Sağlam Periferik Sinir Sinyallerinin Amplifikasyonu için Kas Manşeti Rejeneratif Periferik Sinir Arayüzü

Özet

Bu yazıda, Kas Manşeti Rejeneratif Periferik Sinir Arayüzü (MC-RPNI) adı verilen biyolojik periferik sinir arayüzü geliştirmek için yenilikçi bir yöntem sunulmaktadır. Bu cerrahi yapı, motor niyetin doğru tespitini ve dış iskelet cihazlarının potansiyel kontrolünü kolaylaştırmak için ilişkili periferik sinirin motor efferent sinyallerini yükseltebilir.

Özet

Robotik dış iskeletler, ekstremite güçsüzlüğü olan bireyler için fonksiyonel restorasyon için umut verici bir yöntem olarak rehabilitasyon alanında son zamanlarda beğeni kazanmıştır. Bununla birlikte, kullanımları büyük ölçüde araştırma kurumlarıyla sınırlı kalmakta ve motor algılama yöntemleri güvenilmez kaldığı için sıklıkla statik ekstremite desteği aracı olarak çalışmaktadır. Periferik sinir arayüzleri bu eksikliğe potansiyel bir çözüm olarak ortaya çıkmıştır; Bununla birlikte, doğası gereği küçük genlikleri nedeniyle, bu sinyallerin arka plan gürültüsünden ayırt edilmesi zor olabilir ve genel motor algılama doğruluklarını düşürür. Mevcut arayüzler abiyotik materyallere dayandığından, zamanla yabancı cisim doku reaksiyonu ile birlikte doğal malzeme parçalanması meydana gelebilir ve bu da doğruluklarını daha da etkileyebilir. Kas Manşeti Rejeneratif Periferik Sinir Arayüzü (MC-RPNI), bu belirtilen komplikasyonların üstesinden gelmek için tasarlanmıştır. Sağlam bir periferik sinire çevresel olarak sabitlenmiş bir serbest kas grefti segmentinden oluşan yapı, zamanla içerdiği sinir tarafından yenilenir ve reinnerve olur. Sıçanlarda, bu yapı, bileşik kas aksiyon potansiyellerinin (CMAP'ler) üretilmesi yoluyla periferik bir sinirin motor efferent aksiyon potansiyellerini normal değerin 100 katına kadar yükseltme yeteneğini göstermiştir. Bu sinyal amplifikasyonu, motor niyetinin yüksek doğrulukta algılanmasını kolaylaştırır ve potansiyel olarak dış iskelet cihazlarının güvenilir bir şekilde kullanılmasını sağlar.

Giriş

Sadece Amerika Birleşik Devletleri'nde, yaklaşık 130 milyon insan nöromüsküler ve kas-iskelet sistemi bozukluklarından etkilenmekte ve yıllık ekonomik etkide 800 milyar doların üzerinde ^1,2 ile sonuçlanmaktadır. Bu bozukluk grubu tipik olarak sinir sistemlerindeki, nöromüsküler kavşaktaki veya kasın içindeki patolojiye sekonder^{olarak 3}. Patolojik kökenlerin çeşitliliğine rağmen, çoğunluk bir dereceye kadar ekstremite zayıflığını paylaşır ^1,3. Ne yazık ki, bu zayıflık, özellikle şiddetli travma ^4,5,6 ortamında^, nöral ve kas dokusu rejenerasyonundaki sınırlamalar göz önüne alındığında genellikle kalıcıdır.

Ekstremite zayıflığı tedavi algoritmaları klasik olarak rehabilitasyon ve destekleyici önlemlere odaklanmış, genellikle kalan sağlam uzuvların (bastonlar, tekerlekli sandalyeler, vb.) ⁷. Bununla birlikte, bu strateji, zayıflığı tek bir ekstremiteyle sınırlı olmayanlar için yetersiz kalmaktadır. Robotik teknolojilerdeki son yeniliklerle birlikte, ekstremite zayıflığı 8,9,10,11,12,13 ile yaşayanlara ekstremite işlevselliğini geri kazandıran gelişmiş dış iskelet cihazları geliştirilmiştir. Bu robotik dış iskeletler genellikle hareketin başlatılmasına ve sonlandırılmasına veya uzuv pozisyonunun korunmasına yardımcı olabilen, kullanıcı için bireysel olarak uyarlanabilen farklı miktarda kuvvet sağlayan güçlü, giyilebilir cihazlardır 8,9,10,11,12,13 . Bu cihazlar, kullanıcıya motor yardımını nasıl sağladıklarına bağlı olarak pasif veya aktif olarak sınıflandırılır: aktif cihazlar, kullanıcıya gücü artıran elektrikli aktüatörler içerirken, pasif cihazlar, gerektiğinde kullanıcıya geri vermek için kullanıcının hareketlerinden enerji depolar¹⁴. Aktif cihazlar bir kullanıcının güç yeteneklerini artırma yeteneğine sahip olduğundan, bu cihazlar ekstremite zayıflığı ayarında çok daha sık kullanılır^[14].

Bu popülasyondaki motor niyeti belirlemek için, modern dış iskeletler genellikle distal ekstremite kaslarının elektromiyografisinden (EMG)^8,15,16,17 veya beynin yüzey elektroensefalografisinden (sEEG) üretilen örüntü tanıma algoritmalarına dayanır ^18,19,20 . Bu algılama yöntemlerinin vaadine rağmen, her iki seçenek de bu cihazların yaygın kullanımını engelleyen önemli sınırlamalara sahiptir. EEG, mikrovolt seviyesindeki sinyalleri transkraniyal olarak^18,19,20 olarak algıladığından^, eleştiriler sıklıkla bu sinyalleri arka plan gürültüsünden ayırt edememeye odaklanır ²¹. Arka plan gürültüsü istenen kayıt sinyaline benzer olduğunda, bu düşük sinyal-gürültü oranları (SNR'ler) üretir ve yanlış motor algılama ve sınıflandırma^22,23'e neden olur. Doğru sinyal algılama ayrıca kaba / kalın saçların varlığından, kullanıcı aktivitesinden ve hatta terleme 22,24'ten önemli ölçüde etkilenebilen kararlı, düşük empedanslı kafa derisi teması ^21'e dayanır. Buna karşılık, EMG sinyalleri genlikte birkaç büyüklükte daha büyüktür ve daha fazla motor sinyali algılama doğruluğunu kolaylaştırır^15,18,25. Bununla birlikte, yakındaki kaslar sinyali kirletebileceğinden, cihaz tarafından kontrol edilebilen serbestlik derecelerini^{azaltarak 16,17,25} ve derin kas hareketini tespit edememe ^25,26,27,28 olduğu için bunun bir bedeli vardır. En önemlisi, EMG, önemli kas uzlaşması ve doku^29'un tamamen yokluğu durumunda bir kontrol yöntemi olarak kullanılamaz.

Robotik dış iskeletlerin gelişimini ilerletmek için, amaçlanan kullanıcının motor niyetinin tutarlı ve doğru bir şekilde algılanması gerekir. Periferik sinir sistemini kullanan arayüzler, nispeten basit erişimleri ve fonksiyonel seçicilikleri göz önüne alındığında, umut verici bir arayüz tekniği olarak ortaya çıkmıştır. Mevcut periferik sinir arayüzleme yöntemleri invaziv veya non-invaziv olabilir ve tipik olarak üç kategoriden birine girer: ekstranöral elektrotlar 30,31,32,33, intrafasiküler elektrotlar^34,35,36 ve penetran elektrotlar^37,38,39,40 . Periferik sinir sinyalleri genellikle mikrovolt seviyesinde olduğundan, bu sinyalleri benzer genlikteki arka plan gürültüsünden ayırt etmek zor olabilir^41,42, bu da arayüzün genel motor algılama doğruluğu yeteneklerini azaltır. Bu düşük sinyal-gürültü (SNR) oranları, cihazın^{bozulmasından 39,43} veya cihazın etrafındaki skar dokusu üreten yerel yabancı cisim reaksiyonundan ve / veya lokal aksonal dejenerasyondan ^37,44 kaynaklanan kötüleşen elektrot empedansı ^43'e bağlı olarak zamanla kötüleşir. Bu eksiklikler genellikle reoperasyon ve yeni bir periferik sinir arayüzünün implantasyonu ile çözülebilse de, yabancı cisimle ilişkili reaksiyonlar meydana gelmeye devam edeceği için bu uzun vadeli bir çözüm değildir.

Periferik sinirlerin abiyotik arayüzlerle etkileşiminden kaynaklanan bu lokal doku reaksiyonlarını önlemek için, biyolojik bir bileşen içeren bir arayüz gereklidir. Bu eksikliği gidermek için, Rejeneratif Periferik Sinir Arayüzü (RPNI), transekte periferik sinirleri, protez cihazlarla amputasyonlu kişilerin kalıntı uzuvlarına entegre etmek için geliştirilmiştir^45,46,47,48. RPNI'nin üretimi, transekte bir periferik sinirin otolog serbest kas greftinin bir segmentine cerrahi implantasyonunu içerir ve zamanla revaskülarizasyon, rejenerasyon ve reinnervasyon meydana gelir. RPNI, mili-volt seviyesinde bileşik kas aksiyon potansiyellerinin (CMAP'ler) üretilmesi sayesinde, içerdiği sinirin mikro-volt seviye sinyalini birkaç büyüklükte yükseltebilir ve motor niyetinin ^45,48,49'un doğru bir şekilde algılanmasını kolaylaştırır. RPNI'de son on yılda, hem hayvan^50,51 hem de insan⁴⁷ denemelerinde efferent motor sinir sinyallerinin yükseltilmesi ve iletilmesinde kayda değer bir başarı ile kayda değer bir başarı elde edilmiş^, yüksek hassasiyetli protez cihaz kontrolünü çoklu serbestlik dereceleriyle kolaylaştırmıştır.

Ekstremite zayıflığı olan ancak sağlam periferik sinirleri olan bireyler, dış iskelet cihazlarını kontrol etmek için periferik sinir arayüzleri aracılığıyla motor niyetin yüksek doğrulukta saptanmasından benzer şekilde yararlanacaktır. RPNI, amputasyonlu kişilerde olduğu gibi transekte periferik sinirlerle entegrasyon için geliştirildiğinden, cerrahi modifikasyonlar gerekliydi. RPNI ile ilgili deneyimlerden yola çıkarak, Kas Manşeti Rejeneratif Periferik Sinir Arayüzü (MC-RPNI) geliştirilmiştir. RPNI'de olduğu gibi benzer bir serbest kas grefti segmentinden oluşan, bunun yerine sağlam bir periferik sinire çevresel olarak sabitlenir (Şekil 1). Zamanla, kollateral aksonal filizlenme, bu efferent motor sinir sinyallerinin^{büyütülmesi ve birkaç} büyüklük sırası daha büyük olan EMG sinyallerine çevrilmesi yoluyla yenilenir ve yeniden innerve olur. MC-RPNI biyolojik kökenli olduğundan, şu anda kullanımda olan periferik sinir arayüzleri ile ortaya çıkan kaçınılmaz yabancı cisim reaksiyonunu önler⁵². Ayrıca, MC-RPNI, daha önce RPNI'lerde^49'da gösterildiği gibi, distal olarak disseke edilmiş sinirlere önemli çapraz konuşma olmadan bireysel kaslara yerleştirilebildikleri için aynı anda birden fazla serbestlik derecesini kontrol etme yeteneği verir. Son olarak, MC-RPNI, proksimal sinire yerleştirildiği için distal kas fonksiyonundan bağımsız olarak çalışabilir. Mevcut periferik sinir arayüzlerine göre avantajları göz önüne alındığında, MC-RPNI, güvenli, doğru ve güvenilir bir dış iskelet kontrolü yöntemi sağlama konusunda önemli bir umut vaat etmektedir.

Protokol

Tüm hayvan prosedürleri ve deneyleri, Michigan Üniversitesi Kurumsal Bakım ve Hayvan Kullanımı Komitesi'nin (IACUC) onayı ile gerçekleştirilmiştir. 3-6 aylıkken erkek ve dişi Fischer F344 ve Lewis sıçanları (~ 200-300 g) deneylerde en sık kullanılanlardır, ancak herhangi bir suş teorik olarak kullanılabilir. Otolog kas greftleri yerine donör sıçanlar kullanılıyorsa, donör sıçanlar deneysel suşa izojenik olmalıdır. Sıçanların ameliyat öncesi ve sonrası yiyecek ve suya serbestçe erişmelerine izin verilir. Terminal sonlanım noktası değerlendirmelerini takiben, derin anestezi altında intrakardiyak potasyum klorür enjeksiyonu ve ardından ikincil bir bilateral pnömotoraks yöntemi ile ötenazi yapılır.

1. Sıçanın deneysel olarak hazırlanması

1. Bir indüksiyon odasında 0.8-1.0 L / dak'da oksijende% 5'lik bir izofluran çözeltisi kullanarak deneysel sıçanı anestezi altına alın. Yeterli anestezi sağlandıktan ve kornea refleksinin yokluğunda doğrulandıktan sonra, sıçanı anestezinin sürdürülmesi için% 1.75 -% 2.25'e düşürülmüş izofluran ile bir solunum burun konisi üzerine yerleştirin.
2. Peri- ve postoperatif analjezi için omuz bıçakları arasındaki deri altı düzlemde 27 G iğne ile 0.2 mL steril salin içine 0.02-0.03 mL Carprofen (50 mg / mL) çözeltisi enjekte edin.
3. Anestezi uygulanırken kornea ülserlerini önlemek için her iki göze de steril göz merhemi uygulayın.
4. Elektrikli bir tıraş bıçağı kullanarak, kalça ekleminden, uyluk üzerinden ve pençenin sırt yüzeyine uzanan bilateral alt ekstremitelerin lateral kısmını tıraş edin.
5. Cerrahi bölgeyi önce bir alkol hazırlama pedi ile silerek, ardından povidon-iyot çözeltisi uygulaması ile sterilize edin, artık povidon-iyot çözeltisini çıkarmak için yeni bir alkol hazırlama pedi ile son bir temizlik ile sona erdirin. Steriliteyi korumak için bu alternatif temizleme işlemini üç kez tekrarlayın.
   NOT: Bu dermatolojik tahriş edici olabilir; çözümün çoğunluğunun ortadan kaldırılmasını sağlayın.

2. Kas greftinin hazırlanması

1. Sıçanı, vücut ısısı izleme için tercih edilen ağız içi vücut ısısı probu ile cerrahi bir mikroskobun altındaki bir ısıtma yastığına yerleştirin. İzofluranı% 1.75-2.25'te ve oksijeni 0.8-1.0 L / dak'da tutun.
2. İstenilen donör arka bacağın ön yönü boyunca, ayak bileğinin hemen üstünden dizin hemen altına kadar uzanan uzunlamasına bir kesi yapın #15 neşter ile.
3. Altta yatan kas sistemini ve ayak bileği eklemine sadece proksimal olan distal tendonları ortaya çıkarmak için keskin iris makası kullanarak altta yatan deri altı dokusundan diseksiyon yapın. Tibialis anterior (TA) kasların en büyüğü ve en ön kısmıdır; ekstansör digitorum longus (EDL) kası bu kasın hemen derin ve arka tarafında bulunabilir. EDL kasını ve distal tendonunu çevredeki kas yapısından izole edin.
4. Distal tendonun altına forseps veya iris makasının her iki çatalını da ayak bileği ekleminin hemen yakınına yerleştirerek doğru tendonun izolasyonunu sağlayın. Forseps veya iris makası açarak tendon üzerinde yukarı doğru baskı uygulayın. Bu hareket, tüm ayak parmaklarının aynı anda aynı anda uzamasını sağlamalıdır. İzole ayak bileği dorsifleksiyonu, ayak bileği eversiyonu, veya tek ayak parmağı dorsifleksiyonu meydana gelirse, yanlış tendon izole edilmiştir.
5. EDL kasının distal tenotomisini ayak bileği seviyesinde keskin iris makası ile gerçekleştirin ve kası, tendinöz kökenine doğru yakın çalışan çevre dokulardan arındırılmış olarak diseke edin.
6. Proksimal tendon görselleştirildikten sonra, grefti serbest bırakmak için keskin iris makası kullanarak proksimal tenotomi yapın.
7. Kas greftinin her iki tendinöz ucunu kesin ve keskin iris makası ile istenen uzunlukta kesin.
   NOT: 8-13 mm ölçülerindeki greftler başarı ile kullanılmıştır; Bununla birlikte, kullanılan en yaygın uzunluk 10 mm'dir.
8. Kas greftinin bir tarafında, sinirin kas grefti içine yerleştirilmesini kolaylaştırmak ve sinirin endomisyum ile temasını sağlamak için kesilen tüm uzunluk boyunca uzunlamasına bir kesi yapın.
9. Hazırlanan kas greftini, doku kurumasını önlemek için tuzlu suyla nemlendirilmiş bir gazlı bez içine yerleştirin.
10. Donör bölgenin üzerindeki cildi 4-0 kromik dikişle koşu şeklinde kapatın.

3. Ortak peroneal sinir izolasyonu ve hazırlığı

1. Siyatik çentikten ~ 5 mm'lik bir çizgiden uzanacak ve diz ekleminin hemen altına kadar uzanacak olan cerrahi insizyonu işaretleyin. Bu işaretlemenin, aşağıda palpe edilebilen femurdan daha düşük ve açılı olduğundan emin olun.
2. 15 numaralı bir bıçakla işaretli kesi çizgisi boyunca deri ve deri altı dokuları kesin. Altta yatan biseps femoris fasyasını dikkatlice kesin, siyatik sinir hemen aşağıda yattığı için kasın tüm derinliği boyunca uzanmamaya özen gösterin.
3. Künt uçlu küçük makas veya hemostat kullanarak, biseps femoris kasından dikkatlice diseke edin.
   NOT: Siyatik sinir, bisepslerin altında yatan bu boşlukta hareket eder ve ciltte işaretlenen kesi ile yaklaşık olarak aynı yöne yönlendirilir. Üç önemli siyatik sinir dalı vardır: sural (sinirlerin en arka ve en küçüğü), tibial (tipik olarak en ön, ancak bu sinir her zaman diz ekleminin derinliklerine dalar) ve ortak peroneal (tipik olarak tibial ve sural arasında bulunur, her zaman diz ekleminin üzerinde hareket eder).
4. Ortak peroneal (CP) siniri tanımlayın ve bir çift mikro forseps ve mikro makas kullanarak onu çevreleyen sinirlerden dikkatlice izole edin. Çevreleyen bağ dokusunu sinirin orta 2 cm'sinden çıkarın. Bu süreçte CP sinirini forseps ile ezmemeye dikkat edin, çünkü ezilme yaralanması son nokta sonuçlarını değiştirebilir.
5. Serbest bırakılmış CP sinirinin en merkezi kısmı üzerinde, kas greftinin istenen uzunluğuna uyan sinirin uzunluğu boyunca epinöryumun% 25'ini çıkararak bir epinöryal pencere gerçekleştirin.
6. Bunu gerçekleştirmek için proksimal epinöryumu mikro-forsepslerle tutun, mikro diseksiyon makası ile hemen altta yatan epinöryumu kesin ve sinir boyunca distal olarak hareket eden epinöryumun ~% 25'ini çıkarın. Bu segmenti tek parça halinde çıkarmaya özen gösterin, çünkü birden fazla girişim düzensiz epinöryal çıkarmaya neden olabilir ve sinir hasarı riskini artırabilir.
   NOT: Epinöroniyumun altında yatan sinir dokusu kaz benzeri bir dokuya sahip olacaktır; Bu sinir kalitesine dikkat çekmek, doğru doku düzleminin çıkarılmasını sağlar.

4. MC-RPNI yapı imalatı

1. Kas greftini salinle nemlendirilmiş gazlı bezden çıkarın ve epinöryal pencerenin oluşturulduğu CP sinirinin orta kısmının altına yerleştirin. Siniri 180 ° döndürün, böylece epinöryal pencere bölümü sağlam kaslarla temas eder ve nihai dikiş çizgisinin altında kalmaz.
2. 8-0 kullanma naylon sütür, epinöryumu endomiyuma sabitlemek için basit kesilmiş sütürler kullanarak CP sinirinin epinöryumunu hem proksimal hem de distal olarak adım 2.8'de oluşturulan oluk içindeki kas greftine dikiştirin.
   NOT: Bu dikişleri yerleştirin ve kasın normal dinlenme uzunluğunda olmasını sağlayın. Kasın çok fazla gerilmesi veya sıkıştırılması, daha sonra yenilenme ve sinyal verme yeteneklerini etkileyebilir.
3. Şimdi sabitlenmiş siniri çevreleyen kas greftinin kenarlarını çevresel olarak sarın ve basit bir şekilde kesilmiş 8-0 kullanarak dikiş dikin naylon dikişler (uzunluğa bağlı olarak ~ 4-6).
4. Hemostaz sağlandıktan sonra, yapı üzerindeki biseps femoris fasyasını koşu tarzında 5-0 kromik sütür ile kapatın.
5. Üstteki cildi 4-0 kromik dikişle koşu tarzında kapatın.
6. Cerrahi bölgeyi bir alkol hazırlık pedi ile temizleyin ve antibiyotik merhem uygulayın.
7. İnhalasyonel anesteziyi sonlandırın ve sıçanı kafes arkadaşlarından izole edilmiş temiz bir kafese yerleştirin ve yiyecek ve su ad lib ile iyileşmesine izin verin.
8. Sıçan uygun şekilde iyileştikten sonra, kafes arkadaşlarıyla birlikte temiz bir kafese geri yerleştirin.
   NOT: Bu yapılar, yeterli sinir sinyali amplifikasyonu üretmek için en az üç aylık olgunlaşma gerektirir.

Sonuçlar

MC-RPNI cerrahi fabrikasyonu, sıçanların cerrahi anesteziden çıkmadan kurtulamaması veya ameliyattan sonraki bir hafta içinde bir enfeksiyon geliştirmemesi durumunda perioperatif bir başarısızlık olarak kabul edilir. Önceki araştırmalar, 3 aylık bir olgunlaşma periyodunun bu^{yapıdan 42,45,48,49} güvenilir sinyal amplifikasyonu ile sonuçlanacağını göstermiştir. O zaman vey...

Tartışmalar

MC-RPNI, bir dış iskelet cihazını doğru bir şekilde kontrol etmek için sağlam, periferik bir motor sinirin efferent aksiyon potansiyellerinin amplifikasyonuna izin veren yeni bir yapıdır. Spesifik olarak, MC-RPNI, önemli kas hastalığının ve / veya EMG sinyallerinin kaydedilemediği kas yokluğunun neden olduğu ekstremite zayıflığı olan bireylere özel bir fayda sağlar. Zaten tehlikeye girmiş kas fonksiyonunu azaltmak, bu popülasyonda yıkıcı olacaktır; Bununla birlikte, MC-RPNI, distal olarak in...

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
#15 Scalpel	Aspen Surgical, Inc	Ref 371115	Rib-Back Carbon Steel Surgical Blades (#15)
2-N-thin film load cell (S100)	Strain Measurement Devices, Inc	SMD100-0002	Measures force generated by the attached muscle
4-0 Chromic Suture	Ethicon	SKU# 1654G	P-3 Reverse Cutting Needle
5-0 Chromic Suture	Ethicon	SKU# 687G	P-3 Reverse Cutting Needle
8-0 Monofilament Suture	AROSurgical	T06A08N14-13	Black polyamide monofilament suture on a threaded tapered needle
Experimental Rats	Envigo	F344-NH-sd	Rats are Fischer F344 Strain
Fine Forceps - mirror finish	Fine Science Tools	11413-11	Fine tipped forceps with mirror finish ideal for handling delicate structures like nerves
Fluriso (Isofluorane)	VetOne	13985-528-40	Inhalational Anesthetic
Force Measurement Jig	Red Rock	n/a	Custom designed force measurement jig that allows for immobilization of hindlimb to allow for accurate muscle force recording
MATLAB software	Mathworks, Inc	PR-MATLAB-MU-MW-707-NNU	Calculates active force for each recorded force trace from passive and total force measurements
Nicolet Viasys EMG EP System	Nicolet	MFI-NCL-VIKING-SELECT-2CH-EMG	Portable EMG and nerve signal recording system capable of simultaneous 2 channel recordings from nerve and/or muscle
Oxygen	Cryogenic Gases	UN1072	Standard medical grade oxygen canisters
Potassium Chloride	APP Pharmaceuticals	63323-965-20	Injectable form, 2 mEq/mL
Povidone Iodine USP	MediChoice	65517-0009-1	10% Topical Solution, can use one bottle for multiple surgical preps
Puralube Vet Opthalmic Ointment	Dechra	17033-211-38	Corneal protective ointment for use during procedure
Rimadyl (Caprofen)	Zoetis, Inc.	NADA# 141-199	Injectable form, 50 mg/mL
Stereo Microscope	Leica	Model M60	User can adjust magnification to their preference
Surgical Instruments	Fine Science Tools	Various	User can choose instruments according to personal preference or from what is currently available in their lab
Triple Antibiotic Ointment	MediChoice	39892-0830-2	Ointment comes in sterile, disposable packets
Vannas Spring Scissors - 2mm cutting edge	Fine Science Tools	15000-04	Curved micro-dissection scissors used to perform the epineurial window
VaporStick 3	Surgivet	V7015	Anesthesia tower with space for isofluorane and oxygen canister
Webcol Alcohol Prep	Coviden	Ref 6818	Alcohol prep wipes; use a new wipe for each prep