Farelerde Transuterin Fetal Trakeal Oklüzyon Modeli

Özet

Konjenital diyafram fıtığı ve fetal trakeal tıkanıklık gibi çeşitli hayvan modelleri etik konular, maliyet, cerrahi zorluk, boyut, sağkalım oranları ve genetik araçların mevcudiyeti ile ilgili avantaj ve dezavantajlar sürmektedir. Bu model, hem trakeal tıkanıklık hem de artan ışık basıncının akciğer gelişimi üzerindeki etkisini incelemek için yeni bir araç sağlar.

Özet

Yerleşik bir tedavi yöntemi olan fetal trakeal oklüzyon (TO), şiddetli konjenital diyafram fıtığı (CDH) fetal akciğer büyümesini ve sağkal sağkalımı destekler. TO'yu takiben, salgılanan epitel sıvısının tutulması ışık basıncını arttırır ve akciğer büyümesine neden olan. CDH ve TO patofizyolojisini anlamak için çeşitli hayvan modelleri tanımlanmıştır. Tekniğin zorluğu, hayvanın büyüklüğü, maliyet, yüksek ölüm oranları ve genetik araçların mevcudiyeti gibi hepsinin kendi avantajları ve dezavantajları vardır. Burada, murine fetal TO'nun yeni bir transuterin modeli tanımlanmıştır. Hamile fareler uyuşturuldu ve rahim orta çizgi laparotomi yoluyla maruz kaldı. Seçilen fetüslerin trakeası, trakeanın arkasına yerleştirilen tek bir transuterin dikiş, bir şahdamar ve bir şah damarı ile bağlandı. Baraj kapatıldı ve iyileşmesine izin verildi. Fetüsler parçalandırılmadan hemen önce toplandı. TO fetüslerinde akciğer-vücut ağırlığı oranı kontrol fetüslerindekinden daha yüksekti. Bu model, araştırmacılara hem TO'nun hem de artan ışık basıncının akciğer gelişimi üzerindeki etkisini incelemek için yeni bir araç sağlar.

Giriş

Konjenital diyafram fıtığı (CDH) 1:2500 gebelikte ortaya çıkar ve pulmoner hipoplazi ve yenidoğan pulmoner hipertansiyon 1^,2 ,^3,4,5,6ile sonuçlanır. Fetal trakeal oklüzyon (TO), 26-30. gebelik haftasında fetoskopi içeren ağır CDH hastalarında, bir balonun karinanın hemen üzerine yerleştiği ve daha sonra 32^nd gebelik haftasında çıkarıldığı yerleşik bir prenatal tedavidir. Bu geçici TO fetal akciğer büyümesini teşvik eder ve sağkalım geliştirir. Konjenital Yüksek Hava Yolu Tıkanıklığı Sendromu, cerrahlara salgılanan epitel sıvısının tutulmasını teşvik etmek için trakeanın yapay tıkanıklığını gerçekleştirmeleri için ilham veren akciğer hiperplazisi ile ilişkili ölümcül bir durumdur. Bu tıkanma ışık basıncıyı artırdı ve akciğer büyümesine neden oldu⁷. Bununla birlikte, epitel hücre olgunlaşmasını sağlamak için tıkanıklık tersine çevrilmelidir.

CDH ve TO'nun çeşitli hayvan modelleri - yumurta, tavşan, sıçan ve fare - CDH ve TO'nun patofizyolojisini anlamak için geliştirilmiştir. Tekniğin zorluğu, hayvanın büyüklüğü, maliyet, yüksek ölüm oranları ve genetik araçların mevcudiyeti gibi hepsinin kendi avantajları ve dezavantajları vardır. Yumurta modeli için kullanılan cerrahi teknik insanlarda kullanılana çok benzer ve tersine çevrilebilir olsa da, bu modelin en büyük dezavantajları hayvanın masrafı, uzun gebelik süresi ve mümkün olan sınırlı sayıda ameliyattır. Tavşan modeli daha kısa bir gebelik süresine sahiptir ve koyun modelinden daha ucuzdur. Ancak, tavşan modeli geri döndürülemez^8,9. Murine modeli en düşük maliyete, gebelik başına en yüksek fetüs sayısına, en iyi karakterize genoma ve hücresel ve moleküler analizler için yaygın olarak bulunan araçlara sahiptir. Bununla birlikte, önemli bir dezavantaj, TO'nun etkisinin tam olarak anlaşılmasını önleyen, TO'nun geri döndürülebilir olmamasıdır. Burada, daha önce bahsedilen modellerin tüm avantajlarını birleştiren ve kolay, potansiyel olarak geri döndürülebilir ve minimal invaziv bir kemirgen TO modeli oluşturan bir yöntem sunulmaktadır.

Protokol

Tüm deneyler, Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı için Ulusal Sağlık Enstitüleri Rehberi'ne (NIH Yayınları No. 80023, revize 1978) uygundur. Prosedür, Cincinnati Çocuk Araştırma Vakfı Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından #2016-0068 IACUC protokolü ile onaylandı.

1. Hazırlık

1. Yaşla eşleşen vahşi tip (WT) C57BL/6 fareleri çiftleşmek için, onları saat 18:00'de aynı kafese yerleştirin.m ve ertesi gün saat 9:00'da.m ayırın.
2. Embriyonik gün 0'ı (E0) belirlemek için, vajina duvarına bağlı homojen bir dış bölgeye ve lifli bir iç bölgeye sahip olan ve fiş malzemesinin lifleriyle karıştırılmış dolaşmış kitleler oluşturan bazı spermatozoa içeren vajinal tıkaçlara bakın.
3. Çiftleşme anında farelerin ağırlığını kaydedin.
4. Devam eden hamileliği sağlamak için fareleri E10'da yeniden tartın.
5. Ameliyatı E16.5 (erken canaliküler evre) üzerinde gerçekleştirin.
6. Ameliyat sırasında kullanılacak aletleri sterilize edin: makas, iğne tutucu, tokalar, kelepçeler ve cerrahi bıçaklar ve tutamaklar.
7. Ameliyat platformunu 24 °C'ye ısıtın ve ameliyattan önce ılık salin (24 °C) hazırlayın.
8. İyileşme için sıcak bir ortam yaratın ve erken beslenme için kafesin içinde ıslak yiyecekler bırakın.
9. Kendilerini besleyene kadar işletilen hayvanların yanında kalın.
10. Ameliyat edilen fareleri ameliyattan sonra bireysel kafeslerinde yalnız tutun.

2. Anestezi

1. İşlemden 1 saat önce hamile barajlarına 0,1 mg/kg buprenorfin deri altı uygulayın.
2. İndüksiyon için inhale 5 mL/h izofluran ve anestezi işlemi sırasında sürekli olarak 2 mL/sa kullanın.
3. Hamile farelerin çene hareketlerini izleyin.

3. Laparotomi

1. Karın yüzeyini alkol ve povidon-iyot ile temizleyin. Operasyon boyunca steril koşulları koruyun.
2. Hamile barajların laparotomi için dikey bir kesi gerçekleştirin. Tüm katmanları ayrı ayrı kesin.
3. Her iki taraftaki rahim boynuzlarını tanımlayın.
4. Ameliyat için aday fetüsleri belirleyin.
   NOT: Vajinaya en yakın olan fetüsleri ameliyat etmeyin.
5. Her iki tarafta eşit sayıda fetüs varsa (çoğu zaman 4) her rahim boynuzunda iki fetüs ve uterusun tek bir sayısı varsa her rahim boynuzunda 1 fetüs üzerinde (çoğu zaman 3) ameliyat et.

4. Trakeal tıkanma

1. Görselleştirme için 2,5x büyütme gözlüğü kullanın.
2. Rahim boynuzu enine bir şekilde konumlandırın.
3. Yavruları yukarı bakacak şekilde, yavruların gözlerini ve kuyruğunu fetüse konumlandırmak için bir rehber olarak kullanarak iki parmak arasına alın.
4. Başın uzatılmasına ve dolayısıyla boynun görselleştirilmesine izin vermek için yavrunun kafasına hafif basınç uygulayın.
5. TO(Şekil 1)gerçekleştirmek için atravmatik iğne ile 6.0 polipropilen dikiş kullanın. Plastantayı iğnenin giriş ve çıkış noktalarından uzakta ve yan tarafta tutun.
6. İğneyi uterusun yanından enine bir şekilde plasetadan boynun 1/3^rd ön kısmına yerleştirin.
7. İğneyi boynun orta çizgisine kadar hafifçe hareket ettirip ön kısmaya yönlendirin, ardından boyundan trakea arasında ve şahdabı kılıfı ve uterusun karşısında çıkın.
8. Dikişi düğümle, zarların ve rahim duvarının bütünlüğünü korumaya ve düğümleme sırasında göbek kordonu güvende tutmaya özen göster.

Şekil 1: Trakeal oklüzyon. (A) Boyundan geçen transuterin dikiş. (B) Dikiş geçtikten sonra ve düğümden önce yapıların şematik gösterimi. Kısaltmalar: C = Karotid arter; J = Şahdamarı; T =Trakea; E = Yemek Borusu; V = Omur. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

5. Karın duvarı kapatma

1. Karın bölgesindeki rahim boynuzu değiştirin.
2. Kapanmadan önce periton boşluğuna 2 mL ılık steril salin enjekte edin.
3. Karın duvarını kapatmak için çalışan bir 5/0 poliglactin dikişi koyun ve cildi çalışmayan bir ipek dikişle kapatın.
4. Analjezi için intraperitoneal olarak 0,1 mg/kg buprenorfin uygulayın ve barajın ılık bir inkübatörde geri kazanılmasına izin verin.

6. Hasat

1. Gebe barajına anestezi uygulayın ve E18.5'teki tüm fetüsleri sezaryenle hasat edin.
2. Fetüslerin hareketlerini izleyerek fetüslerin canlılığını kontrol edin.
3. Ötenazi için en az iki farklı teknik kullanın: karbondioksit insufflation ve servikal çıkık.
4. Veteriner laboratuvarının yönetmeliğine göre cesetleri çıkarın.
5. Tüm fetüsleri tartın.
6. Akciğerleri çıkarmak için toraksotomi için toraks üzerinde dikey bir kesi gerçekleştirin.
7. Embriyoların akciğerlerini parçalara ayrılın ve toplam akciğer-vücut ağırlığı oranını hesaplamak için tartın (LBWR = (sol akciğer ağırlığı + sağ akciğer ağırlığı)/vücut ağırlığı x100).

7. Histoloji

1. Dokuları sıvı nitrojen, optimum kesme sıcaklığı bileşiği ve kuru buzda çıtlatın.
2. Numuneleri kriyostat kullanarak 10 μm bölümde kesin ve poli lizin kaplı slaytlara monte edin.
3. Slaytları gece boyunca 60 °C'de pişirin ve pişmiş slaytları hematoksilin ve eozin ile lekeleyin ve geniş alan mikroskobu kullanarak 10-20x büyütmede görüntü alımı için monte edin.

8. Protein ve DNA analizleri için doku işleme

1. Parçalanmış fetal akciğerleri çıtlatın ve 300 μL radyoimmünötepektasyon test tamponunda homojenize edin. 4 °C'de 5 dakika 18.000 × g'da santrifüj.
2. Protein, DNA ve RNA¹⁰,^12'yiçıkarın ve ölçün.

Sonuçlar

Bu çalışmada 37 fetüs incelendi: 20 (%54.1) TO ve 17 (%45,9) olarak kontrol olarak. TO grubundaki 4 fetüste trakea tıkanamadığı için çalışma dışı bırakıldı. Her iki grupta da mortalitede anlamlı bir fark yoktu: 4 fetüs (%25) TO grubunda ve 2 fetüste (%12) kontrol grubunda (p=0.334, oran oranı (OR) 2.5, %95 güven aralığı (CI) 0.39-16.05). Ortalama vücut ağırlığı, akciğer ağırlığı ve akciğer-vücut ağırlığı oranı (LBWR) TO grubunda kontrol grubu...

Tartışmalar

Bu yöntem, farelerde fetal trakeal tıkanıklık cerrahi bir prosedürü ve akciğer gelişimi üzerindeki etkisini açıklar. Başarılı TO için protokolde dikkatle gerçekleştirilmesi gereken bazı kritik adımlar vardır. Ameliyatın gerçekleştiği platformun sıcaklığı ve periton boşluğuna sokulan salin gebeliğin ilerlemesi için çok önemlidir. Ek olarak, boynun maruz kalmasını sağlamak için yavruların başına hafif bir basınç uygulanmalıdır.

6.0 polipropilen dikiş...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Buprenorphine	Par Pharmaceutical	NDC 42023-179-05	For regional anesthesia
Isoflurane	Halocarbon Life Sciences	NDC 66794-017-25	For general anesthesia
Magnification glasses	USA Medical-Surgical	SLR-250LBLK	At least 2.5x
Nikon 90i microscope	Nikon	3417	Motorized Fluorescence
Nucleospin Tissue Kit	Macherey-Nagel, Düren, Germany	740952.5	DNA isolation
Pierce BCA Protein Assay Kit	Thermo Fisher, IL, USA	23225	Protein quantification
Polyglactin suture	Ethicon	VCP451H	4-0, 24 mm, cutting
Polylysine slides	VWR	48382-117	Microscope adhesion slides
Polypropylene suture	Ethicon	Y432H	6-0, 13 mm 1/2c Taperpoint
RIPA buffer	Sigma-Aldrich, Missouri, USA	R0278-50ml	Protein isolation
Silk suture	Ethicon	VCP682G	4-0, 24 mm, cutting
Trizol	Invitrogen	15596026	RNA isolation