JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol, düşük doz deksmedetomidin ile birlikte düşük doz izofluran kullanan bir sıçandan kararlı istirahat durumu fonksiyonel manyetik rezonans görüntüleme (rs-fMRI) verilerini elde etmek için bir yöntem açıklar.

Özet

Dinlenme durumu fonksiyonel manyetik rezonans görüntüleme (rs-fMRI), dinlenme, görev dışı bir durumda beyin fonksiyonlarını incelemek için giderek daha popüler bir yöntem haline gelmiştir. Bu protokol, rs-fMRI verilerini elde etmek için klinik öncesi bir sağkalım yöntemini açıklar. Düşük doz izofluran ile α sürekli infüzyonubirleştirildiğinde, 2 adrenerjik reseptör agonist dekmedetomidinin beyin ağı fonksiyonunu korurken istikrarlı, yüksek kaliteli veri toplama için sağlam bir seçenek sağlar. Ayrıca, bu prosedür sıçanda spontan solunuma ve normale yakın fizyolojiye izin verir. Ek görüntüleme dizileri, bu yöntem kullanılarak 5 saate kadar anestezik stabiliteye sahip deneysel protokoller oluşturan dinlenme durumu kazanımı ile birleştirilebilir. Bu protokol, ekipmanın kurulumunu, anestezinin dört farklı aşamasında sıçan fizyolojisinin izlenmesini, dinlenme durumu taramalarının edinimini, verilerin kalite değerlendirmesini, hayvanın kurtarılmasını ve işlem sonrası veri analizinin kısa bir tartışmasını açıklar. Bu protokol, istirahatte meydana gelen beyin ağı değişikliklerini ortaya çıkarmak için çok çeşitli preklinik kemirgen modellerinde kullanılabilir.

Giriş

Dinlenme durumu fonksiyonel manyetik rezonans görüntüleme (rs-fMRI), beyin dinlendiğinde ve belirli bir görevle meşgul olmadığında kan-oksijen seviyesine bağımlı (BOLD) sinyalin bir ölçüsüdür. Bu sinyaller, sinir ağları içindeki işlevsel bağlantıyı belirlemek için beyin bölgeleri arasındaki korelasyonları ölçmek için kullanılabilir. rs-fMRI, invazivliği ve hastaların ihtiyaç duyduğu düşük efor miktarı nedeniyle klinik çalışmalarda yaygın olarak kullanılmaktadır (görev tabanlı fMRI ile karşılaştırıldığında) çeşitli hasta popülasyonları için en uygun hale getirmektedir1.

Teknolojik gelişmeler, rs-fMRI'nın hastalık durumlarının altında yatan mekanizmaları ortaya çıkarmak için kemirgen modellerinde kullanılmak üzere uyarlanmasına izin verdi (bkz. gözden geçirme için referans2). Hastalık veya nakavt modelleri de dahil olmak üzere preklinik hayvan modelleri, insanlarda geçerli olmayan çok çeşitli deneysel manipülasyonlara izin verir ve çalışmalar ayrıca deneyleri daha da geliştirmek için ölüm sonrası örneklerden yararlanabilir2. Bununla birlikte, hem hareketi sınırlama hem de stresi azaltmadaki zorluk nedeniyle, kemirgenlerde MRI alımı geleneksel olarak anestezi altında gerçekleştirilir. Anestezik ajanlar, farmakokinetiklerine, farmakodinamiklerine ve moleküler hedeflerine bağlı olarak beyin kan akışını, beyin metabolizmasını etkiler ve potansiyel olarak nörovasküler bağlantı yollarını etkiler.

Nörovasküler kavramayı ve beyin ağı fonksiyonu 3 , 4,5,6,7,8'ikoruyan anestezik protokoller geliştirmek için çok sayıda çaba olmuştur. Daha önce düşük dozda izofluran ve düşük dozda α2 adrenerjik reseptör agonist deksmedetomidin uygulanan bir anestezi rejimi bildirdik9. Bu anestezi yöntemi kapsamındaki sıçanlar, yerleşik projeksiyon yollarıyla (ventrolateral ve ventromedial talamik nüklei, birincil ve ikincil somatosensör korteks) tutarlı bölgelerde bıyık stimülasyonuna sağlam BOLD yanıtları gösterdi; varsayılan mod ağı10 , 11ve salience network12 de dahil olmak üzere büyük ölçekli dinlenme durumu beyin ağları da sürekli olarak algılanmıştır. Ayrıca, bu anestezik protokol, hastalığın ilerlemesini ve deneysel manipülasyonların etkisini uzunlamasına izlemek için önemli olan aynı hayvan üzerinde tekrarlanan görüntülemeye izin verir.

Bu çalışmada, ilgili deneysel kurulum, hayvan hazırlama ve fizyolojik izleme prosedürlerini detaylandırıyoruz. Özellikle, her aşamada spesifik anestezik evreleri ve taramaların alımını açıklıyoruz. Veri kalitesi, her dinlenme durumu taramasından sonra değerlendirilir. Tarama sonrası analizin kısa bir özeti de tartışmaya dahildir. Sıçanlarda rs-fMRI kullanma potansiyelini ortaya çıkarmakla ilgilenen laboratuvarlar bu protokolü yararlı bulacaktır.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

Tüm deneyler 9.4 T MRI tarayıcıda yapıldı ve Dartmouth Koleji Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı. Aşağıdaki video ve rakamlarda kullanılan hayvanları kaydetmek ve göstermek için ek onay alındı.

1. Taramadan önce hazırlıklar

  1. Deri altı infüzyon hattı
    1. İğne noktasının steril kalması için paketinden 23 G'lık bir iğneyi kısmen çıkarın.
    2. İğnenin göbeğini güvenli bir şekilde tutun ve iğne milinin göbekle buluştuğu yeri puanlamak için bir jilet kullanın.
    3. Bir iğne tutucuyu, puanlamanın hemen altındaki şaftın etrafına sıkıştırın ve şaftı merkezden hafifçe kırın.
    4. İğne milinin 1/3'ü (künt uç) daha önce sterilize edilmiş PE50 hattına, ilaç pompasından mıknatıs deliğinin içindeki hayvana uzanacak kadar hat uzunluğu ile yerleştirin.
  2. Deksmedetomidin ve atipamezol seyreltilmesi
    1. Açık, steril bir cam şişede 9,5 mL steril salin ile karıştırılmış 0,5 mL 0,5 mg/mL stok kullanarak seyreltilmiş dekmedetomidin hidroklorür çözeltisi hazırlayın (seyreltilmiş konsantrasyon = 0,025 mg/mL).
    2. Açık, steril bir cam şişede (seyreltilmiş konsantrasyon = 0,05 mg/mL) 9,9 mL steril salin ile karıştırılmış 0,1 mL 5 mg/mL stok kullanarak seyreltilmiş atipamezole çözeltisi hazırlayın.
  3. Parametreleri tarama
    1. Tarama dizileri hazırlamak için Tablo 1'de sunulan parametreleri kullanın.

2. Faz 1 anestezi: Hayvan indüksiyonu ve hazırlanması

  1. Kurulum
    1. Oksijen ve hava karıştırıcı, ısıtma yastığı ve aktif çöp atma sistemi de dahil olmak üzere tüm ekipmanların açık olduğundan ve düzgün çalıştığından emin olun (bkz. Şekil 1).
    2. Isıtma sisteminin sıcaklık ayar noktasını 37,5 °C olarak ayarlayın.
  2. Hayvan indüksiyonu
    1. Hayvanı (90 günlük, erkek Sprague Dawley sıçanı) indüksiyon odasına yerleştirin ve% 30 oksijenle zenginleştirilmiş havada% 2.5 izofluran ile anesteziye neden edin.
      NOT: Çok çeşitli hayvan yaşları ve her iki cinsiyet de kullanılabilir.
    2. Hayvan uyuşturulduktan sonra, odadan çıkarın, hayvanı tartın ve hazırlık alanında ısıtma yastığının üzerine burun konisine (% 2.5 izoflurane) yerleştirin.
  3. Hayvan hazırlığı
    1. Kurumasını önlemek için her göze oftalmik yağlama merhem uygulayın.
    2. Anestezinin derinliğini parmak sıkışması tepkisi eksikliği ile onaylayın.
    3. Hayvanın sırtının alt bel bölgesinde (yani kuyruğun hemen üstünde) 2" ile 2" kare alanı tıraş etmek için makas kullanın.
    4. Deksmedetomidin çözeltisinin 0.015 mg/kg'ını intraperitoneal (i.p.) enjeksiyonu ile (örneğin, 300 g sıçan 0.18 mL alır) 25 G iğne kullanarak karnın sağ alt çeyreğine sürün.
    5. Hazırlık alanından hayvan beşiğine izoflurane akışını değiştirin.
    6. Hayvanı hayvan beşiğine taşıyın. Sıçanın ön dişlerini ısırık çubuğuna güvenli bir şekilde yerleştirin. Sıkı bir uyum sağlamak için burun konisini burnun üzerine itin.
      NOT: Burun konisi alt çeneyi kapatmazsa, burun konisinin etrafını kapatırken çeneyi hafifçe kapalı tutmak için bir parafin filmi kullanın.
    7. Solunum pedini sıçanın karnının altına göğüs kafesinin altına yerleştirin ve solunum dalga formu her nefeste ortalanmış derin bir oluk gösterene kadar yeniden konumlandırın (Şekil 2'dekisolunum dalga formuna bakın).
    8. Fizyoloji izleme yazılımını kullanarak hayvanın nefes alışını izleyin. Solunum 40 nefes/dk'dan az olduğunda anestezinin bir sonraki aşamasına geçin (bpm; dekmedetomidin enjeksiyonundan yaklaşık 5 dk sonra).

3. Faz 2 anestezi: Hayvan kurulumu

  1. Sıçanın kafasını hayvan beşiğinde stabilize etmek için kulak çubuğuna kulak çubukları yerleştirin. Bir kez konumlandıktan sonra, ısırık çubuğunu öne çekin ve başın hareket etmediğini onaylayın. Burun konisini ve parafin filmini gerektiği gibi yeniden ayarlayın (bkz. Şekil 3a).
  2. Sıcaklık probını önceden yağlanmış, tek kullanımlık bir prob kapağına yerleştirin. Sıcaklık probunu rektuma yaklaşık 1/2" hafifçe yerleştirin ve tıbbi bantla kuyruğun tabanına bantlayın.
  3. Nabız oksimetre klipsini arka ayağın metatarsal bölgesine yerleştirin ve ışık kaynağının ayağın dibinde (avuç içi) olmasını sağlayın.
    NOT: Klibin dönüşü sinyali etkileyebilir; böylece, pençeyi ve klibi dik tutmak için bir tutucu oluşturmak daha fazla stabiliteye yol açacaktır. Ayrıca, sıçan normal vücut sıcaklığına gelene kadar oksijen doygunluğunun düşük olabileceğini unutmayın (%<95).
  4. Deksmedetomidinin 0.015 mg/ kg / s'sini çıkarmak için infüzyon oranını hesaplamak için sıçanın ağırlığını kullanın (300 g sıçan 0.18 mL / s alır).
  5. İlaç pompasını hesaplanan infüzyon oranını dışarı atacak şekilde ayarlayın.
  6. 3 mL'lik bir şırıngayı steril, seyreltilmiş dekmedetomidin çözeltisi ile doldurun ve iğnenin ucunu sterilize edilmiş infüzyon hattının açık ucuna yerleştirin (daha önce takılı olan deri altı iğnesi ile ilaç pompasından hayvan beşiğine kadar uzanır). Hattı doldurun ve şırınnayı ilaç pompasının şırınna tutucusuna sabitleyin.
  7. Pistona dokunana kadar itici bloğu ileriye doğru hareket ettirin ve ilaç iğneden dışarı atılır ve infüzyon hattının tamamen doldurulmasını sağlayın.
  8. Alkol mendili kullanarak, başıboş tüyleri çıkarmak için tıraş edilen bölgeyi temizleyin.
  9. Cildi kuyruğun tabanından yaklaşık iki parmak genişliğinde kıstırın. Infüzyon hattı iğnesinin 1/3'ü çadırlı cilde yerleştirin.
  10. İğneyi 3" geniş tıbbi bant parçasıyla cilde sabitleyin. İlkinin üzerine, sıçanın üzerine ve hayvan beşiğinin her iki tarafına bağlı ikinci bir geniş tıbbi bant yerleştirin (bkz. Şekil 4).
    NOT: Tarama sırasında hareketi önlemek için ferromanyetik iğnenin iyi sabitlenerek sabitlenmeleri kritik öneme sahiptir.
  11. Deri altı deksmedetomidinin infüzyonunu başlatın.
  12. Bobin için seviyeli bir yüzey oluşturmak için sıçanın burnunun köprüsüne bir parça gazlı bez yerleştirin. Bobini farenin kafasına sabitlemek için MRI sinyalini engellemeyen kağıt bant kullanın ve beynin üzerine ortaleyin (bkz. Şekil 3b,c).
  13. Hayvan beşiği içindeki tüm hatları ve kabloları laboratuvar bandı ile sabitleyin ve tüm fizyoloji sinyallerinin kararlı olup olmadığını kontrol edin (bkz. Şekil 2).
  14. Kağıt havluları hayvanın üzerine yerleştirin, laboratuvar bandı ile hayvan beşiğine sabitleyin. Bir hava ısıtma sistemi kullanıyorsanız, sıcak havayı içermesi için tüm beşiğin etrafına plastik bir tabaka sarın.
  15. Hayvanı deliğe taşıyın ve mıknatısı ayarlayın.

4. Faz 3 anestezi: Anatomik tarama alımı

  1. Izoflurane%1,5'e düşürün, bu da solunumda yaklaşık 45-50 bpm'ye doğru sürekli bir artışa neden olabilir. Anatomik tarama süresince bu seviyede kalır.
  2. Beynin mıknatıs izomerkeziyle hizalı olduğundan emin olmak için FLASH yerelleştirici taramasını kullanın (Şekil 5a). Hayvanı yeniden konumlandırın ve gerekirse tekrarlayın.
  3. Daha yüksek çözünürlüklü RARE yerelleştirici taramasını çalıştırın ve beyinde ortalanmış 15 sagittal dilimi hizalamak için bu tarama çıktısını kullanın (soldan sağa, Şekil 5b).
  4. Orta sagittal dilimi kullanarak, orta eksenel dilimi koyu bir nokta olarak görünen ön komiserin deküsyona hizalayın (Şekil 5c). Daha sonra dinlenme durumu taramalarında kullanılacak dilim uzaklığını not edin.
  5. Tarama sonrası analiz sırasında ortak bir alana kaydolmaya yardımcı olmak için hem FLASH hem de RARE eksenel protokollerini kullanarak 23 dilim alıp alın.
  6. PRESS dizisini kullanarak tüm beyinde shim.

5. Aşama 4: Dinlenme durumu tarama alımı

  1. Anatomik taramaları tamamladıktan sonra, izofluranları% 0.5 ila% 0.75'e düşürün, hayvanın solunumu dakikada 60-65 nefes olacak şekilde ayarlayın. Stabiliteyi sağlamak için dinlenme durumu taramasına başlamadan önce en az 10 dakika bu seviyede kal.
  2. Fizyoloji kararlı olduğunda (solunum aralığı nefes nefese veya düzensizlik olmadan 60-75 bpm, çekirdek vücut sıcaklığı 37,5 ± 1,0 °C ve oksijen doygunluğu% 95 veya daha büyük) anatomik eksenel seri ile aynı dilim ofsetini kullanarak 15 dilim EPI taraması alın.
  3. Her dinlenme durumu taraması tamamlandıktan sonra, verileri uzamsal ve zamansal bileşenlere ayrıştırmak için bağımsız bir bileşen analizi (ICA) kullanarak kaliteyi kontrol edin.
  4. En az üç yüksek kaliteli dinlenme durumu taraması alın.

6. Tarama sonrası kurtarma

  1. Tarama tamamlandığında, izofluranları% 2'ye çıkarın ve deri altı dekmedetomidin infüzyonunu durdurun.
  2. Hayvan beşiğini mıknatıs denden çıkarın, hayvanı çözün ve kulak çubuklarını, sıcaklık probunu, nabız oksimetre klipsini ve deksmedetomidin iğnesini çıkarın.
  3. Seyreltilmiş atipamezole çözeltisinin 0.015 mg/kg'ını 25 G iğneli 1 mL şırınga kullanarak sıçanın arka bacak kasına enjekte edin (yani, 300 g'lık bir sıçan 0.09 mL alır).
  4. Sıçanı ev kafesine bir ısıtma yastığının üzerine geri yerleştirin ve hayvan ambülatör olana kadar izleyin.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Her dinlenme durumu taramasından sonra, kararlılık bağımsız bir bileşen analizi (ICA; Tamamlayıcı Dosyalar'dabulunan örnek komut dosyası) kullanılarak değerlendirilir. Şekil 6, dinlenme durumu taramalarından elde edilen bileşen çıkışlarına örnekler gösterir. Şekil 6a, yüksek stabiliteye sahip bir taramadan bir sinyal bileşeni gösterir. Mekansal olarak, bileşenin yüksek bölgeselliğe sahip olduğunu unutmayın. Uzays...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Hayvanın hem fiziksel hem de fizyolojik olarak stabilitesi, yüksek kaliteli dinlenme durumu verileri elde etmenin anahtarıdır. Bu protokol anestezinin dört farklı aşamasında ilerleyerek stabiliteyi elde eder. Hayvanın anestezinin bir sonraki aşamasına geçmeden önce belirlenen fizyolojik eşikleri karşılamış olması zorunludur; Bu yöntem fizyolojik otoregülatör mekanizmalara dayandığından, bireysel hayvanlar her anestezi aşamasında biraz farklı miktarlarda zaman gerektirebilir. Deneyimlerimize g?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Teşekkürler

Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüsü'nün (NIH) Ulusal Uyuşturucu Bağımlılığı Enstitüsü'nün (NIDA) [DJW, EDKS ve EMB, Alan I. Green'e verilen Grant R21DA044501 tarafından desteklendi ve DJW, Alan J. Budney'e Grant T32DA037202 ve Ulusal Alkol Bağımlılığı ve Alkolizm Enstitüsü (NIAAA) [Emily D. K. Sullivan'a Grant F31AA028413] tarafından desteklendi. Dartmouth'taki Raymond Sobel Psikiyatri Profesörü olarak Alan I. Green'in bağışlanan fonu aracılığıyla ek destek sağlandı.

Hanbing Lu, Nih Ulusal Uyuşturucu Bağımlılığı Enstitüsü Intramural Araştırma Programı tarafından desteklenmektedir.

Yazarlar merhum Alan I. Green'e teşekkür etmek ve teşekkür etmek istiyor. Birlikte ortaya çıkan bozukluklar alanına olan sarsılmaz bağlılığı, yazarlar arasında işbirliğinin kurulmasına yardımcı oldu. Kendisine büyük özlenecek olan akıl hocalığı ve rehberliği için teşekkür ederiz.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
9.4T MRIVarian/BrukerVarian upgraded with Bruker console running Paravision 6.0.1 software
Air-Oxygen MixerSechristModel 3500CP-G
Analysis of Functional NeuroImages (AFNI)NIMH/NIHVersion AFNI_18.3.03Freely available at: https://afni.nimh.nih.gov/
Animal CradleRAPID BiomedicalLHRXGS-00563rat holder with bite bar, nose cone and ear bars
Animal Physiology Monitoring & Gating SystemSAIIModel 1025MR-compatible system including oxygen saturation, temperature, respiration and fiber optic pulse oximetry add-on
Antisedan (atipamezole hydrochloride)Patterson Veterinary07-867-7097Zoetis, Manufacturer Item #10000449
Ceramic MRI-Safe ScissorsMRIequip.comMT-6003
ClippersPatterson Veterinary07-882-1032Wahl touch-up trimmer combo kit, Manufacturer Item #09990-1201
Dexmedesed (dexmedetomidine hydrochloride)Patterson Veterinary07-893-1801Dechra Veterinary Products, Manufacturer Item#17033-005-10
Digital Rectal Thermometer CoversMedlineMDS9608
FMRIB Software LibraryFMRIBMELODIC Version 3.15Freely available at: https://fsl.fmrib.ox.ac.uk/fsl/fslwiki
Heating PadCara Inc.Model 50
Hemostat forceps, straightKent ScientificINS750451-2
IsofluranePatterson Veterinary07-893-1389Patterson Private Label, Manufacturer Item #14043-0704-06
Isoflurane VaporizerVetEquip Inc.911103
Lab Tape, 3/4"VWR International89097-990
Needles, 23 gaugeBD305145plastic hub removed
Parafilm Laboratory FilmPatterson Veterinary07-893-0260Medline Industries Inc., Manufacturer Item #HSFHS234526A
Planar Surface CoilBrukerT126092cm
Polyethylene TubingBraintree ScientificPE50 50FT0.023" (inner diameter), 0.038" (outer diameter)
Puralube Ophthalmic OintmentPatterson Veterinary07-888-2572Dechra Veterinary Products, Manufacturer Item #211-38
Sprague Dawley RatsCharles River400 SAS SD
Sterile 0.9% Saline SolutionPatterson Veterinary07-892-4348Aspen Vet, Manufacturer Item #14208186
Sterile Alcohol Prep PadsMedlineMDS090735
Surgical Tape, 1" (3M Durapore)MedlineMMM15381Z3M Healthcare, "wide medical tape"
Surgical White Paper Tape, 1/2" (3M Micropore)MedlineMMM153003M Healthcare
Syringes, 1 mL w/ 25 gauge needleBD309626
Syringes, 3 mLBD309657
Vented induction and scavenging systemVetEquip Inc.9421022 liter induction chamber with active scavenging
411724omega flowmeter
931600scavenging cube, "vacuum"
921616nose cone, non-rebreathing

Referanslar

  1. Smitha, K. A., et al. Resting state fMRI: A review on methods in resting state connectivity analysis and resting state networks. The Neuroradiology Journal. 30 (4), 305-317 (2017).
  2. Gorges, M., et al. Functional connectivity mapping in the animal model: Principles and applications of resting-state fMRI. Frontiers in Neurology. 8, (2017).
  3. Paasonen, J., Stenroos, P., Salo, R. A., Kiviniemi, V., Gröhn, O. Functional connectivity under six anesthesia protocols and the awake condition in rat brain. NeuroImage. 172, 9-20 (2018).
  4. Pawela, C. P., et al. A protocol for use of medetomidine anesthesia in rats for extended studies using task-induced BOLD contrast and resting-state functional connectivity. NeuroImage. 46 (4), 1137-1147 (2009).
  5. Jonckers, E., et al. Different anesthesia regimes modulate the functional connectivity outcome in mice. Magnetic Resonance in Medicine. 72 (4), 1103-1112 (2014).
  6. Williams, K. A., et al. Comparison of alpha-chloralose, medetomidine and isoflurane anesthesia for functional connectivity mapping in the rat. Magnetic Resonance Imaging. 28 (7), 995-1003 (2010).
  7. Zhurakovskaya, E., et al. Global functional connectivity differences between sleep-like states in urethane anesthetized rats measured by fMRI. PloS One. 11 (5), 0155343(2016).
  8. Fukuda, M., Vazquez, A. L., Zong, X., Kim, S. -G. Effects of the α2-adrenergic receptor agonist dexmedetomidine on neural, vascular and BOLD fMRI responses in the somatosensory cortex. The European Journal of Neuroscience. 37 (1), 80-95 (2013).
  9. Brynildsen, J. K., et al. Physiological characterization of a robust survival rodent fMRI method. Magnetic Resonance Imaging. 35, 54-60 (2017).
  10. Lu, H., et al. Rat brains also have a default mode network. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (10), 3979-3984 (2012).
  11. Lu, H., et al. Low- but not high-frequency LFP correlates with spontaneous BOLD fluctuations in rat whisker barrel cortex. Cerebral Cortex. 26 (2), 683-694 (2016).
  12. Tsai, P. -J., et al. Converging structural and functional evidence for a rat salience network. Biological Psychiatry. 88 (11), 867-878 (2020).
  13. Murphy, K., Bodurka, J., Bandettini, P. A. How long to scan? The relationship between fMRI temporal signal to noise ratio and necessary scan duration. NeuroImage. 34 (2), 565-574 (2007).
  14. Birn, R. M., et al. The effect of scan length on the reliability of resting-state fMRI connectivity estimates. NeuroImage. 83, 550-558 (2013).
  15. Lu, H., et al. Synchronized delta oscillations correlate with the resting-state functional MRI signal. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (46), 18265-18269 (2007).
  16. Lu, H., et al. Registering and analyzing rat fMRI data in the stereotaxic framework by exploiting intrinsic anatomical features. Magnetic Resonance Imaging. 28 (1), 146-152 (2010).
  17. Cox, R. W. AFNI: software for analysis and visualization of functional magnetic resonance neuroimages. Computers and Biomedical Research. 29 (3), 162-173 (1996).
  18. Ash, J. A., et al. Functional connectivity with the retrosplenial cortex predicts cognitive aging in rats. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (43), 12286-12291 (2016).
  19. Hsu, L. -M., et al. Intrinsic insular-frontal networks predict future nicotine dependence severity. The Journal of Neuroscience. 39 (25), 5028-5037 (2019).
  20. Li, Q., et al. Resting-state functional MRI reveals altered brain connectivity and its correlation with motor dysfunction in a mouse model of Huntington's disease. Scientific Reports. 7, (2017).
  21. Lu, H., et al. Abstinence from cocaine and sucrose self-administration reveals altered mesocorticolimbic circuit connectivity by resting state MRI. Brain Connectivity. 4 (7), 499-510 (2014).
  22. Seewoo, B. J., Joos, A. C., Feindel, K. W. An analytical workflow for seed-based correlation and independent component analysis in interventional resting-state fMRI studies. Neuroscience Research. 165, 26-37 (2021).
  23. Broadwater, M. A., et al. Adolescent alcohol exposure decreases frontostriatal resting-state functional connectivity in adulthood. Addiction Biology. 23 (2), 810-823 (2018).
  24. Jaime, S., Cavazos, J. E., Yang, Y., Lu, H. Longitudinal observations using simultaneous fMRI, multiple channel electrophysiology recording, and chemical microiontophoresis in the rat brain. Journal of Neuroscience Methods. 306, 68-76 (2018).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

N robilimSay 174

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır