JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu iletişim kuralı bir iletken polimer iskele vitro elektriksel stimülasyon ve kök hücre numaralı seribaşı iskele kullanarak sonraki vivo içinde implantasyon için üzerinde kök hücrelerin tohum izin vermek için bir hücre kültür sistemi imalatı açıklar bir minimal invaziv tekniği.

Özet

Kök hücre tedavisi heyecan verici bir kontur olarak terapötik çıkmıştır ama en uygun Teslimat yöntemi belirsizdir. Mikroenjeksiyon tekniği kök hücre kontur modellerinde sunmak için yıllardır kullanılan iken, bu teknik enjeksiyon önce kök hücre işleme yeteneği eksikliği ile sınırlıdır. Bu kağıt bir elektriksel olarak iletken polimer iskele kök hücre teslim için kullanma yöntemi ayrıntıları. Bir iletken polimer iskele kullanarak kök hücrelerin elektriksel stimülasyon kök hücrenin genler hücre hayatta kalma, inflamatuar yanıt ve sinaptik remodeling yer değiştirir. Elektrik Önkoşullanma sonra iskele üzerinde kök hücre intracranially distal orta serebral arter tıkanıklığı sıçan modelinde nakledilen. Bu iletişim kuralı bir iletken polimer iskele üzerinden kök hücre işlemek için güçlü bir teknik anlatılmaktadır ve daha fazla kök hücre tabanlı terapisi geliştirmek için yeni bir araç oluşturur.

Giriş

İnme dünyada ölüm ikinci önde gelen nedenidir ve ölüm beşinci önde gelen nedenidir Amerika Birleşik Devletleri olduğunu. Bu yüksek ölüm oranlarını rağmen tedaviler inme kurtarma için şu anda bir sorun yok uygun tıbbi seçenekler mevcut1kalır. Orada şu anda yaklaşık 300 klinik çalışmalarda hangi kök hücreler sadece 40 kullanmak iskemik inme ile ilgili. Önceki çalışmalarda kök hücre tedavileri kontur onarım2,3üzerinde yararlı bir etkisi olduğunu ortaya koymuştur. Parakrin faktörler beyin kaynaklı Nörotrofik faktör (BDNF) ve Transplante insan nöral progenitör hücre (hNPCs) yayımlanan trombospondin-1 (THBS-1) gibi bir artış ile ilgili mekanizmalar yoluyla geliştirilmiş fonksiyonel iyileşme göstermiştir oluşumu, anjiogenez, dendritik dallanma ve yeni aksonal projeksiyonlar sinaps gibi bağışıklık sistemi4,5,6modülasyonlu. Ancak, kök hücrelerin en uygun teslimat yöntemlerinin zor kalır.

Başarılı kök hücre teslim beyin için bir meydan okuma olarak kalır. Şu anda, enjekte edilebilir hidrojel ve polimerik İskele sistemleri kök hücre sunmak için getirilmiştir. Bu teslim yöntemi kök hücre nakli sırasında korumak hem de ana bilgisayarın inflamatuar yanıt ve hipoksik koşullar7,8,9 gibi sert inme sonrası çevre koruma , 10. ancak, en yaygın olarak kullanılan malzemeler hangi hücreleri11sürekli Modülasyon (Yani, elektriksel stimülasyon) kısıtlar etkisiz,. Elektriksel stimülasyon farklılaşma, iyon kanal yoğunluğu ve kök hücre12neurite akıbet etkiler bir ipucudur. İnert polimerler ile karşılaştırıldığında, elektriksel stimülasyon ve kök hücre2manipülasyon için geçerli bir izin iletken polimerler taşıyabilir. Ancak, hangi tarafından Nörotrofik faktör sürümü (Yani, BDNF ve THBS-1) elektriksel stimülasyon modüle kesin mekanizması hala tam keşfedilmeden.

Bu protokol için bir iletken polimer iskele, vitro için elektriksel stimülasyon sağlar polypyrrole (PPy), oluşan bir hücre kültür sistemi oluşturmak için adımları açıklar. Hangi hücre kültür sistemi fabrikasyon olduğunu şekilde nedeniyle, peri-enfarktüsü korteks üzerine kök hücre numaralı seribaşı iskele sonraki implantasyonu mümkündür. Bu sistem için biz elektrikle kök hücre iskele üzerinde kısa bir süre önce implantasyon için yaygõn. Elektriksel stimülasyon hücreleri taşıyan iletken polimer iskele intracranially minimal invaziv bir yöntem kullanarak başarılı bir şekilde yerleştirilir.

Protokol

Tüm kök hücre ve hayvan yordamlar Stanford'un kök hücre araştırma Gözetim Komitesi tarafından ve laboratuvar hayvan bakım (SCRO-616 ve APLAC-31909) Stanford Üniversitesi'nin Yönetim Panel tarafından kabul edildi.

1. gravür Ito cam

  1. İndiyum kalay oksit (ITO) hazırlamak-cam iletken yan tarafa bir maskeleme ajanı yerleştirerek kaplı cam kaymak.
    Not: Çoğu ticari şeffaf bantlar bir maskeleme ajanı olarak kullanılabilir.
    1. Bir bıçak kullanarak aşırı maskesi kaldırmak için yalnızca istediğiniz şekli son ITO tasarım bırakarak cam kaplı.
  2. Nitrik asit (v/v) %5 ve % 45'i (v/v) HCl bir duman başlık içinde bir cam ölçek büyütme çözüm hazırlamak için birleştirir.
    1. Çözüm aşındırma sıcaklık 70 ° C'de korunur emin olmak için elektrikli Ocak ve bir termometre kullanın
  3. 70 ° C Dağlama çözüm ulaştıktan sonra maskeli-ITO cam slayt 2 dakika fazla ITO kat kaldırmak çözüm içine yerleştirin.
    Not: Bant maskeleme asit solüsyonu maruz ITO katman korur.
  4. Slayt çözümden kaldırmak ve deiyonize (DI) H2ile O. durulayın
  5. Kalan ITO sağlam olduğundan emin olmak için bir multimetre kullanarak maske ve ölçü direnç dikkatli bir şekilde çıkarın. Sonuçlar istenilen kazınmış alanının yaklaşık 0 Ω olmalıdır.

2. Pyrrole çözüm hazırlanması

  1. 1000 mL cam şişe 70 g sodyum dodecylbenzenesulfonate (NaDBS) 600 mL DI H2O. geçiyoruz.
  2. Bir kez NaDBS çözülür, 14 mL 0,2 M pyrrole ve DI H2O 386 mL ekleyin.
  3. Alüminyum folyo ile çözüm kapak ve 4 ° C'de depolayın

3. galvanik Polypyrrole ITO camına,

  1. NaDBS tamamen redissolved kadar oda sıcaklığında pyrrole çözümünü sıcak.
    Not: Bu yaklaşık 15-20 dakika sürer.
  2. 25 mL pyrrole çözeltisi bir kabı dökün.
  3. Kazınmış ITO cam için bir multimetre bağlanmak ve slayt pyrrole çözüm içine daldırın.
    1. 0 Ω direnci ile yüzün Platin kafes referans elektrot doğru dönük olduğundan emin olun.
  4. Bir elektrik akımı bir multimetre (3 mA/cm2 ' de 4 saat boyunca kontrollü akım) kullanarak ITO yüzeyinde PPy galvanik başlatmak için geçerlidir.
  5. ITO cam multimetre ve yıkama alaşımlı-PPy kalan yüzey aktif kaldırmak için DI H2O kaldırın.
  6. Yavaşça bir jilet kullanarak ITO cam alaşımlı PPy tabaktan ayırın.
    1. PPy plaka oda sıcaklığında saklayın.

4. Polydimethylsiloxane (PDMS) hazırlanması

  1. Bir spatula ve tartmak çanak kullanarak, temel Aracısı 18 g kür Ajan 2 g ile mix ve iki 10 cm x 8 cm cam kalıpları içine karışımı dökün.
  2. Kabarcıklar vakum odası 15-20 dakika kullanarak kalıplar kaldırın.
  3. Kalıpları 3 h 70 ° C fırında yerleştirin.
  4. Soğutmalı sonra düz bir spatula PDMS kalıpları kaldırmak için kullanabilirsiniz.

5. Vitro elektriksel stimülasyon odası imalatı

  1. Otoklav metal levhalar (WxL, 2.5 cm x 12,5 cm) ve akışı vanalar 120 ° C'de 1 saattir.
  2. Odası slayt şablon olarak kullanıp, iki adet PDMS kesti.
    Not: Tek parça PDMS hücre odası çevre kesik iki bitişik kareler içinde hücre odası ile hizmet vermektedir. Diğer PDMS odası 's çevre bir taslağını parçasıdır.
    1. Kesmek iç hücre odası böylece kare şeklinde ve hücre odası şeklinde eşleşir. PDMS iki adet genel şekli dikdörtgen ve odası slayt uygun emin olun.
  3. Malzeme--dan dip aşağıdakine üst olarak katman: (1) Metal plaka, (2) PDMS (olmadan kesik), (3) PPy plaka (PDMS için dikey), PDMS (4) (ile kesik) ve (5) hücre odası.
  4. Bir kez tam olarak hizalanır aparatı birlikte kelepçe.
  5. Bir metal tel iki 60 cm parçalar koparıp ve gümüş hamur odası dışarıdan protrudes PPy plaka her sonu için bir kablo bağlamak için kullanın. Teller cihaz bir kuluçka dışa doğru genişletmek yeterince uzun olduğundan emin olun.
  6. Bir kez gümüş Yapıştır tedavi güçlendirmek ve epoksi ile tel bağlantı mühür.
    1. Direnç uygulanan alanını her odasında aynı olduğundan emin olmak için bir multimetre kullanarak kaydedin.
    2. İmplantasyon için kabloları çıkarın; hücre odaları unclamp ve iletken iskele PDMS ve sonra onları ayrı. İmplante iskele yaklaşık 1 x 3 x 0,25 mm boyuttur.

6. insan nöral progenitör hücre (hNPCs) PPy kaplama

  1. UV ışık altında birleştirilmiş chambers sterilize etmek için 2 saat.
    1. 1 saat sonra monte döndürün 90 ° Odaları.
  2. Sterilizasyon sonra PPy odası alt kaplama substrat 800 µL ile yüzey kat ve 1 h için % 5 CO2 37 ° C'de bir kuluçka PPy tabakta kuvvetlendirmek belgili tanımlık substrate sağlar.
  3. 1 saat sonra süpernatant odaları kaldır ve yavaşça DPBS + Ca + Mg 1 mL de başı ile durulayın.
    Not: Bu kaplama substrat dekolmanı neden olur gibi zorla PPy yüzey yıkama kaçının.
  4. Taze hücre medyayı kullanarak, mekanik olarak kültürlü hücreler nazik pipetting ile doku kültürü plaka chambers ile kullanmak için ayırmak.
    Not: Hücreleri % 90-100 birleşmesi ayrılma üzerine olmalıdır.
  5. Santrifüjü kullanarak de 8000 x g 5 dakika hNPC granül toplamak.
  6. Bir hemasitometre kullanarak, say ve hücreleri 100.000 hücreler/cm2ses seviyesinde resuspend.
  7. Her odaya iyi (100.000 hücreler/cm2 ' medya 1 mL) 100.000 hücreleri plaka.
  8. Kuluçka makinesi %5 37 ° C'de Chambers dönmek CO2.

7. elektrik hNPCs uyarılması

  1. Bir gün chambers, hücrelerdeyse tohum sonra bir dalga formu jeneratör elektrik stimülasyonu hücrelere uygulamak için kullanın.
  2. Stimülasyon önce eski medya de her odasından kaldırın ve taze medya 800 µL ile doldurmak.
  3. Medya değiştirildikten sonra odaları da kuluçka yerleştirin, kuluçka makinesi dışında teller genişletmek ve onları bir dalga formu jeneratör takmak
  4. Bir kare dalga sinyali için 1 h 100 Hz ile ±400 mV, hücrelerle stimülasyon uygulanır.
  5. Stimülasyon sonra kabloları çıkarın ve odaları ile % 5 CO237 ° C'de ayarla bir kuluçka başka bir gün için kuluçkaya.
  6. Hücre canlılığı ve nicel gerçek zamanlı Polimeraz zincir tepkimesi (PCR qRT) üreticinin protokol sonrası dahil olmak üzere sonraki biyolojik çözümlemesi gerçekleştirin.

8. içinde Vivo PPy implantasyon

  1. Distal orta serebral arter (dMCA) tıkanıklığı felç modelleri T hücre eksikliği üzerinde gerçekleştirmek yetişkin erkek çıplak rats (NIH-RNU 230 ± 30 g) olarak açıklanan daha önce2. İmplantasyon bir hafta sonrası dMCA tıkanıklığı gerçekleştirin.
  2. Bir gün önce ameliyat, onların kafes suda sıçanlar için Ampisilin (1 mg/mL) ver.
  3. Fareyi kullanarak bir indüksiyon odası içinde anestezi 0.5 - % 3 mg/kg isoflurane inhalasyon yolu ile yönetilen.
  4. Anesthetization farenin burun çimdik refleks yanıt alınamaması tarafından onaylayın.
    1. Hayvan anestezi altında olmakla birlikte, onun membran renk, nefes desen ve rektal sıcaklık 15 dakikada izlemeye devam edin.
  5. Anesthetization onayladıktan sonra suni gözyaşı kuruluğu önlemek için fare gözünü uygulanır.
  6. Aseptik teknik steril eldiven ve steril cerrahi örtüsü13kullanarak bu yordamı sırasında korunur emin olun. Steril cerrahi aletlerin steril alan içinde tutun.
  7. Fareyi anestezi altında olmakla birlikte, kraynektomi yukarıda sol korteks matkap. Beyin zarı açın.
    1. Dura mater beyin cerrahi mikro-ince iğne kullanarak kaldırın.
  8. Sıçan korteks vitro sisteminden iletken iskele implant.
    Not: bizim deneyler için iskele vitro gün 3 hNPC kaplama sonra implante.
    1. İmplant öncelikle halkalı korteks üzerinde medial kontur lezyon için yerleştirin.
  9. İskele yerleştirildikten sonra surgicel hareket cilt kapatma ile önlemek için implant üzerine getirin.
  10. Yara kapa ve subkutan buprenorfin SR, stereotaksik cerrahi ve dMCA tıkanıklığı ile ilgili ağrı yönetmek için 1 mg/kg doz ile farelere enjekte dikiş.
  11. Bilinci yerine gibi fare kurtarma kafese koyun.
    1. Asla baygın durumdayken hayvan çalıştırın.
    2. O tamamen bilinç kazanmıştır kadar başkaları ile hayvan koymayın.
  12. Hayvanlar günlük vücut kilo kaybı, düşük gıda/su alımı, azaltılmış bakım/dağınık ceket, spontan aktivite azaldı/arttı, anormal postür, dehidratasyon/cilt çadır, batık gözler, gizleme, öz sünneti de dahil olmak üzere ağrı belirtileri için izlemek, Hızlı solunum, açık ağızlı nefes, seğirmesi, titreyen, tremor ve seslendirme.
    1. Onlar yeme, içme, damat ve kilo olduğunu görünene kadar hayvanlar her gün izlemek; ve sonra haftalık sonra kilo.
  13. CO2 inhalasyon ve euthanization (hayvan değil normal oksijen kaynağı yazı CO2 inhalasyon nedeniyle canlandırmak sağlamak için) bir ikincil onay ile erken euthanization içme yemek değil, görünür herhangi bir hayvan gerçekleşir ve ilk cerrahi işlem sonrası kilo; acı içinde görünür; veya davranış testleri büyük bir motor korteks açığı beklenenden daha nedeniyle tamamlayamadı görünür.

Sonuçlar

Şekil 1 ' de gösterilen şematik genel iş akışını hNPCs ve potansiyel aşağı akım uygulamaları elektriksel stimülasyon ve temsil eder. Bir geçerli kök hücre tedavisi, kök hücre iltihabı ve iskemik koşulları gibi sert bir sonrası nakli ortamına maruz kısıtlamadır. Bu zor koşullar büyük olasılıkla onların tedavi edici etkinliği14,15sınırlayın. Bu ortamdan hNPCs korumak...

Tartışmalar

Kanıt büyüyen kök hücre vaadi bir roman kontur terapi olarak göstermiştir. Bu söz kök hücre therapeutics yatağımın en az 40 tamamlanmış veya devam eden klinik çalışmalar ile ilerlemek için önemli bir çalışma sonuçlandı. Kontur patoloji çünkü akut hakaret sonra kurtarma engelleyen hiçbir nörodejeneratif işlem ödünç vermek kendisi için kök hücre tedavisi benzersiz bir nörolojik bozukluk sunmaktadır. Kök hücre gelişmiş inme kurtarma tam mekanizmasının belirsizdir. Anjiogenez, syn...

Açıklamalar

Yazarlar yok bu iş ile bildirmek için çıkar çatışması var.

Teşekkürler

Dr. Kati Andreasson (Nöroloji ve nörolojik bilimler, Stanford Üniversitesi) qRT-PCR makinesi kullanımı için teşekkür ederiz. İş Ulusal kurumları K08NS098876 sağlık hibe (için P.M.G.) ve Stanford Tıp Fakültesi Dekan'ın doktora sonrası bursu (için Bo) tarafından desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
FGF-BasicInvitrogenCTP026120 ng/mL for working media
MatrigelCorningcb40234a1:200 dilution
LIF Protein, Recom. Hum. (10 µg/mL)EMD MilliporeLIF101010 ng/mL for working media
Sylgard 184 silicone 3.9 kgFisherbrandNC0162601
Hydrochloric acidFisherbrandSA56-4
Nitric Acid Concentrate (Certified) ACS, Fisher ChemicalFisherbrandSA95
ITO GlassDelta TechnologiesCG-40IN-0115
Sodium dodecylbenzenesulfonateSigma289957-1KG
PyrroleSigma131709-500MLProtect pyrrole solution from light and room temperature
8 well glass slide chambersThermo Sci Nuc 125658Detach the cell chamber and keep it under sterilized conditions
Flat-Surface Bracket, 3"x1"McMaster-Carr 1030A4
TWO PART SILVER PAINT 14GElectron Microscopy Sciences 1264214Mix two parts (1:1) in plastic plate
DPBS, 1x, with Ca and Mg, No Phenol RedGenesse 25-508C
AB2 ArunA Neural Cell Culture Media KitAruna Biomedical ABNS7013.2
hNP1 Human Neural Progenitor Expansion KitAruna Biomedical  hNP7013.1
Noncontact Flow-Adjustment Valve, Nickel-Plated Brass, for 3/32" to 5/8" Tube ODMcMaster-Carr 5330K22
MultimeterKeysight E3641A
Wavefoam generatorKeysight33210A-10MHz
Pt meshesSigma-Aldrich 298107-425MGReference electrode with dimensions, 1x1 cm
LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit, for mammalian cellsThermo Fisher Scientific L3224
BDNFThermo Fisher Scientific Hs02718934_s1
THBS1Thermo Fisher Scientific Hs00962908_m1
GAPDHThermo Fisher Scientific Hs02758991_g1
RNeasy Mini Kit (250)Qiagen74106
QIAshredder (250)Qiagen79656
RNase-Free DNase Set (50)QIAGEN79254
iScript cDNA Synthesis Kit, 100 x 20 µL rxnsBIORAD1708891
TaqMan Gene Expression Master MixThermo Fisher Scientific 4369510
7-8 Week Old, male, RNU RatsNCI-Frederick
4-0 Ethicon Silk SutureeSutures.com683G
IsofluraneHenry Schein29405
V-1 Tabletop Laboratory Animal Anesthesia SystemVetEquip901806
Surgicel Original Absorbable HemostatEthicon1952
Lab Standard Stereotaxic Instrument, RatStoelting51600
Kimberly-Clark Professional Safeskin Purple Nitrile Sterile Exam GlovesFisherbrand19-063-130
Sterile DrapeMedlineDYNJSD1092
Thermo Scientific Shandon Stainless-Steel Scalpel Blade Handle, Holds No. 20-25 BladesFisherbrand53-34
Walter Stern Scalpel Blade Series 300Fisherbrand17-654-456
QuantStudio 6 Flex Real-Time PCR SystemThermo Fisher Scientific4484642
Frazier Micro Dissecting HookHarvard Apparatus52-2706

Referanslar

  1. Moskowitz, M. A., Lo, E. H., Iadecola, C. The Science of Stroke: Mechanisms in Search of Treatments. Neuron. 67 (2), 181-198 (2010).
  2. George, P. M., et al. Electrical Preconditioning of Stem Cells with a Conductive Polymer Scaffold Enhances Stroke Recovery. Biomaterials. 142, 31-40 (2017).
  3. Steinberg, G. K., et al. Clinical Outcomes of Transplanted Modified Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells in Stroke: A Phase 1/2a Study. Stroke. 47 (7), 1817-1824 (2016).
  4. George, P. M., Steinberg, G. K. Novel Stroke Therapeutics: Unraveling Stroke Pathophysiology and Its Impact on Clinical Treatments. Neuron. 87 (2), 297-309 (2015).
  5. Schabitz, W. R., et al. Intravenous Brain-Derived Neurotrophic Factor Enhances Poststroke Sensorimotor Recovery and Stimulates Neurogenesis. Stroke. 38 (7), 2165-2172 (2007).
  6. Liauw, J., et al. Thrombospondins 1 and 2 Are Necessary For Synaptic Plasticity and Functional Recovery After Stroke. J Cereb Blood Flow Metab. 28 (10), 1722-1732 (2008).
  7. Cantu, D. A., Hematti, P., Kao, W. J. Cell Encapsulating Biomaterial Regulates Mesenchymal Stromal/Stem Cell Differentiation and Macrophage Immunophenotype. Stem Cells Translational Medicine. 1 (10), 740-749 (2012).
  8. Chaudhuri, O., et al. Hydrogels with Tunable Stress Relaxation Regulate Stem Cell Fate and Activity. Nat Mater. 15 (3), 326-334 (2016).
  9. Ballios, B. G., et al. A Hyaluronan-Based Injectable Hydrogel Improves the Survival and Integration of Stem Cell Progeny following Transplantation. Stem Cell Reports. 4 (6), 1031-1045 (2015).
  10. Mothe, A. J., Tam, R. Y., Zahir, T., Tator, C. H., Shoichet, M. S. Repair of the Injured Spinal Cord by Transplantation of Neural Stem Cells in a hyaluronan-based hydrogel. Biomaterials. 34 (15), 3775-3783 (2013).
  11. Saini, M., Singh, Y., Arora, P., Arora, V., Jain, K. Implant Biomaterials: A Comprehensive Review. World J Clin Cases. 3 (1), 52-57 (2015).
  12. Huang, Y., Li, Y., Chen, J., Zhou, H., Tan, S. Electrical Stimulation Elicits Neural Stem Cells Activation: New Perspectives in CNS Repair. Front Hum Neurosci. 9, (2015).
  13. Pritchett-Corning, K. R., Mulder, G. B., Luo, Y., White, W. J. Principles of Rodent Surgery for the New Surgeon. J Vis Exp. (47), (2011).
  14. Abdelwahid, E., et al. Stem Cell Death and Survival in Heart Regeneration and Repair. Apoptosis. 21 (3), 252-268 (2016).
  15. Wang, X., et al. The Clinical Status of Stem Cell Therapy for Ischemic Cardiomyopathy. Stem Cells Int. 2015, (2015).
  16. George, P. M., et al. Fabrication and Biocompatibility of Polypyrrole Implants Suitable for Neural Prosthetics. Biomaterials. 26 (17), 3511-3519 (2005).
  17. Aravamudan, B., Thompson, M., Pabelick, C., Prakash, Y. S. Brain-Derived Neurotrophic Factor Induces Proliferation of Human Airway Smooth Muscle Cells. J Cell Mol Med. 16 (4), 812-823 (2012).
  18. Lopes, N., et al. Thrombospondin 2 Regulates Cell Proliferation Induced by Rac1 Redox-Dependent Signaling. Mol Cell Biol. 23 (15), 5401-5408 (2003).
  19. Ploughman, M., et al. Brain-Derived Neurotrophic Factor Contributes to Recovery of Skilled Reaching After Focal Ischemia in Rats. Stroke. 40 (4), 1490-1495 (2009).
  20. Baker, E. W., et al. Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Neural Stem Cell Therapy Enhances Recovery in an Ischemic Stroke Pig Model. Sci Rep. 7 (1), 10075 (2017).
  21. Bacigaluppi, M., et al. Neural Stem Cell Transplantation Induces Stroke Recovery by Upregulating Glutamate Transporter GLT-1 in Astrocytes. J Neurosci. 36 (41), 10529-10544 (2016).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyom hendisliksay 134Pyrroleelektriksel stim lasyonn ral progenit r h creiletken polimerinmek k h cre

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır