; Membran voltajı; Ve çeşitli iyonik veya pH indikatörleri gibi farmakolojik bileşiklerin intra-ve hücre dışı medyaya hızlı uygulanması. Son derece yüksek bir sinyal-gürültü oranı ile bu yöntem, karanlık kendiliğinden ışığa neden olan üniter akımları ( örn. Spontan ve kuantum darbe) ve makroskopik Işık Tarafından Akıtan Akımları (LIC)Gle D. melanogaster fotoreseptörler. Bu protokol, hem elektrofizyolojik hem de optik kayıtları içeren bu tekniği gerçekleştirmek için gerekli olan tüm önemli adımları ayrıntılı bir şekilde özetlemektedir. Hamam odasında sağlam ve uygulanabilir ex vivo izole ommatidia elde etmek için sinek retina diseksiyon prosedürü anlatılmıştır. Tüm hücre ve floresan görüntüleme ölçümlerini gerçekleştirmek için gerekli ekipman da detaylandırılmıştır. Son olarak, uzun deneyler sırasında bu hassas preparatın kullanımındaki tuzaklar açıklanmaktadır.
100 yıldan fazla bir süre önce başlatılan Drosophila melanogaster ( D. melanogaster) meyve sineği genetik çalışmaları, karmaşık biyolojik süreçlerin genetik diseksiyonu için son derece faydalı bir deney modeli olarak D. melanogaster sinekini kurdu. Aşağıda açıklanan metodoloji, D. melanogaster moleküler genetiğin birikmiş gücünü, tüm hücre yaması tutam kayıtlarının yüksek sinyal-gürültü oranı ile birleştirmektedir. Bu kombinasyon hem doğal ortamda hem de tekli moleküllerin en yüksek çözünürlüğünde inositol-lipit sinyallemesi ve TRP kanal düzenleme ve aktivasyonunun bir modeli olarak D. melanogaster fototransdüksiyonunun incelenmesine olanak tanır.
Tüm hücre kayıt yönteminin D. melanogaster fotoreseptörlerine uygulanması, omurgasız fototransdüksiyon çalışmalarında devrim yarattı. Bu yöntem Hardie 1 ve bağımsız olarak geliştirilmiştir.Sonsuza dek Ranganathan ve meslektaşları tarafından 2 ila 26 yıl önce ve D. melanogaster'ın geniş genetik manipülasyon araçlarından istifade etmek ve bunları fototransdüksiyon ve inositol-lipid sinyalizasyon mekanizmalarını ortaya çıkarmak için kullanmak üzere tasarlandı. İlk başta, bu teknik, detaylı niceliksel çalışmaları engelleyen, diseksiyon işlemi sırasında ışık hassasiyetinde hızlı bir düşüş ve ommatidia düşük bir hasar gördü. Daha sonra, yama pipetine ATP ve NAD ilavesi, preparatın uzun süreli niceliksel kayıtlar için uygunluğunu önemli ölçüde artırdı. Bundan sonra, moleküler düzeyde sinyal iletim mekanizmasının kapsamlı karakterizasyonu gerçekleştirildi.
Halen, D. melanogaster fototransdüksiyonu, fosfoinositid sinyali ve TRP kanallarının tek molekül çözünürlüğünde ex vivo incelenebildiği az sayıdaki sistemden biridir. Bu, D. melanogasterin fototransdüksiyonunu yapar ve benBu mekanizmayı oldukça hassas bir model sistem olarak incelemek için geliştirilen trodoloji. Bu protokol, D. melanogaster retinanın ayrıştırılacağını ve çevredeki pigment (glia) hücrelerinden izole edilmiş ommatidiyi mekanik olarak soyduğunu açıklamaktadır. Bu, fotoreseptör hücre gövdeleri üzerinde bir giga sızdırmazlık elemanı ve bir tam hücre yama kelepçesi oluşumunu mümkün kılar. Neyse ki, en sinyal veren proteinler rabdomere ile sınırlıdır ve yayılmaz. İlaveten, sinyal bölmesi ile hücre gövdesi 3 , 4 arasında bulunan kalphotin adı verilen hareketsiz bir Ca 2+ tamponu ve mikrovillide Na + / Ca 2+ eşanjörünün (CalX) yüksek ekspresyon seviyesi vardır 5 . Birlikte, rhabdomere'ye protein salıverme, calphotin tamponu ve CalX'in yüksek ekspresyonu, gerekli bileşenlerin kaybı olmadan nispeten uzatılmış (yaklaşık ~ 20 dk'ya kadar) tüm hücre kayıtlarına olanak tanırVe ışığa karşı yüksek duyarlılığı korurken. Aşağıdaki protokol izole ommatidia'yı nasıl elde edeceğinizi ve fototranskülasyon kaskadının yerli özelliklerini koruyan tüm hücre kayıtlarını nasıl yapacağınızı açıklamaktadır. Ayrılmış hamam böceği ( Periplaneta americana ) 6 ve kriket ( Gryllus bimaculatus ) 7 ommatidia üzerinde D-melanogaster için tarif edilene benzer şekilde tam hücre yama kelepçe deneyleri yapıldı . Ek olarak, file clam ( Lima scabra ) ve tarak ( Pecten irradians ) ayrıştırılmış fotoreseptörleri üzerindeki patch clamp deneyleri D. melanogaster üzerinde gerçekleştirilenlerden biraz daha farklı bir şekilde gerçekleştirildi , hem tüm hücre 8 hem de tek kanallı ölçümler yapıldı 9 . Burada, D. melanogaster'te bu tekniği kullanarak elde edilen başlıca başarılar anlatılmaktadır. Tartışma iBu tekniğin bazı tuzakları ve kısıtlamaları tanımını içermez.
1. Reaktif Hazırlama
NOT: Tüm çözümleri, Tablo 1-4'teki talimatlara göre hazırlayın.
2. Diseksiyon Cihazlarının Genel Kurulumu
Şekil 1: İzole Ommatidya Hazırlığı Yapmak İçin Gerekli Aletler ve Cihazlar. Resimler, yukarıdaki ayrıntılı protokolde açıklandığı üzere, izole edilmiş ommatidya preparatının oluşturulması için gereken çeşitli cihazları göstermektedir. Biri suyla doldurulmuş ( A ) diğeri boruya ( C ) bağlı öğütme pipetlerini ( D ) temizlemek için etanol ( B ) ile doldurulmuş iki beher. Kesme aletleri şunlardır: 2 çift ince ve bir çift cımbız ( F ) ve bir retina kürekçisi ( E ). Retina kepçesini hazırlamak için iğnenin üst kısmını ( I ) düzleştirmek için bir tali ( G ) olarak işlev gören iki torna aleti arasında bir mikro diseksiyon iğnesi ( H ) preslenir. Daha sonra uzatılmış bir pi'ye bağlanır. Tutkal ( J ) kullanarak metalin bir ucunu tutun ve bir iğne tutucuya ( E ) takın. Tıraş bıçağı yonga ve tutacağı: Tıraş bıçağı tutucusu ( K ) kullanarak ustura tıraşı ufak üçgen çipini ayırın ve takın. Diseksiyon çalışma alanı, iki ışık kılavuzu ( N ) bulunan bir binoküler ( L ) ve serin bir kırmızı ışık kaynağı (( M) ) içerir. Dürbünün her iki tarafına, cımbız ( F ), retina kürek ( E ), bardaklar ( A ve B ), kırmızı filtreye sahip el feneri ( Q ) ve narin silecekler ( R ) gibi diseksiyon aletleri yerleştirilir. ES, FBS-ES, hücre içi çözüm şırıngaları, 60 mm Petri kabı ( S ) ve elektrot tutacağı ( P ) içeren bir buz kovası da masanın üzerine yerleştirilir. Kayıt elektrotları, yatay çekme birimi ( T ) kullanılarak çekilir.E-posta: e.com/files/ftp_upload/55627/55627fig1large.jpg "target =" _ blank "> Bu figürde daha büyük bir sürümünü görmek için lütfen tıklayınız.
3. D. melanogaster Yetiştirme
4. Retina Diseksiyonu ve Ommatidia İzolasyonu: Seçenek 1
NOT: Preparatın doğru şekilde görüntülenmesi için uygun bir amplifikasyon kullanarak stereoskopik zoomlu mikroskop altında aşağıdaki adımların tümünü uygulayın (Bkz. Şekil 1 ).
5. Retina Diseksiyonu ve Ommatidia İzolasyonu: Seçenek 2
Not: Stereoskopik zum mikroskopu altında bir ampliPreparatın düzgün şekilde görüntülenmesi için uygunluk (Bkz. Şekil 1 ).
6. Tam Hücreli Kayıt
Şekil 2: Elektrofizyolojik ve Optik Ayara Genel Bakış. Kurulumda demir, siyah boyalı Faraday kafesi ( F ) bulunur. Ön kısım, bakır örgülü bir siyah perde ile kaplanmıştır. Bu yapılandırmaUration, preparatın herhangi bir sapık ışığa karşı tamamen kapatılmasını sağlar ve karanlık spontan darbe kayıtları için uygundur. Ters flüoresan mikroskopu ( A ) titreşim önleme tablosuna ( E ) tespit edilir. Fotoreseptör kayıt aparatı, perfüzyon girişi ( Q ), emme pipeti ( S ) ve gümüş-gümüş klorür zemini ( P ) olan ev yapımı bir akrilik cam banyo odası ( O ) içermektedir. Banyo odası ev yapımı bir adaptör ile mikroskop sahnesine ( T ) monte edilmiştir. Kayıt pipeti, gümüş-gümüş klorür teli vasıtasıyla, amplifikatör basamağına ( C ) bağlı bir akrilik cam tutacağı bağlanır. Basamak daha sonra ince bir XYZ mekanik mikromanipülatör ( B ) üzerine monte edilmiş kaba mikromanipülatör üzerine monte edilir. Perfüzyon sistemi ( D ) bir şırınga takımından oluşurken likit akışıD, sıkıştırma valfleri ( H ) tarafından kontrol edilir. Raf, Faraday kafesindeki tüm ekipmanın bağlandığı aynı merkezi zemine elektriksel olarak bağlanmış ve bir patch clamp amplifikatörü ( N ), bir osiloskop ( J ), bir darbe / fonksiyon üreteci ( K ), bir A ila D dönüştürücü ( L ), bir perfüzyon denetleyicisi ( I ) ve bir filtre tekerleği ve panjur denetleyicisi ( M ). Görüntüleme deneyleri için soğutulmuş (-110 ° C, Malzeme Tablosuna bakınız ) CCD kamera bir yan bağlantı noktası ( G ) vasıtasıyla bağlanır. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.
NOT: Aşağıdaki adımların tümünde yalnızca loş kırmızı ışıkla aydınlatma kullanın ve ommatidia'nın ışığa maruz kalmasının minimal olmasını sağlayın ( yani hızlı çalışın veOmmatidyumu izlemeyi talep etmeyen görevleri yerine getirirken ommatidia'yı görüntülemek için kullanılan diseksiyon ışık kaynağını ve oda kırmızı aydınlatmasını kapatın). Buna ek olarak, standart elektrofizyolojik protokole göre aşağıdaki adımların tümünü uygulayın.
7. Simultane WhOle Hücre Kayıtları ve Ca 2+ Görüntüleme
Tanımlanan yöntem, spontan ve ışığa uyarılmış kuantum darbeleri üreten temel birim akımların doğru kayıt edilmesini sağladı ve bu kuantum darbe, makroskopik yanıtı tanımlanmış koşullar altında ışığa dönüştürmek için toplandı. Ayrıca, kritik sinyal moleküllerinde kusur bulunan vahşi tip ve mutant sinekler arasındaki karşılaştırmaya izin verildi ( Şekil 3 ve 5 ) 14 , 15 , 16 , 17 , 18 . Buna ek olarak, bi-iyonik koşullar altında geri dönüşüm potansiyelini ölçme kabiliyeti, TRP ve TRP benzeri (TRPL) kanalların temel biyofiziksel özelliklerini ortaya çıkardı 18,19. Aynı zamanda, TRP'nin gözenek alanındaki amino asit substitüsyonlarının etkilerini, Ca2 +Geçirgenlik 20 .
Yama klemp tam hücreli kayıtlarla elde edilen ışık tepkisi, ışık yoğunluğunda doğrusal olarak en az 4 derece büyüklüğüne bağlıdır. Bu, ERG ve hücreiçi kayıt yöntemleri kullanılarak çözülemedi. Buna göre, artan şiddetin kısa süreli yanıp sönmesi ve yoğunluk tepki fonksiyonunun bir çizimi üzerine bir dizi yanıt, artan ışık şiddeti ile yanıp sönme tepkisinin katı bir doğrusallığını ortaya çıkardı. Sıkı doğrusallık en az yüz pA kadar tutar, ancak bundan sonra lineerlik mi yoksa kısmi kıvrılma kontrolü olup olmadığı tartışmalıdır ( Şekil 6 ). Bu sonuçlar, ışığa karşı makroskopik yanıtların, ışığa verilen üniter tepkilerin doğrusal bir toplamı olduğunu göstermektedir ( yani, kuantum darbeleri).
Işık uyarı ışığını dim eden voltaj kayıtları kullanılarak iyi kurulmuştur.Birçok omurgasız türde ayrı voltaj dalgalanmaları ( yani kuantum darbeleri). D. melanogaster kuantum tümsekleri, ~ 15 TRP kanallarının ve ~ 2 TRPL kanallarının çarpma zirvesinin 18 en üstünde uyumlu bir şekilde açılmasından kaynaklanır. Her darbe, tek bir fotonun emilmesi ile üretilirken, daha yoğun ışıklara makroskopik tepki, bu temel tepkiler 14 , 21'in toplamıdır. Uyarıcı koşulları aynı olsa bile, darbeler, gecikme, zaman yönü ve genlikte önemli ölçüde değişir. Damga üretimi, her etkili emilen fotonun sadece bir yumru oluşturduğu Poisson istatistiği tarafından tanımlanan stokastik bir süreçtir. Tekli foton-tekli-yumru ilişkisi, kademeli kademedeki her adımın sadece etkili bir "açma" mekanizmasını değil aynı zamanda etkili bir "kapatma" mekanizmasını içermesini gerektirir. Fonksiyonel avantajı, birGörsel sistemin gerektirdiği zamansal çözünürlük ve hassaslık için çok hızlı bir geçici tepki veren çok hassas foton sayacı. Aktif bir kapatma mekanizması için gereklilik, aktif fotopigment ( yani metarodopezin, M) veya hedefi G q α'nın etkisiz hale getirilmesinde başarısız olması ve ışık kesildikten sonra uzun süre buruşukluk üretimine neden olması durumunda ortaya çıkar. 3 ) 15 , 22 , 23 , 24 .
Darbe TRP / TRPL kanallarının bir mikrovillus içindeki kooperatif faaliyetini temsil eder. Bu nedenle, kanal aktivasyonunun herhangi bir hipotezi kooperatif kanal aktivasyonunu da açıklamak zorundadır. Son zamanlarda, Hardie ve meslektaşları fotoreptörlerin hızlı kasılmalarını uyandırdığını göstermişler ve ışık hassasiyetininE kanalları (TRP / TRPL) mekanik olarak kaplanabilir 25 . Bu mekanik aktivasyon, PLC aracılı PIP 2 hidrolizi ile açığa çıkan gözlenen protonlarla birlikte TRP / TRPL kanallarının açılmasını teşvik eder ve yumru üretiminin kooperatif doğasını açıklar 26 . Şu anda, D. melanogaster fotoreseptörleri fosfoinositid sinyali ve TRP kanallarının in vivo incelenebildiği az sayıdaki sistemden biridir ve böylece D. melanogaster fototransdüksiyonu yapmaktadır ve bu mekanizmayı oldukça değerli bir model sistem olarak incelemek için geliştirilen metodoloji.
Şekil 3: inaC P209 ve inaD P215 Mutantları, Işık ve Tekli Kuantum Tümsekleri için Makroskopik Yanıtın Yavaş Yanıt Vermesinin Sona Ermesi'ni Ortaya Çıkarmaktadır. ( A ) İzole edilmiş ommatidyum prepaFloresan Lucifer Yellow CH boya (uyarma: 430 nm; emisyon: 540 nm) ile doldurulmuş bir yama pipeti ile rasyon, bütün hücre kayıt sırasında sunulmuştur. Floresan boya, tek bir fotoreseptör hücre gövdesine yayılmış ve etiketlenmiştir ve fotoreseptör hücre gövdeleri, uzatılmış aksonlarından ayrılır, ancak canlı kalırlar. Bu preparat aynı anda tüm hücre kayıtları ve görüntüleme deneyleri için uygundur. ( BD ) Üst paneller: WT, inaC P209 ve inaD P215 mutant sineklerinde sürekli loş ışığa (açık çubuk) tam hücreli voltaj sıkıştırmalı kuantum darbe tepkileri. InaC P209 ve inaD P215 mutantlarında WT sineklerine göre darbelerin yavaş yavaş sonlandırılması gözlemlenir. Aşağıdaki ilaveler, tek dirseklerin büyütülmüş şeklini görüntüler. Alt paneller: Yukarıdaki vahşi türün 500-ms'lik bir ışık darbesine (1.5 x 105 foton / s) normalleştirilmiş tam hücreli makroskopik tepkiler Ve mutant sinekler. (EG) Üst paneller: Vahşi tip, arr2 3 ve ninaC P235 mutant sineklerde tek foton yanıtları ortaya çıkaran kısa (1 ms), loş ışıkta tam hücreli voltaj sıkıştırmalı kuantum çarpma tepkileri. Arr2 3 ve ninaC P235 mutantlarında gözlemlenen darbenin trenini tek bir foton emilimine tepki olarak not edin. Alt paneller: Karşılık gelen mutantlarda 500 ms ışık pulsuna (1.5 x 104 foton / s) tam hücreli voltaj sıkıştırmalı normalleştirilmiş tepkiler. Arr2'de gözlenen makroskopik tepkilerin yavaş sonlandırılmasına dikkat edin 3 Ve ninaC P235 mutant WT'ye göre uçar. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.
D / 55627 / 55627fig4.jpg "/>
Şekil 4: Sinyal ile indüklenen Ca 2+ Akışı Takip Eden Hücresel Ca 2+ Dinamiği, Calphotin'den etkilenir. Işık uyarımı sırasında Ca 2+ göstergesinin flüoresansını gösteren vahşi tipli ve Cpn % 1'lik fotoreptör görüntülerin bir zaman dizisi. Ham yoğunluk görüntüleri sahte renk kodlaması kullanılarak çizilir (çubuk = 10 μm; ok uçları pipete işaret eder). Şekil, Weiss ve diğerlerinin izniyle tekrar basıldı . 4 . Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.
Şekil 5: WT, trp ve trpl Mutantlarının Elektrofizyolojik Özellikleri. ( A ) Tam Hücreli voltaj kelepçesi recoWT, trpl 302 ve trp P343 boş mutant sineklerde sürekli loş ışığa (açık çubuk) yanıt olarak kuantum darbe sayısı. Trp P34 3 darbelerinin oldukça azaltılmış amplitütleri gözlemlenir. Inset: Yabanıl tip ve trp P343 boş mutant sineklerin büyütülmüş tek kuantum darbeleri gösterilmiştir . ( B ) Yabani tipin ve ilgili mutantların 3 saniyelik ışık darbesine yanıt olarak tüm hücre voltaj kelepçesi kayıtları. Trp P343 mutantının geçici kararlı durum yanıtı gözlemlenir . Başlangıç: WT ve trp P343 mutantlarının büyütülmüş ışık yanıtları gösterilmiştir. ( C ) Yukarıdaki sinek suşlarının ışıkla indüklenen akıntılarının bir ailesi, ters potansiyel (E devir ) etrafında ölçülen 3 mV'luk voltaj adımlarında 20 ms'lik bir ışık darbesine yanıt olarak ortaya çıkmıştır. ( D ) Vahşi türün ve çeşitli mutanların ortalama E rev'sini gösteren bir histogramts. Hata çubukları SEM'dir WT'nin geri dönüş potansiyeli (E rev ), yalnızca TRP'yi ifade eden trpl 302'nin pozitif E rev değeri ile yalnızca TRPL'yi ifade eden trp P343 boş mutantın E rev'idir. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.
Şekil 6: Işık Yoğunluğu Artan Işık Tepkisi Kesinlikle Doğrusaltır.
Artan ışık yoğunluğunun kısa süreli yanıp sönmeye karşı bir dizi güncel yanıt ve kısa yanıp sönen ışık yoğunluğuna ışık tepkisinin tepe amplitüdünün bağımlılığının bir çizimi. Bu ilişki, flaş tepkisi ile artan ışık yoğunluğu arasında katı bir doğrusallık ortaya koymaktadır. Bu katı doğrusallıkDoğrusallık mı yoksa sonradan kırılan kelepçe kontrolü olup olmadığı tartışılabilir iken, ışık şiddeti 4 dereceden fazla alanla en az yüz pA kadar tutmaktadır. Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.
pH | 7.15 (NaOH ile ayarlanır) |
reaktif | Konsantrasyon (mM) |
NaCl | 120 |
KCl | 5 |
MgCI2 | 4 |
TES | 10 |
Proline | 25 |
alanin | 5 |
-20 ° C'de saklayın. | |
Not: Bu çözüm nominal olarak Ca 2+ içermez ancak Ca 2+ tamponları eklenmez ve dolayısıyla yaklaşık 5 - 10 μM iz Ca 2+ olacaktır. Ekstraselüler çözelti (ES) = 0.5 veya 1 M stok solüsyonundan CaCl2'yi ES-0Ca 2+' ye ekleyerek yapılan 1.5 mM CaCl2 ile ES-0Ca 2+ . |
Tablo 1: Ca +2 içermeyen Ekstrasellüler Solüsyon (ES). Kimyasal tanımlama ve Ca +2 içermeyen ES üretmek için gereken spesifik miktarlar.
reaktif | Tutar |
FBS | 15 mL |
sakaroz | 1.5 g |
1.5 mL'lik şişelerde 150 uL'lik alikotlara bölün ve -20 ° C'de saklayın 76 ° C. | |
Toz haline getirme çözeltisi (TS) | Diseksiyon sırasında kullanılan çözeltiyle eşleşecek şekilde, stok solüsyonunun 150 mL'sinin 1 şişesini 1.350 mL ES veya ES-0Ca 2+ ile doldurun. |
Tablo 2: Fetal Sığır Serumu (FBS) + Sakroz - Stok Çözeltisi. Kimyasal tanımlama ve fetüs sığırı serumu (FBS) + sakaroz stok solüsyonu üretmek için gereken spesifik miktarlar.
pH | 7.15 (KOH ile ayarlayın) |
reaktif | Konsantrasyon (mM) |
Potasyum glukonat (Kglu) | 140 |
MgCI2 | 2 |
TES | 10 |
ATP magnezyum tuzu (MgATP) | 4 |
GTP sodyum tuzu (Na2GTP) | 0.4 |
Β-Nicotinamid adenin dinükleotid hidrat (NAD) | 1 |
-20 ° C'de saklayın. |
Tablo 3: Hücre içi çözelti (IS1). Kimyasal tanımlama ve çoğunlukla yoğunluk yanıtı ve kuantum darbe ölçümleri için kullanılan IS1 üretmek için gereken spesifik miktarlar.
pH | 7.15 (CsOH ile ayarlanır) |
reaktif | Konsantrasyon (mM) |
CsCl | 120 |
MgCI2 | 2 |
TES | 10 |
ATP magnezyum tuzu (MgATP) | 4 |
GTP sodyum tuzu (Na2GTP) | 0.4 |
Β-Nicotinamid adenin dinükleotid hidrat (NAD) | 1 |
Tetra-etil-amonyum klorür (TAE) | 15 |
-20 ° C'de saklayın. |
Tablo 4: Hücre içi çözelti (IS2). Kimyasal tanımlama ve çoğunlukla ışık kaynaklı akımın ters potansiyel ölçümleri için kullanılan Hücre içi Çözüm IS2'yi üretmek için gereken spesifik miktarlar.
Tüm hücre kayıtlarının D. melanogaster fotoreseptörlerine uygulanması TRP kanalları 27 , 28 , 29 ve INAD 30 , 31 , 32 iskele proteini gibi yeni sinyal proteinlerinin keşfedilmesine ve işlevsel aydınlatılmasına izin verdi. Bu tekniğin ilk tanıtımından bu yana, ışık tepkisinin iyonik mekanizması ve voltaja bağımlılığı ile ilgili uzun vadeli temel soruları çözdü. Bu, zar voltajını ve hücre dışı ve hücre içi iyonik kompozisyonu 19 , 28 doğru bir şekilde kontrol etme konusundaki yeteneği nedeniyle meydana geldi.
D. melanogaster'deki yama sıkıştırma tekniğinin büyük bir engeli izole ommatidia prepa'nın kırılganlığı olmuşturrasyon. Ayrıntılı çalışmalar, phototransduction makinelerinin bütünlüğünün, özellikle ATP'nin büyük bir tüketimine yol açan, ışık maruziyeti sırasında, ATP'nin kesintisiz beslenmesine eleştirel olarak bağlı olduğunu ortaya koymuştur. Ne yazık ki, yama pipeti ile fotoreseptör zarına ulaşmak için gerekli olan pigment ( yani glia) hücrelerinin mekanik olarak çizilmesi, ATP üretimi için gerekli metabolitlerin ana kaynağını ortadan kaldırmaktadır 33 . Harici ATP'nin kayıt pipetine uygulanması, büyük oranda ATP gereksinimini kısmen yerine getirmektedir. Kısa bir ATP kaynağı, TRP kanallarının kendiliğinden aktivasyonuna ve ışık aktive kanallardan fototransdüksiyon mekanizmalarının ayrışmasına yol açar, bu da hücresel Ca2 + ' da büyük bir artışa ve normal tepkinin 34 , 35'e ortadan kalkmasına neden olur. Bu olaylar dizisi,Fotoreseptörlere, aksine de ATP'nin hücresel tükenmesine yol açar. Bu olayların meydana gelmesini önlemek ve normal ışık tepkileri sağlamak için, fotoreseptörler, yoğun ATP ışıklarını tüketen yoğun ışıklara maruz bırakılmamalıdır. Ayrıca, muhtemelen mitokondriyumda ATP üretimini kolaylaştırmak için NAD, kayıt pipetine dahil edilmelidir 18 , 36 . Spontan ve kuantum tümseklerin ölçümleri için yukarıdaki zorluk minimumdur, çünkü yalnızca loş ışıklar kullanılır. Uygulamada, kararlı bir tam hücreli kayıt ~ 20-25 dakika süreyle muhafaza edilebilir, ancak tepki kinetiği bu süre zarfında yavaşlama eğilimi gösterir. Ayrışmış ommatidia'nın tek bir preparatı 2 saate kadar kullanılabilir kalabilir.
İzole edilen ommatidia preparasyonunun ek bir eksikliği, mikropların erişilememesidir ve bu da TRP'ye erişilememesine veTRPL kanallarını kayıt pipetine koyarak tek kanallı kayıtları engeller. Geliştirdikleri bir yöntemle Bacigalupo ve meslektaşları, doğrudan rhabdomere 37'den tek kanallı etkinlik kaydetmeyi başardı. Bununla birlikte, bu kanal aktivitesi, doku kültürü hücrelerinde heterolog olarak ifade edilen TRPL kanallanndan ve izole ommatididen elde edilen atımlı ses analizinden türetilen TRP kanal aktivitesinden farklıdır 34 . Muhtemelen disseksiyon prosedürü bu yöntemi kullanırken fotoreseptör hücrelerine büyük zarar vermiştir.
Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.
Bu araştırmanın deneysel kısmı ABD-İsrail Bi Ulusal Bilim Vakfı (BM ve IL'ye), İsrail Bilim Vakfı (ISF), Deutsch-İsrail Projeksiyon İşlemi (DIP) (BM'ye) ve Biyoteknoloji Ve Biyolojik Bilimler Araştırma Konseyi (BBSRC Hibe Numaraları: BB / M007006 / 1 ve BB / D007585 / 1) RCH'ye
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10 mL syringe | |||
5 mL syringe | |||
1 mL syringe with elongated tip | |||
Petri dish | 60 mm | ||
Syringe filters | Millex | 22 µm PVDF filter | |
Capillaries (for omatidia separation) | Glass, 1.2 x 0.68 mm (~7.5 cm each) | ||
Polyethylene Tubing | Becton Dickinson | 1.57 x 1.14 mm (35 cm) | |
2 small beakers | 50 mL or less | ||
2 paraffin film sheets | Parafilm M | ~5 x 5 cm | |
Bath chamber | home-made | ||
Cover slips | 22 x 22 mm No. 0 | ||
Paraplast Plus | Sigma | Paraffin – polyisobutylene mixture | To glue the coverslip onto the bottom of the bath chamber |
Ground | Warner Instruments | 64-1288 | Hybrid Assembly Ag-AgCl Wire Assembly |
Headless micro dissection needle | Entomology, 12 mm | ||
Micro dissecting needle holder | |||
Vise | |||
2 fine tweezers + 1 rough tweezers | Dumont #5, Biology | 0.05 x 0.02 mm, length 110 mm, Inox | |
Stereoscopic zoom Microscope | Nikon | SMZ-2B | |
Cold light source | Schott | KL1500 LCD | |
Filter (Color) for cold light source | Schott | RG620 | |
Delicate wipers | Kimtech | Kimwipes | |
Electrode holder | Warner Instruments | QSW-T10P | Q series Holders compatible with Axon amplifiers, straight body style |
Silver Wire | Warner Instruments | 0.25 mm diameter, needs to be chloridized | |
Micromanipulator | Sutter Instruments | MP 85 | Huxley-Wall Style Micromanipulator |
Faraday cage | home made | Electromagnetic noise shielding and black front curtain | |
Anti-vibration Table | Newport | VW-3036-OPT-01 | |
Osilloscope | GW | GOS-622G | |
Perfusion system | Warner Instruments | VC-8P | Pinch valve control system |
Perfusion valve controller | Scientific instruments | BPS-8 | |
Suction system | |||
Amplifier | Molecular Device | Axopatch-1D | |
Head-stage | Molecular Device | CV - 4 | Gain: x 1/100 |
A/D converter | Molecular Device | Digidata 1440A | |
Clampex | Molecular Device | 10 | software |
pCLAMP | Molecular Device | 10 | software |
Light source (Xenon Arc lamp) | Sutter Instruments | Lambda LS | |
Light detector | home made | phototransistor | |
Filter wheel and shutter controller | Sutter Instruments | Lambda 10-2 with a Uniblitz shutter | |
Filters (Natural density filter) | Chroma | 6,5,4,3,2,1,0.5,0.3 | |
Filter (Color) | Schott | OG590, Edge filter | |
Xenon Flash Lamp system | Dr. Rapp OptoElecftronic | JML-C2 | |
Light guide | Quartz | ||
Pulse generator | AMPI | Master 8 | |
Microscope | Olympus | IX71, Inverted | |
Red illumination filter (Microscope) | RG630 / RG645 ø45mm | ||
Microscope objective | Olympus | X60/0.9 UplanFL N air or X60/1.25 UplanFI oil | |
CCD Camera | Andor | iXon DU885K | |
NIS Element | Nikon | AR | software |
Ca+2 indicator | Invitrogen | Calcium green 5N | |
Excitation & emission filters and dichroic mirror | Chroma | 19002 - AT - GFP/FITC Longpass set | |
Vertical pipette puller | Narishige | Model PP83 | Use either vertical or horizontal puller, as preferred. |
Horizontal pipette puller | Sutter Instrument | Model P-1000 Flaming/Brown Micropipette Puller | |
Filament | Sutter Instrument | 3 mm trough or square box | |
Capillaries | Harvard Apparatus | borosilicate glass capillaries | 1 x 0.58 mm |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır