JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada, kan nakli ya da bir fare inotropic ajanlar olmadan basit kurtarma Kardiyopulmoner bypass modeli tanımlamak için bir iletişim kuralı mevcut. Bu model birden fazla organ sekel Kardiyopulmoner baypas uzun vadeli bir çalışma sağlar.

Özet

Kardiyopulmoner bypass (KPB) kardiyovasküler cerrahide vazgeçilmezdir. CPB tekniği ve aygıtları, çoklu organ komplikasyonlar dramatik arıtma rağmen ilgili uzun süreli KPB hala kalp damar ameliyatları sonucu güvenliğini aşmasına ve ameliyat sonrası morbidite ve mortalite daha da kötüye gidebilir. Hayvan modelleri KPB klinik kullanımı recapitulating açıklama CPB sırasında meydana patofizyolojik süreçlerin etkinleştirin ve bu komplikasyonlar karşı koruma stratejileri geliştirmek için önceden klinik çalışmalar kolaylaştırmak. Sıçan KPB onların daha fazla maliyet-etkililik, uygun deneysel süreçler, genetik, bol test yöntemleri veya protein düzeyleri ve genetik tutarlılık nedeniyle avantajlı modellerdir. Bunlar bağışıklık sistemi harekete geçirmek ve sentez proinflamatuar sitokinler, iltifat harekete geçirmek ve üretim oksijen serbest radikallerin araştırılması için kullanılabilir. Fare modelleri rafine edilmiş ve yavaş yavaş büyük hayvan modelleri meydana gelmiş. Burada, kan nakli ve/veya bir sıçan inotropic ajanlar olmadan basit bir KPB modeli açıklar. Bu kurtarma modeli birden fazla organ sekel KPB ile uzun vadeli bir çalışma sağlar.

Giriş

1953 yılında Dr. John H. Gibbon Jr. başarıyla KPB1kullanarak ilk kalp cerrahisi yapılan ve daha sonra temel bir modalite kardiyovasküler cerrahi oldu. CPB için ilgili çoklu organ komplikasyonlar hala teknikleri ve cihazlar önemli ölçüde rafine edilmiş iken, kalp damar ameliyatları sonucu güvenliğini aşmasına ve ameliyat sonrası morbidite ve mortalite2etkileyebilir. KPB ile ilgili organ hasarı bağışıklık sistemi harekete geçirmek ve sentez proinflamatuar sitokinler, iltifat harekete geçirmek ve üretim oksijen serbest radikallerin2neden olur. Onun patofizyolojisi, ancak, tam aydınlatılmamıştır değil.

Hayvan modelleri KPB klinik kullanımı recapitulating ve KPB sonrası açıklama patofizyolojik süreçlerin etkinleştirmek; Bu stratejileri bu komplikasyonları önlemek için gelişmekte olan önceden klinik çalışmaları kolaylaştırabilir. Beri Popovic ve ark. ilk KPB rat sıçan KPB manken 19673' te rapor modelleri rafine edilmiş ve yavaş yavaş daha fazla maliyet-etkililik, uygun deneysel süreç ve yöntemleri test bir bolluk nedeniyle büyük hayvan modellerin genetik meydana gelmiş ve protein düzeyleri. Buna ek olarak, doğuştan farelerin genetik olarak özdeş, olası biyolojik önyargıları azaltmak olabilir.

Fabre ve ark. ilk kurulan birden fazla organ sekel KPB4uzun süreli çalışma izin bir kurtarma modeli. Bu basit hayatta kalma model avantajları esneklik (KPB akışı ve süre), hayati durumu ve tekrarlanabilirlik sistemik inflamasyon vardır. Sıçan KPB modelleri KPB5sırasında çoklu organ yaralanması önlemek amacı tedavi stratejileri incelenmesi için çok önemli hale gelmiştir ve son zamanlarda klinik durumlar CPB sırasında simülasyonu için çeşitli modeller geliştirilmiştir. De Lange ve ark. Miyokard hasarı7için ilgili enzimatik, genetik ve histolojik yanıt tanımlamak için kullanılan bir kardiyak arrest modeli geliştirdi. Engin ve ark. Miyokard İnfarktüsü ve kontrollü reperfüzyon kalp disfonksiyonu odak iskemi ve reperfüzyon hasarı8üzerinden analiz etmek için kırılan bir KPB modeli kullanılarak düzenlenmiştir. Jungwirth ve ark. ilk kurulan global iskemi ve reperfüzyon hasarı DHCA ve destekler potansiyel nöroprotektif stratejileri6tarafından aydınlatmak derin hipotermik dolaşım tutuklama (DHCA) modeli. DHCA kullanarak çalışmalar hipotermi, reperfüzyon ve/veya hemoliz tetikleyen sinyal olaylar9etkisini araştırmak. Derin hipotermi harekete geçirmek ve çeşitli enzim inactivation etkileyebilir ve yollar ve mekanizmaları bilinmeyen10kalır. Öte yandan, kardiyak arrest modelleri veya kalp iskemi modelleri iskemi ve reperfüzyon kalp yaralanması araştırmak için kullanılmalıdır. Son derece insan KPB özetlemek çeşitli bu sıçan KPB modeller patolojik süreçler için KPB ile ilgili açığa vurmak ve KPB ile ilgili komplikasyonlar etkisinin azaltılmasına yardımcı olur.

Bu iletişim kuralı kan nakli ya da bir fare inotropic ajanlar olmadan basit bir KPB modeli gösterir. Bu modeli birden fazla organ sekel KPB ile uzun süreli çalışma için verir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

Deney öncesinde tüm rats bir hafta alışmana verilmesi gerekir. Hayvanlar üzerinde tüm cerrahi işlemler Kılavuzu uygun olarak bakım ve laboratuvar hayvanlarının kullanımı (www.nap.edu/catalog/5140.html) veya diğer uygun etik kurallar için yapılmalıdır. İletişim kuralları hayvan refahı Komitesi devam etmeden önce uygun Kurumu tarafından onaylanması. Tüm sonraki yordamlar aseptik koşullar altında gerçekleştirilmelidir.

1. CPB devre hazırlama

Not: kişisel koruyucu ekipman eldiven, gözlük ve temiz kat veya tek kullanımlık elbisesi giymek.

  1. Set-up KPB devre
    1. Polivinil klorür tüpler KPB devre ve şekil 1' de gösterildiği gibi bir değiştirilmiş yenidoğan membran oxygenator için önceden tasarlanmış bir Venöz rezervuar bağlanmanız gerekir. Tüm bağlantıları sıkı ve su sızıntısı değil olun.
    2. CPB devre silindir pompa aygıt üreticinin iletişim kuralları göre ayarlayın.
    3. Silindir pompa yüksekliği ayarlanabilir bir tabloda tutmak ve deneysel masanın altına 10 cm için tablonun yüksekliğini ayarla.
  2. Astar KPB devre
    1. Hydroxyethyl nişasta çözüm mix 12 mL 0.1 mL heparin ve 0.5 mL KPB devre priming için % 7 karbonat çözeltisi ile.
    2. 11 mL astar çözeltisi ile devre yavaşça dönen pompa bezi ile Başbakan. Bir 18'lik havalandırma iğne hava havalandırma için rezervuar içine koymak.
    3. Membran oxygenator deair, oxygenator devirme ile birkaç kez vurdu. Hava hava embolisi ve yetersiz oksijen önlemek için tamamen gizlenmiş olmalı. Devre astar sırasında tarafından havzanın ayarla bir elektrikli ısı lamba devre ısı.

2. CPB önce yordamı

Not: Cerrahi alan ve aygıtları % 70 alkol veya dördüncül amonyum bileşik kullanmadan önce dezenfekte.

  1. Anestezi ve hayvan ayarı
    1. Bir sıçan bir Buharlaştırıcı %3.0 isoflurane karışık hava soluma ile anestezi. 16 lik kanül nefes borusu entübe ve fare çalışma kürsüye ayarlayın. (Örn: analjezi dozaj ve sıklığı ile ilgili senin yerel hayvan bakımı yönergeleri izleyin
      buprenorfin 0.005 mg/kg SC)
      Not: Sıçan derin anestezi olmalı ve refleksleri kaybetmek. Solunum ritmik olmalı ama değil tutuklandı.
    2. Fareyi bir elektrikli Isıtma yastığı ile donatılmış bir işletim masa aktarın. Mekanik havalandırma 8 mL/kg tidal hacim, 70 devir/dk solunum ve oksijen sensörü tarafından izlenen ilham oksijen kesir % 30'u ile başlar.
    3. Anestezi ile 1.5-%2.0 isoflurane ve ketamin/xylazine KPB başlatma adlı ek bir yönetim ile koruyun.
    4. Rektal sıcaklık rektal sonda kullanarak izlemek. Normothermic vücut ısısını 37 ° c sıcaklık pedi sıcaklığını ayarlama ve ısı lamba devre yerleştirerek korumak.
    5. Fareyi sırtüstü pozisyonda ayarla ve dört bacaklarda iğne sabitleme ile germek. Kalp atışı ikili omuz ve sol karın ECG elektrot iğne ayarlayarak monitör. Nemli gazlı bez yerleştirin veya kuruluk önlemek için gözleri oftalmik merhem uygulamak.
  2. Cannulation
    1. Tüm vücut yüzeyinin % 70 etanol veya başka bir antiseptik çözüm püskürtme sprayingby tarafından dezenfekte sonra saç bilateral inguinal bölge ve şu servikal bölge üzerinde bir ustura ile tıraş ederim. Yerel Anestezi (örneğin lidokain) Cilt kesi yapmadan önce kullanılmalıdır. Gibi alternatif bir cerrahi bodur kesi sitenin tüm vücut yerine kullanılabilir Not: vücut ısısı bir düşüş önlemek için % 70 etanol sprey.
    2. Cilt (yaklaşık 5 mm) bilateral inguinal bölge ve şu servikal bölge makas tarafından deşmek ve açık açık sağ ana femoral arter ortaya çıkarmak için doku incelemek. Atardamar damar ve sinir yakın dikkatlice ayırın. Ortak femoral arter sonunda 4-0 ipek ve pozlama gerginliği ligate.
    3. Şu ortak femoral arter arter duvarına (yaklaşık 1 mm) arter için dikey yönde mikro makas kesilmiş ve dikkatli--dan belgili tanımlık kesme 24'lik intravenöz kateter sistemik arter izlemek için 1 cm derinliğe cannulate basınç ve arteriyel kan gazı kısmi basınç analiz.
    4. Heparin sodyum (500 IU/kg) kateter üzerinden yönetmek.
    5. 2.2.2 ve 24'lik intravenöz kateter sol ortak femoral arter KPB devre için bir Arteryel infüzyon çizgisiyle cannulate 2.2.3 adımları izleyin.
    6. 17'lik çoklu delik angiocatheter şu iç juguler ven yerleştirin ve sağ Kulakçık ve inferior vena kava (IVC) önceden. Kateter itmeyin kabaca gemi kolayca zarar verebilir. CPB devre Venöz drenaj için kateter takın.
    7. Her cannulated bölgesinin kirlenmesini önlemek için nemli bir gazlı bez ile kapak.

3. işlem CPB sırasında

  1. CPB sırasında 0, 8 L/dk oxygenator % 100 oksijen gazı sunmak ve 30 devir/dk solunum oranını düşürmek. Arteryel oksijen kısmi basıncı 200 ile 400 mmHg için gereklidir.
  2. CPB başında KPB başlatma sonra vücut ısısı hemen damla azaltmak için en fazla, 42 ° c ısı ped sıcaklık ayarını yükseltin. Vücut sıcaklığı 36 ° C'ye döndüğünde 37 ° c ayar sıcaklığı ayarlayın
  3. Dikkatle KPB akışını başlatmak ve havzanın kan kan hacmi göz kulak. Boş bir rezervuar hava embolisi neden olabilir. Havzanın kan kan hacmi azalır Eğer pompa akış tablo yüksekliğini ayarlayıp veya drenaj kateter konumunu değiştirerek düşürebilir. Kolayca delikli sağ atriyumu ve/veya kalp ritim bozukluğu neden olabilir Venöz drenaj kateter yeniden konumlandırmak değil.
  4. Artırmak ve 100 mL/kg pompa akışı tutmak/min, ise ortalama kan basıncı 70 mmHg korunur. Uygun kan basınç korunur, en az 1 ml rezervuar içinde küçük bir birim kabul edilebilir olur. Az 1 mL rezervuar kanında ise, organlarda bir hava embolisi neden olabilir.
  5. Kan basıncı sabit değil, 2-3 mL astar çözeltisi (KPB sonra anemi neden) devre ekleyin.

4. işlem KPB sonrası

  1. Venöz drenaj boru kelepçe ve devre kaldırın. Yavaş yavaş arter kan basıncı korumak için devre içinde kalan kan süzülür.
  2. 70 devir/dk solunum hızı artırın.
  3. Venöz drenaj kateter ve sol atardamar kateter kaldırın ve sonra proksimal ve distal sitedeki gemi ligate.
  4. Arteryel satırını doğru femoral arterin 60 dk KPB bitiminden sonra kaldırın.
  5. Her yara serum fizyolojik ile temiz ve yaranın dikiş ile kapatın.
  6. Anestezi ve tüpü boğaza tüp hayvan spontan solunum kontrol ettikten sonra son bulur.
  7. Isıtılan steril izotonik sıvılar yönetmek ve ısı mat ve elektrik ısı lamba hayvanlar sıcak tutmak için kullanın. Koşulları hayvanın anestezi kurtarma kadar sık sık kontrol edin. Ne zaman gerekli solunum desteği sağlar. Not: hayvan hareket başladığında, ısı kaynağı sıcak veya soğuk tarafı seçmek hayvan izin vermek belgili tanımlık kafes bölümünden çıkarılmalıdır.
  8. Tam olarak solunum tekrar yerine geleceğinden hayvan şirketin diğer hayvanların dışında tutmak. Hayvan kadar tam kurtarma şirkete iade etmeyin.
  9. Anestezi kurtarma sonra yiyecek ve su alımını kontrol ve uygun beslenme desteği sağlar. Analjezikler yönetmek ve rahatsızlık veya ağrı belirtileri kontrol.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Tüm KPB devre şekil 1 gösterir. Bu modelde fizyolojik değişkenler Şekil 2' de gösterilen ve rektal ısı dahil, arteryel kan basıncı ve kalp hızı demek. Şekil 3 arteryel kan gazı analizleri de dahil olmak üzere kısmi basınç Arteryel oksijen, Arteryel karbon dioksit, Hematokrit, temel aşırı, serum potasyum ifadesidir ve potansiyel hidrojenin kısmi basınç CPB sırasında gösteri...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Bu sıçan KPB modelde, inflamatuar sitokinlerin ve HMGB-1, inflamatuar yanıt düzenleyen bir anahtar transkripsiyon faktörü serum ve akciğer ifade düzeyleri önemli ölçüde KPB sonra arttı. HMGB-1 düzeyine serum salgılanmasını kalp damar cerrahisi11geçiren hastalarda yükselmiş ve en yüksek serum HMGB-1 seviye CPB sırasında daha ağır sistemik inflamatuar yanıt sendromu ile ilişkili olduğu önceki klinik çalışmalar gösterdi ve akciğer oksijenasyonu bozulma KPB

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Tüm yazarlar ile ilgili ticari destek ifşa gerek yok.

Teşekkürler

Takdir Dr. T. Taki ve Dr. M. Funamoto ve teknik destek için genişletilir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Rodent Ventilator 7025Ugo Basile7025Ventilator
OxiQuant BENVITEC46-00-0023Oxygen Sensor
CMA 450 Temperature ControllerCMA8003759Temperature Controller
CMA 450 Heating PadCMA8003763
CMA 450 Rectal ProbeCMA8003761
DIN(8) to Disposable BP TransducerADInstrumentsMLAC06
Disposable BP TransducerADInstrumentsMLT0670
IX-214 Data RecorderiWorx SystemsIWX-214amplifier
LabScribe softwareiWorx Systemssoftware
Roller pumpFurue ScienceModel RP-VTpump
Happy CathMedikitEB 19G 4HCLs PP17-gauge multiorifice angiocatheter
SURFLO ETFE I.V. CatheterTerumoSR-OX2419CA24-gauge angiocatheter
OxygenatorMeraHPO-002
CPB circuitMeracustom-made
Hespander fluid solutionFresenius Kabi3319547A4035Hydroxyethyl starch

Referanslar

  1. Gibbon, J. H. Application of a mechanical heart and lung apparatus to cardiac surgery. Minn Med. 37 (3), 171-185 (1954).
  2. Apostolakis, E., Filos, K. S., Koletsis, E., Dougenis, D. Lung dysfunction following cardiopulmonary bypass. J Cardiac Surg. 25 (1), 47-55 (2010).
  3. Popovic, P., Horecky, J., Popovic, V. P. Instrumental responses in rats after hypothermic cardiopulmonary by-pass. P Soc Exp Biol Med. 126 (1), 225-228 (1967).
  4. Fabre, O., et al. A recovery model of partial cardiopulmonary bypass in the rat. Perfusion. 16 (3), 215-220 (2001).
  5. Hirao, S., Masumoto, H., Minatoya, K. Rat cardiopulmonary bypass models to Investigate multi-organ injury. Clin Surg. 2, 1-6 (2017).
  6. Jungwirth, B., et al. Neurologic outcome after cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest in rats: description of a new model. J Thorac Cardiov Sur. 131 (4), 805-812 (2006).
  7. de Lange, F., Yoshitani, K., Podgoreanu, M. V., Grocott, H. P., Mackensen, G. B. A novel survival model of cardioplegic arrest and cardiopulmonary bypass in rats: a methodology paper. J Cardiothorac Surg. 3, 51(2008).
  8. Peters, S., et al. An experimental model of myocardial infarction and controlled reperfusion using a miniaturized cardiopulmonary bypass in rats. Interact Cardiovasc Th. 19 (4), 561-564 (2014).
  9. Engels, M., et al. A cardiopulmonary bypass with deep hypothermic circulatory arrest rat model for the investigation of the systemic inflammation response and induced organ damage. J Inflamm. 11 (26), (2014).
  10. Pinto, A., et al. The extracellular isoform of superoxide dismutase has a significant impact on cardiovascular ischaemia and reperfusion injury during cardiopulmonary bypass. Eur J Cardio-Thorac. 50 (6), 1035-1044 (2016).
  11. Zhang, Z., Wu, Y., Zhao, Y., Xiao, X., Liu, J., Zhou, X. Dynamic changes in HMGB1 levels correlate with inflammatory responses during cardiopulmonary bypass. Exp Ther Med. 5 (5), 1523-1527 (2013).
  12. Kohno, T., et al. Impact of serum high-mobility group box 1 protein elevation on oxygenation impairment after thoracic aortic aneurysm repair. Heart Vessels. 26 (3), 306-312 (2011).
  13. Tseng, C. C., et al. Impact of serum biomarkers and clinical factors on intensive care unit mortality and 6-month outcome in relatively healthy patients with severe pneumonia and acute respiratory distress syndrome. Dis Markers. 2014, (2014).
  14. Paparella, D., Yau, T. M., Young, E. Cardiopulmonary bypass induced inflammation: pathophysiology and treatment. An update. Eur J Cardio-Thorac. 21 (2), 232-244 (2002).
  15. Hirao, S., et al. Recombinant human soluble thrombomodulin prevents acute lung injury in a rat cardiopulmonary bypass model. J Thorac Cardiov Sur. , In Press. (2017).
  16. Yamazaki, S., Inamori, S., Nakatani, T., Suga, M. Activated protein C attenuates cardiopulmonary bypass-induced acute lung injury through the regulation of neutrophil activation. J Thorac Cardiov Sur. 141 (5), 1246-1252 (2011).
  17. Wang, C. T., Zhang, L., Wu, H. W., Wei, L., Xu, B., Li, D. M. Doxycycline attenuates acute lung injury following cardiopulmonary bypass: involvement of matrix metalloproteinases. Int J Clin Exp Patho. 7 (11), 7460-7468 (2014).
  18. Liu, K., et al. Curcumin attenuates cardiopulmonary bypass-induced lung oxidative damage in rats. J Cardiovasc Pharm T. 17 (4), 395-402 (2012).
  19. Taki, T., et al. Fetal mesenchymal stem cells ameliorate acute lung injury in a rat cardiopulmonary bypass model. J Thorac Cardiov S. 153 (3), 726-734 (2017).
  20. Zhu, X., et al. Establishment of a novel rat model without blood priming during normothermic cardiopulmonary bypass. Perfusion. 29, 63-69 (2014).
  21. Inoue, K., et al. Deep anesthesia worsens outcome of rats with inflammatory responses. Inflamm Res. 65 (7), 563-571 (2016).
  22. Bradfield, J. F., Schachtman, T. R., McLaughlin, R. M., Steffen, E. K. Behavioral and physiologic effects of inapparent wound infection in rats. Lab Anim Sci. 42 (6), 572-578 (1992).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

mm noloji ve enfeksiyonsay 133Kardiyopulmoner bypasss ankalp cerrahisiiltihaphayatta kalma modeliakci er hasar

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır