Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Temsili Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Kontrol noktası inhibitörleri, kansere karşı savaşa yönelik tedavilerin geliştirilmesinde önemli hedeflerdir. Bu rapor, PD-1/PDL1 kompleks oluşumunu bloke eden nötralize edici poliklonal antikor üretimini indükleyen yeni bir PDL1 peptit bazlı kanser aşısı olan PDL1-Vaxx'ı tanıtmaktadır. Bu çalışma aynı zamanda bu aktiviteyi analiz etmek için floresan boncuk bazlı bir tahlilin geliştirilmesini ve test edilmesini de detaylandırmaktadır.

Özet

Kontrol noktası reseptörlerinin (PD-1, PD-L1 ve CTLA-4) monoklonal antikorlarla inhibisyonu, kanser hastalarının tedavisi için yapılan klinik çalışmalarda büyük fayda sağlamış ve modern kanser immünoterapisinde temel bir yaklaşım haline gelmiştir. Bununla birlikte, hastaların sadece bir alt kümesi kontrol noktası monoklonal antikor immünoterapisine yanıt verir. Bu nedenle, kansere karşı yeni terapötik stratejiler geliştirmek aciliyet arz etmektedir. Yeni bir B-hücresi peptit epitopu PDL1 (programlanmış ölüm ligandı 1) kanser aşısı, 130-147 amino asitleri bir GPSL bağlayıcı aracılığıyla MVF peptidine ("karışık" T hücresi kızamık virüsü füzyon proteini) bağlanmıştır. Klinik öncesi testler, bu PDL1 aşısının (PDL1-Vaxx) hayvanlarda yüksek immünojenik antikorları etkili bir şekilde uyardığını göstermiştir. PDL1-Vaxx ile aşılanan hayvanlar, çeşitli hayvan kanseri modellerinde tümör yükünün azaldığını ve hayatta kalma oranlarının uzadığını göstermektedir. Etki mekanizmaları, aşı kaynaklı antikorların tümör hücresi proliferasyonunu inhibe ettiğini, apoptozu indüklediğini ve PD-1/PD-L1 etkileşimini bloke ettiğini göstermektedir. Bu makale, PD-1/PD-L1 etkileşimini ve PDL1-Vaxx'a karşı ortaya çıkan anti-PDL1 antikorları tarafından blokajını değerlendirmek için çift raportörlü bir akış analiz sistemi kullanan manyetik boncuk tabanlı bir testi tanıtmaktadır.

Giriş

Bağışıklık sisteminin T hücrelerinde, B hücrelerinde ve hücre içi kontrol noktalarında, sinyal yolları bağışıklık aktivitelerini düzenler. Bazı kanser hücreleri, bağışıklık fonksiyonunu inhibe eden ve neoplastik sağkalımı ve çoğalmayı destekleyen kontrol noktası hedeflerini uyararak kendilerini bağışıklık saldırısından korur. Kontrol noktası inhibisyonu ile onkolojik immünoterapi, sinyal kontrol noktalarını hedeflemek ve bloke etmek için antikorlar kullanır ve böylece bağışıklık sisteminin anti-neoplastik fonksiyonlarını geri yükler 1,2,3. Son derece etkili anti-kanser tedavileri şu anda programlanmış ölüm proteini 1'i (PD-1)4 hedefleyen monoklonal antikorlar nivolumab ve programlanmış ölüm ligandı 1'i (PD-L1)5 hedefleyen atezolizumab'ı içermektedir. Bu yaklaşım, kanser hastalarının tedavisinde büyük klinik başarı göstermiştir. Bununla birlikte, mevcut kontrol noktası inhibisyon stratejilerinin klinik faydası, özellikle tek ajan tedavisinde, advers olaylar ve tedavi direnci ile hafifletilmektedir6. Kanser tedavisinde immünoterapi ve daha düşük toksisiteye sahip daha etkili terapötik stratejilerin bir kombinasyonuna acilen ihtiyaç vardır 1,3,6.

Son 30 yılda, Dr. Kaumaya'nın laboratuvarı, bazıları devam eden klinik deneylerdeolan kanser tedavisi için peptit kanser aşıları ve peptit taklitle ilgili ajanlar geliştirmiştir 1,2,7,8,9,10,11,12,13,14 . Örneğin, HER-2 kombinasyon immünoterapisi ile B-Vaxx, klinik çalışmalarda metastatik ve/veya tekrarlayan katı tümörlere karşı hasta yararları göstermiştir12. Laboratuvarın en yeni kanser aşıları, klinik öncesi çalışmalarda, özellikle kombinasyon tedavisinde büyük avantajlar gösteren PD1-Vaxx 2,13 ve PDL1-Vaxx14'tür. PD1-Vaxx, ABD ve Avustralya'da doz yükseltme klinik denemelerini tamamladı. PD1-Vaxx, Mayıs 2023'te başlayacak Faz 1b denemesinde atezolizumab ile birleştirilecek. Bu rapor, PDL1-Vaxx ile indüklenen antikorların PD-1/PD-L1 etkileşimini bloke etme yeteneğinin değerlendirilmesine odaklanmaktadır.

PDL1-Vaxx kanser aşısı, bir GPSL peptit bağlayıcısı aracılığıyla rastgele T hücresi kızamık virüsü füzyonu (MVF) peptidine bağlı PD-L1 amino asitleri 130-147 içeren yeni bir B hücresi peptit epitop aşısıdır. Klinik öncesi çalışmalar, PDL1-Vaxx'ın çeşitli hayvan modellerinde anti-kanser antikor üretimini uyarmada yüksek oranda immünojenik olduğunu, sağkalımı uzattığını ve tümör yükünü azalttığını göstermiştir14. PD-L1 peptidine karşı üretilen bu antikorlar, PD1 / PD-L1 etkileşimini başarılı bir şekilde bloke edebilir ve böylece anti-neoplastik aktiviteye neden olabilir. Bu rapor, PDL1-Vaxx ile indüklenen antikorlar tarafından PD1/PD-L1 kompleks oluşumunun blokajını, bir akış sitometri cihazı üzerinde çift raportör okumalı manyetik boncuk tabanlı bir format kullanarak analiz eden bir test sunmaktadır.

Protokol

1. Deneysel hazırlık

NOT: Bu adımda bahsedilen tüm reaktiflerin/ekipmanın ayrıntıları Malzeme Tablosunda listelenmiştir.

  1. Rekombinant insan PD-1 (rhPD-1; polihistidin etiketli) elde edin. Kullanmadan önce liyofilize rhPD1'i steril filtrelenmiş fosfat tamponlu salin (PBS), pH 7.4 ile sulandırın.
  2. Biyotinillenmiş rekombinant insan PD-L1 (rhPD-L1) elde edin. Kullanmadan önce liyofilize rhPD-L1'i steril deiyonize su ile sulandırın.
  3. Streptavidin konjuge R-fikoeritrin tespit reaktifi (SAPE) elde edin. Işıktan korunan tüm SAPE solüsyonlarını buzdolabı sıcaklıklarında (yani 2-8 °C) saklayın.
  4. Floresanla boyanmış manyetik mikro küreler (6.5 μm çapında, gömülü manyetitli polistiren) ve Boncuk Bağlantı Kiti15 (kullanılıyorsa, Malzeme Tablosuna bakın) elde edin. Mikrokürelere kovalent bağlanma, sülfo-NHS (sülfo-N-hidrosüksinimid) ve EDC (N-[3-dimetilaminopropil]-N'-etilkarbodiimid hidroklorür) gerektirir.
    NOT: Manyetik boncuk setleri, farklı boncuk setlerinden16 tanımlamaya ve ayırt etmeye izin veren 500 benzersiz floresan etiketten herhangi biriyle mevcuttur. Boncuklar, 2,5 × 106 boncuk/mL ve 12,5 × 106 boncuk/mL stok konsantrasyonlarında sunulmaktadır. Boncukları ışıktan koruyarak buzdolabı sıcaklıklarında (yani 2-8 °C) saklayın. Boncuk süspansiyonlarını dondurmayın.
  5. Pozitif ve negatif kontrol antikorları ve Brilliant Violet 421 (BV421) etiketli ikincil tespit antikorları elde edin. Tüm floresan konjuge molekülleri ışıktan koruyarak saklayın.
  6. Tüm bağlanma reaksiyonlarını düşük proteinli bağlanma tüplerinde ve tüm tahlil reaksiyonlarını düşük proteinli bağlanma, yuvarlak tabanlı, 96 oyuklu mikrotitre plakalarında gerçekleştirin. Tahlil inkübasyon adımları için plakaları tek kullanımlık yapışkan folyo veya plastik 96 oyuklu mikroplaka kapakları ile kapatın. Tahlil yıkama adımları sırasında boncukları hareketsiz hale getirmek için manyetik bir plaka ayırıcı kullanın.
    NOT: Çift raportörlü akış analiz sisteminin üç lazeri vardır: (1) boncuk setine özgü floresansı tanımlayan ve ölçen bir lazer (Sınıflandırma Kanalı); (2) hedefe özgü fikoeritrin (PE) floresansını tespit eden ve ölçen (Reporter Channel 1; 532 nm uyarma, "turuncu" 565-585 nm emisyon); ve (3) ikinci bir hedef analitin hedefe özgü BV421 floresansını tespit eden ve ölçen bir kanal (Reporter Channel 2; 405 nm uyarma, "mavi" 421-441 nm emisyon).

2. rhPD-1'in manyetik boncuklara bağlanması

NOT: Bağlanacak protein, sığır serum albümini (BSA), sodyum azid, glisin, gliserol, tris (hidroksi-metil) aminometan (Tris) veya amin içeren katkı maddeleri içermemeli ve pH 7.4'te PBS'de süspanse edilmelidir. Burada açıklanan tüm gerekli reaktifleri ve tamponları içeren ticari bir bağlantı kiti mevcuttur (Malzeme Tablosuna bakın).

  1. Tüm kaplin reaktiflerini buzdolabından çıkarın ve 20-30 dakika oda sıcaklığına (RT, 18-22 °C) dengelenmelerini bekleyin.
  2. Ürün bilgi sayfasına göre kısa bir süre girdap, sonikasyon veya döndürme (15-30 rpm'de 15 dakika) yaparak stok mikrokürelerini yeniden askıya alın.
  3. 1 × 106 manyetik boncukları 1.5 mL düşük proteinli bağlayıcı mikrosantrifüj tüpüne aktarın (Malzeme Tablosuna bakın).
  4. 100 μL Aktivasyon Tamponu15 ile boncukları yıkayın: 0.1 M NaH2PO4 (monobazik), pH 6.2.
    NOT: Birleştirme, alternatif bir aktivasyon ve birleştirme tamponu olarak 0.1 M 2-morfolinoetansülfonik asit (MES), pH 6.0 içeren önceden yapılandırılmış bir Birleştirme Kiti kullanılarak da gerçekleştirilebilir (Malzeme Tablosuna bakın).
    1. Boncukları içeren tüpü 1-2 dakika manyetik bir ayırıcıya yerleştirin.
      NOT: Alternatif olarak, boncuklar 1-2 dakika boyunca ≥8.000 × g'da mikrosantrifüjleme ile ayrılabilir.
    2. Süpernatanı, tüp hala manyetik ayırıcıya yerleştirilmişken, mıknatısla hareketsiz hale getirilmiş veya peletlenmiş boncuklardan bir pipetle aspire edin.
    3. Mikrosantrifüj tüpünü mıknatıstan çıkarın ve 80 μL Kaplin Tamponu ekleyin ( Malzeme Tablosuna bakın).
    4. Reaksiyon tüpünü nazikçe vorteksleyin ve boncukları dağıtmak için 20 saniye boyunca sonikasyon yapın.
  5. Boncukları sulfo-NHS ve EDC ile etkinleştirin.
    NOT: Sülfo-NHS'nin stok çözeltisi, Aktivasyon Tamponunda çözülmüş 50 mg / mL'dir. EDC'nin stok çözeltisi ayrıca Aktivasyon Tamponu içinde çözülmüş 50 mg / mL'dir. Hem Aktivasyon Tamponu hem de atmosferdeki nem EDC bozulmasına neden olur. Depolanmış EDC çözeltisinin kullanılması tavsiye edilmez. Adımdan önce yeterince taze EDC çözeltisi hazırlayın ve çözelti hazır olduğunda hemen kullanın. Fazla EDC çözeltisini atın.
    DİKKAT: EDC ciddi göz tahrişine neden olur ve solunum yollarını ve cildi tahriş eder.
    1. Yıkanmış ve aktive edilmiş boncukları içeren mikrofüj tüpüne 10 μL sülfo-NHS ekleyin.
    2. Boncukları ve sülfo-NHS'yi içeren mikrofüj tüpüne 10 μL EDC stok çözeltisi ekleyin.
    3. Işığa duyarlı mikrokürecikleri ışıktan koruyun ve döndürücü üzerinde RT'de (18-22 °C) 15-30 rpm'de 20 dakika döndürün. Alternatif olarak, boncukları 10 dakikalık aralıklarla yeniden dağıtmak için hafifçe girdaplanırsa, tüp aktivasyon adımı sırasında sabit kalabilir.
  6. Fazla bağlantı reaktiflerini boncuklardan yıkayın.
    1. Aktif boncukları içeren tüpü 1-2 dakika boyunca manyetik bir ayırıcıya yerleştirin.
    2. Süpernatanı, tüp hala manyetik ayırıcıda konumlanmışken, mıknatısla hareketsiz hale getirilmiş veya peletlenmiş boncuklardan bir pipetle aspire edin.
    3. Mikrosantrifüj tüpünü mıknatıstan çıkarın ve 100 μL Aktivasyon Tamponu ekleyin.
    4. Boncukları dağıtmak için reaksiyon tüpünü hafifçe döndürün.
    5. Toplam üç yıkama için 2.6.1-2.6.4 adımlarını iki kez daha tekrarlayın. Yıkama sonunda boncuklar, yaklaşık 10 ×10 6 boncuk/mL konsantrasyonda 100 μL Aktivasyon Tamponu içinde süspanse edilecektir.
  7. rhPD-1 peptidini aktive edilmiş boncuklara bağlayın.
    1. Toplam boncuk süspansiyon hacmini 490 μL'ye çıkarmak için aktif boncukları içeren tüpe 390 μL Aktivasyon Tamponu ekleyin.
    2. Aktive edilmiş boncukları içeren tüpe 10 μL PD-1 peptit çözeltisi (PBS içinde çözülmüş 1 mg / mL) ekleyerek aktive edilmiş boncuk süspansiyonuna 1 μg PD-1 peptid ekleyin.
    3. PD-1 ve aktif boncukları eşit olarak dağıtmak için mikrosantrifüj tüpünü kısaca vorteksleyin.
    4. Boncukları PD-1 ile karanlıkta RT'de (18-22 °C) döndürme (15-30 rpm) ile 2 saat inkübe edin.
  8. Boncukları Tahlil/Yıkama Tamponu (PBS-TBN: 1x PBS, pH 7,4 + %0,1 BSA + %0,05 Tween-20 + %0,05 NaN315) kullanarak iki kez (2x) yıkayın.
    1. Aktif boncukları içeren tüpü 1-2 dakika boyunca manyetik bir ayırıcıya yerleştirin.
    2. Süpernatanı, tüp hala manyetik ayırıcıya yerleştirilmişken, mıknatısla hareketsiz hale getirilmiş veya peletlenmiş boncuklardan bir pipetle aspire edin.
    3. Mikrosantrifüj tüpünü mıknatıstan çıkarın ve 100 μL Aktivasyon Tamponu ekleyin.
    4. Boncukları dağıtmak için reaksiyon tüpünü hafifçe döndürün.
    5. Toplam iki yıkama için 2.8.1-2.8.4 adımlarını bir kez daha tekrarlayın. Yıkama sonunda boncuklar, 10 × 106 boncuk/mL konsantrasyonda 100 μL Aktivasyon Tamponu içinde süspanse edilecektir.
      NOT: Tampon aynı zamanda bir depolama ortamı olarak kullanılmıyorsa, Tahlil / Yıkama tamponu sodyum azid (koruyucu) olmadan yapılabilir.
    6. rhPD-1 bağlantılı boncukları hemen kullanılmayacaksa karanlıkta buzdolabında 2-8 °C'de saklayın. Proteine bağlı boncuklar 18 aya kadar stabildir.

3. Boncuklara başarılı rhPD-1 bağlantısının değerlendirilmesi

NOT: rhPD-1'e bağlı mikroküreler, biyotinile rhPD-L1 ile reaksiyona sokulur, ikincisi SAPE ile inkübasyon ve ardından akış sitometresinde bir değerlendirme ile tespit edilir. Bu, hem manyetik boncuklara başarılı PD-1 eşleşmesini hem de rhPD-1 ve rhPD-L1 proteinleri arasındaki fonksiyonel etkileşimi doğrular.

  1. PBS-TBN'de iki katlı bir seri seyreltme serisi biyotinillenmiş rhPD-L1 oluşturun (stok rhPD-L1 çözeltisi 1 mg / mL'dir). Test edilecek nihai rhPD-L1 konsantrasyon aralığı, 8 pg/mL'lik bir çözeltiye kadar 313 μg/mL'lik bir çözeltidir. Her rhPD-L1 seyreltmesi için 150 μL hacim oluşturun: her reaksiyon için 50 μL ve koşul başına iki reaksiyon artı pipetleme kayıplarını karşılamak için yeterli fazlalık.
    1. rhPD-L1 seyreltme mikrofüj tüplerini 8 μg/mL, 4 μg/mL, 2 μg/mL, 1 μg/mL, 0.5 μg/mL, 0.25 μg/mL, 0.125 μg/mL, 0.063 μg/mL ve 0.031 μg/mL olarak etiketleyin. 0 μg/mL'lik bir tüp (yalnızca PBS-TBN), PD-L1 kontrolü olarak işlev görür.
    2. Etiketli tüm rhPD-L1 seyreltme tüplerine 150 μL PBS-TBN'yi önceden yükleyin.
      NOT: Test edilecek en yüksek nihai rhPD-L1 konsantrasyonu 8 μg/mL'dir ve rhPD-L1, reaksiyon karışımına eklendikten sonra 1:1 oranında seyreltilecektir, bu nedenle "8 μg/mL" etiketli seyreltme tüpü nihai konsantrasyonu ifade eder ve aslında 16 μg/mL rhPD-L1 içerir. Tüm seyreltme tüplerinin üzerindeki etiketler, reaksiyona eklendikten sonra nihai rhPD-L1 konsantrasyonunu gösterir.
    3. En yüksek konsantrasyonlu rhPD-L1 dilüsyonunu oluşturun (16 μg/mL gerçek). Bu, 1 mg / mL rhPD-L1 stok çözeltisinin (1.000 μg / 16 μg = 62.5) iki aşamalı, 62.5 kat seyreltilmesidir.
      1. 84 μL PBS-TBN'yi 16 μL rhPD-L1 stok çözeltisi (1 mg/mL, yani 1.000 μL) ile bir mikrosantrifüj tüpünde birleştirin. Bu 6.25 kat seyreltmedir ve elde edilen konsantrasyon 160 μg/mL rhPD-L1'dir.
      2. "8 μg/mL" etiketli tüpte, 270 μL PBS-TBN'yi önceki adımda oluşturulan 30 μL rhPD-L1 seyreltmesi (160 μg/mL) ile birleştirin. Bu 10 katlık bir seyreltmedir ve ortaya çıkan konsantrasyon aslında 16 μg/mL'dir. "8 μg/mL" tüp etiketi, reaksiyona eklendikten sonraki son konsantrasyonunu ifade eder.
    4. Adım 3.1.3'te ("8 μg/mL") oluşturulan rhPD-L1 seyreltmesinin 150 μL'sini "4 μg/mL" tüpüne aktarın, mikrosantrifüj tüp kapağını kapatın ve çözeltiyi karıştırmak için kısaca girdap yapın.
    5. rhPD-L3.1.4 seyreltme serisi tamamlanana kadar adım 1'ü sırayla tekrarlayın. Oluşturulduktan sonra, "8 μg/mL" ile "0.063 μg/mL" arasındaki tüm tüpler ve 0 μg/mL kontrolü 150 μL çözelti içermeli ve son tüp "0.031 μg/mL" 300 μL çözelti içermelidir. Bu, yinelenen reaksiyonlarda her bir biyotinile edilmiş rhPD-L1 seyreltmesinin 50 μL'sini test etmek için her bir seyreltmeden yeterli hacim oluşturur ve pipetleme kayıplarını karşılamak için yeterli fazlalık kalır.
  2. Bir hemositometre17 kullanarak rhPD-1'e bağlı boncukları sayın.
  3. Stok rhPD-1'e bağlı boncukları, 2.500 boncuk / 50 μL / reaksiyon için yeterli bir hacimle 5 × 104 boncuk / mL'ye seyreltin.
  4. 5 × 104 boncuk / mL rhPD-1-bağlı boncuk süspansiyonunu vorteksleyin ve 50 oyuklu yuvarlak tabanlı bir mikrotitre plakasının etiketli/eşlenmiş her bir kuyucuğuna süspansiyonun 1 μL'sini pipetleyin, böylece test edilen her rhPD-L1 seyreltmesi için çift kuyucuklar oluşturulur.
  5. Adım 3.1'de oluşturulan her bir biyotinile rhPD-L1 seyreltme tüpünden 50 μL'yi mikrotitre plakasındaki uygun kuyucuklara ekleyin.
  6. Mikrotitre plakasını tek kullanımlık bir folyo veya plastik yapışkan plaka kapatıcı ile örtün ve plakayı karanlıkta RT'de (18-22 °C) bir orbital çalkalayıcı (600 rpm) üzerinde 1 saat inkübe edin.
  7. Boncuklardan fazla biyotinile rhPD-L1'i yıkayın.
    1. Boncukları hareketsiz hale getirmek için sızdırmaz plakayı orbital çalkalayıcıdan manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika boyunca aktarın.
    2. Yapışkan plaka kapatıcıyı dikkatlice çıkarın, mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatantları uygun şekilde bir lavaboya veya biyolojik olarak tehlikeli sıvı atık kabına boşaltın. Kalan süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici kağıt mendil yastığına hafifçe ama hızlı bir şekilde vurun.
    3. Mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıdan çıkarın ve her bir oyuğa 150 μL PBS-TBN pipetleyin.
    4. Boncukları hareketsiz hale getirmek için mühürsüz plakayı 2 dakika boyunca manyetik ayırıcıya yerleştirin.
    5. Mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatantları uygun şekilde bir lavaboya veya biyolojik olarak tehlikeli sıvı atık kabına boşaltın. Kalan süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici kağıt mendil yastığına hafifçe ama hızlı bir şekilde vurun.
  8. Her biri 150 μL PBS-TBN ile toplam üç yıkama için plaka yıkama adımları 3.7.3-3.7.5'i iki kez tekrarlayın. Son yıkama adımının sonunda kuyucuklarda süpernatan kalmadığından emin olun. Kuyu diplerinde hareketsiz boncukların kurumasını önlemek için sürekli çalışın.
  9. SAPE Algılama Reaktifi ekleyin.
    1. SAPE stok çözeltisini PBS-TBN'de 6 μg/mL'lik bir çalışma konsantrasyonuna seyreltin. Tüm reaksiyon kuyucuklarının 100 μL/kuyu alabilmesi için yeterli bir SAPE çalışma çözeltisi hacmi hazırlayın ve pipetleme kayıplarını karşılamak için yeterli ekstra değer ekleyin.
    2. Mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıdan çıkarın.
    3. Her reaksiyon kuyucuğuna 100 μL SAPE çalışma solüsyonu ekleyin ve yıkanmış boncukları pipetleme ile yeniden süspanse edin.
    4. 96 oyuklu mikrotitre plakasını bir folyo veya plastik yapışkan plaka kapatıcı ile kapatın ve 600 rpm'de bir orbital çalkalayıcı üzerinde RT'de (18-22 °C) karanlıkta 1 saat inkübe edin.
    5. Mikrotitre plakasını inkübatörden çıkarın, boncukları hareketsiz hale getirmek için manyetik plaka ayırıcıya aktarın, yapışkan plaka kapatıcıyı çıkarın ve boncukları 150-3.7.3 adımlarında açıklandığı gibi 3.7.7.5 μL PBS-TBN ile üç kez yıkayın.
    6. Son yıkamayı çıkardıktan sonra, plakayı manyetik plaka ayırıcıdan çıkarın ve boncukları oyuk başına 100 μL PBS-TBN'de yeniden süspanse edin.
  10. Sonuçları analiz edin.
    1. Aşağıdaki cihaz ayarlarını kullanarak her reaksiyonun medyan floresan yoğunluğunu (MFI) belirlemek için akış analiz cihazındaki plakayı okuyun ( Malzeme Tablosuna bakın): aspirasyon hacmi = 50 μL; minimum boncuk sayısı = 100 boncuk; zaman aşımı ayarı = 40 s; geçit = 7.000-17.000; çalışma modu = Tek Muhabir. Her koşul için yinelenen kuyular çalıştırılır ve daha fazla veri hesaplaması ve grafiği yapılmadan önce her koşul için iki çıkış MFI değerinin ortalaması alınır.
      NOT: Her seyreltmenin MFI değeri, boncuklara kabul edilebilir rhPD-1 bağlanma verimliliğini gösteren ve rekombinant PD-1/PD-L1 proteinlerinin iyi etkileşimini doğrulayan konsantrasyona bağlı bağlanma göstermelidir.

4. PD-L1 manyetik boncuk tabanlı PD-1 / PD-L1 engelleme testi

NOT: Bu test, çözünür aracıların (örneğin, anti-PDL1-peptit antikorları) rekombinant PD1/PD-L1 etkileşimleri üzerindeki bloke edici aktivitesini değerlendirir. Kısaca biyotinile rhPD-L1, farklı PDL1-Vaxx peptit aşılamalarından sonra tavşanlarda üretilen antikorlarla önceden inkübe edilir. rhPD-L1 + anti-PDL1 antikor karışımı daha sonra rhPD-1-bağlı manyetik boncuklar kullanılarak yakalanır ve rhPD-L1'in rhPD-1-bağlı boncuklara bağlanması, streptavidin-PE ilavesiyle ölçülür. PE floresan sinyali, test edilen anti-PDL1 antikorlarının/inhibitörlerinin bloke edici aktivitesi ile ters orantılıdır. Anti-PDL1-peptit antikor bağlanması, aynı anda bir BV421-bağlı anti-tavşan (anti-PDL1-peptit antikorları için) veya anti-insan (kontrol antikorları için) ikincil antikorunun bağlanması ve BV421 floresansının değerlendirilmesi ile değerlendirilir. Test adımları Şekil 1'de resimsel olarak detaylandırılmıştır.

  1. PDL1-Vaxx ile indüklenen poliklonal antikor adayları, bir negatif kontrol antikoru (trastuzumab, Herceptin, insanlaştırılmış anti-HER2 monoklonal antikor) ve bir pozitif kontrol antikoru (atezolizumab; insanlaştırılmış anti-PDL1 IgG1 monoklonal antikor) dahil olmak üzere test antikorlarının iki katlı bir seri seyreltme serisini hazırlayın. Her reaksiyon, atanmış antikor seyreltmesinin 25 μL'sini kullanacaktır, bu nedenle gösterilen hacimler, her bir reaksiyonu koşul başına çift kuyucuklarda (yani koşul başına 50 μL) gerçekleştirmek için yeterlidir ve pipetleme kayıplarını karşılamak için bir miktar fazlalık kalır.
    1. Aşı ile indüklenen her anti-PDL1-peptit antikoru ve kontrol antikoru için, test edilen nihai antikor konsantrasyonlarının aralığının 1.000 μg/mL ila 8 μg/mL arasında olduğundan emin olun. 2.000 μg/mL'de tüm antikorların stok çözeltilerini hazırlayın.
    2. Her antikor için, seyreltme tüplerini 1.000 μg / mL, 500 μg / mL, 250 μg / mL, 125 μg / mL, 63 μg / mL, 31 μg / mL, 16 μg / mL ve 8 μg / mL olarak etiketleyin ve antikor adını ekleyin. Her antikor için, yalnızca araç (PBS-TBN) kontrolü olacak bir "0 μg/mL" tüpü de ekleyin.
      NOT: Reaksiyon karışımına eklendiğinde, antikor konsantrasyonu 1:1 oranında seyreltilecektir. Antikor seyreltme tüpleri, reaksiyona eklendikten sonra nihai antikor konsantrasyonu olarak etiketlenir ve aslında etiketlenenden iki kat daha fazla antikor içerir.
    3. "0 μg/mL" araç kontrol tüpleri de dahil olmak üzere "500 μg/mL" ve altındaki tüm antikor seyreltme tüplerine 75 μL PBS-TBN ekleyin.
    4. Her antikor için, 2.000 μg / mL stok çözeltisinin 150 μL'sini "1.000 μg / mL" etiketli ilgili tüpe pipetleyin. Bu, her bir antikor için sonraki tüm dilüsyonları yapmak için kullanılacaktır.
    5. Her antikor için, "1.000 μg/mL" tüpten 75 μL'yi serideki bir sonraki düşük seyreltme (yani "500 μg/mL") ile tüpe pipetle aktararak tam bir seyreltme serisi oluşturun. Yeni tamamlanan seyreltme tüpünü kapatın, kısaca vorteksleyin ve "500 μg/mL" tüpten "250 μg/mL" tüpe 75 μL aktararak seyreltme serisinin yapımına devam edin. Tüm antikorlar için son seyreltme olan "8 μg/mL" yapılana kadar bu modeli tekrarlayın.
      NOT: Her antikor için tamamlanmış seyreltme serisinde, 150 μL'lik bir hacim içermesi gereken en düşük seyreltme olan 8 μg/mL hariç tüm tüpler için 75 μL'lik bir hacim olmalıdır. Her reaksiyon 25 μL antikor seyreltmesi kullanacaktır, bu nedenle bu hacimler, pipetleme kayıplarını karşılamak için ekstra olmak üzere, her bir reaksiyonu koşul başına çift kuyucuklarda (yani koşul başına 50 μL) gerçekleştirmek için yeterlidir.
  2. 25 μL seyreltilmiş antikorları 96 oyuklu bir mikrotitre plakasının belirlenmiş kuyucuklarına yerleştirin.
  3. Biyotinile rhPD-L1'i, PBS-TBN'de 4 μg/mL'lik bir çalışma konsantrasyonuna, koşul başına çift kuyucuklara 25 μL içerecek kadar yeterli bir hacimde seyreltin (yani, koşul başına 50 μL), pipetleme kayıplarını karşılamak için ekstra.
    NOT: Bu çalışmada, 4 μg/mL'de biyotinile rhPD-L1, önceki kuplaj değerlendirmesinde ölçülen maksimum MFI sinyalinin yaklaşık %50'si ile sonuçlandı ve PD-1/PD-L1 blokaj analizi için kullanıldı.
  4. Her reaksiyon kuyucuğuna 25 μL biyotinile rhPD-L1 (4 μg/mL) ekleyin, mikrotitre plakasını bir folyo veya plastik yapışkan conta ile kapatın ve RT'de (18-22 °C) 1 saat boyunca 600 rpm'de bir orbital plaka çalkalayıcı üzerinde çalkalayın.
  5. rhPD-1'e bağlı boncukları, 50 μL/kuyucuk (2.500 boncuk/kuyu) için yeterli hacim ve pipetleme kayıplarını karşılamak için ekstra olacak şekilde 50.000 boncuk/mL'ye seyreltin.
  6. 96 oyuklu mikrotitre reaksiyon plakasını çalkalayıcıdan çıkarın ve yapışkan plaka contasını çıkarın.
  7. Her oyuğa 50 μL rhPD-1 bağlı boncuk karışımı ekleyin.
  8. Plakayı kapatın ve karanlıkta RT'de (18-22 °C) 600 rpm'de bir orbital çalkalayıcıda 1 saat inkübe edin.
  9. Boncukları hareketsiz hale getirmek için sızdırmaz plakayı orbital çalkalayıcıdan manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika boyunca aktarın.
  10. Yapışkan plaka kapatıcıyı dikkatlice çıkarın, mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatanları boşaltın. Fazla süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici kağıt mendil yastığına hafifçe vurun.
  11. Boncuklardaki fazla reaksiyon reaktiflerini yıkayın.
    1. Mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıdan çıkarın ve her oyuğa 150 μL PBS-TBN ekleyin.
    2. Boncukları hareketsiz hale getirmek için mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika yerleştirin.
    3. Mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatantları boşaltın. Fazla süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici kağıt mendil yastığına hafifçe vurun.
  12. PBS-TBN ile toplam üç yıkama için plaka yıkama adımları 4.11.1-4.11.3'ü iki kez tekrarlayın. Son (üçüncü) yıkama solüsyonunu çıkarmadan önce SAPE reaktifinin (aşağıda) hazırlandığından emin olun.
  13. SAPE algılama reaktifini ekleyin.
    1. Stok SAPE stok çözeltisini PBS-TBN'de 6 μg/mL çalışma konsantrasyonuna seyreltin; 100 μL/kuyu için yeterli bir hacim ve pipetleme kayıplarını karşılamak için ekstra hacim yapın.
    2. Her reaksiyon kuyucuğuna 100 μL/kuyu SAPE çalışma solüsyonu ekleyin ve pipetleme ile boncukları yeniden süspanse edin.
    3. Plakayı kapatın ve karanlıkta RT'de (18-22 °C) 600 rpm'de bir orbital çalkalayıcıda 1 saat inkübe edin.
  14. Fazla SAPE'yi reaksiyondan boşaltın.
    1. Boncukları hareketsiz hale getirmek için sızdırmaz plakayı orbital çalkalayıcıdan manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika boyunca aktarın.
    2. Yapışkan plaka kapatıcıyı dikkatlice çıkarın, mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatanı boşaltın. Fazla SAPE içeren süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici bir kağıt mendil yastığına hafifçe vurun.
  15. Fazla SAPE'yi boncuklardan yıkayın.
    1. Mikrotitre plakasını manyetik plaka tutucusundan çıkarın.
    2. Boncukları yeniden süspanse etmek için her oyuğa 150 μL PBS-TBN ekleyin.
    3. Boncukları hareketsiz hale getirmek için mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika yerleştirin.
    4. Mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatanı boşaltın. Fazla süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici kağıt mendil yastığına hafifçe vurun.
  16. 4.15.1-4.15.4 adımlarını tekrarlayarak toplam üç yıkama için PBS-TBN ile iki ek yıkama adımı gerçekleştirin. Son (üçüncü) yıkama solüsyonunu çıkarmadan önce BV421 konguge ikincil tespit antikorlarını hazırlayın (bir sonraki adım).
  17. BV421 ile konguge edilmiş sekonder antikorları ekleyin.
    1. BV421 ile konguge anti-insan IgG'yi (insanlaştırılmış kontrol antikorlarını tespit etmek için) ve BV421 ile konguge anti-tavşan IgG'yi (PDL1-Vaxx ile indüklenen poliklonal antikorları tespit etmek için) seyreltin (Malzeme Tablosuna bakın) Yıkama/Tahlil Tamponunda 1:400 oranında her birinden 100 μL/kuyucuk kullanmak için yeterli hacimlerde, pipetleme kayıplarını karşılamak için ekstra.
    2. Uygun kuyucuklara 100 μL seyreltilmiş BV421-konjuge anti-insan IgG veya BV421-konjuge anti-tavşan IgG ekleyin.
    3. Plakayı kapatın ve karanlıkta RT'de (18-22 °C) 600 rpm'de bir orbital çalkalayıcıda 1 saat inkübe edin.
  18. Boncuklardan fazla BV421 konjuge sekonder antikorları boşaltın.
    1. Boncukları hareketsiz hale getirmek için sızdırmaz plakayı orbital çalkalayıcıdan manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika boyunca aktarın.
    2. Yapışkan plaka kapatıcıyı dikkatlice çıkarın, mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatanı boşaltın. Fazla BV421 konjuge sekonder antikorları içeren süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı bir emici kağıt mendil yastığına hafifçe vurun.
  19. Fazla BV421 konjuge sekonder antikorları boncuklardan yıkayın.
    1. Boncukları yeniden süspanse etmek için her oyuğa 150 μL PBS-TBN ekleyin.
    2. Boncukları hareketsiz hale getirmek için mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıya 2 dakika yerleştirin.
    3. Mıknatıs ve mikrotitre plakasının güvenli bir şekilde bir arada olduğunu onaylayın ve plakayı ters çevirin ve süpernatanı boşaltın. Fazla süpernatanı çıkarmak için ters çevrilmiş plakayı emici kağıt mendil yastığına hafifçe vurun.
  20. 4.19.1-4.19.3 adımlarını tekrarlayarak toplam dört yıkama için PBS-TBN ile üç ek yıkama adımı gerçekleştirin.
  21. Son (dördüncü) yıkama tamponunu çıkardıktan sonra, mikrotitre plakasını manyetik plaka ayırıcıdan çıkarın ve boncukları bir pipetleyici ile 100 μL PBS-TBN/kuyucuğunda yeniden süspanse edin.
  22. Sonuçları analiz edin.
    1. Aşağıdaki cihaz ayarlarını kullanarak her reaksiyonun MFI'sini belirlemek için çift raportörlü akış analiz sistemindeki plakayı okuyun: aspirasyon hacmi = 50 μL; minimum boncuk sayısı = 100 boncuk; zaman aşımı ayarı = 40 s; geçit: 7.000-17.000; çalışma modu = Çift Muhabir.
    2. Çift raportör sistemiyle, Reporter Channel 1'in turuncu PE floresansını (rhPD-1-konjuge boncuklara bağlı rhPD-L1 miktarı) ve Reporter Channel 2'nin mavi BV421 floresansını (rhPD-L1'e bağlı bağlı bloke edici antikor miktarı) ölçtüğünden emin olun.
    3. Her koşul için yinelenen kuyular çalıştırın ve daha fazla veri hesaplaması ve grafiği gerçekleştirmeden önce her koşul için iki çıkış MFI değerinin ortalamasını alın.
    4. Her numunenin MFI değerini negatif kontrole standartlaştırın ve her numune için inhibisyon yüzdesini hesaplayın:
      İnhibisyon% = (100 × [Negatif Kontrol MFI - Örnek MFI])/Negatif Kontrol MFI
      NOT: Negatif kontrol MFI değerleri (inhibisyon yok) en yüksek değerlerdir; bağlı PD-L1 sinyali MFI %100'dür ve rhPD-L1'in rhPD-1'e bağlanmasının inhibisyonu %0 olarak tanımlanır.

figure-protocol-26496
Şekil 1: Çift raportörlü PD-1/PD-L1 blokaj testinin şeması. Biyotinillenmiş rekombinant insan PD-L1 (rhPD-L1), PD-1 / PD-L1 kontrol noktası kompleksi oluşumuna izin vermek için rhPD-1 bağlantılı manyetik boncuklarla birleştirilmeden önce seçilmiş PDL1-Vaxx ile indüklenen anti-PDL1 antikorları ile önceden inkübe edilir. Kompleks rhPD-L1 daha sonra streptavidin bağlı fikoeritrin (SAPE, turuncu florofor) ilavesiyle tespit edilir ve işaretlenir. PDL1-Vaxx epitoplarına karşı antikorlar, manyetik boncuklara önceden bağlanmış rhPD-1'e kompleks oluşturan rhPD-L1'i hedefler ve bunlar bir Brilliant Violet 421-konjuge ikincil antikor (BV421, mavi florofor) kullanılarak aydınlatılır. Hem PD-1'e (PE sinyali) kompleks haline getirilmiş biyotinile rhPD-L1 hem de rhPD-L1'i (BV421 sinyali) tanıyan ve bağlayan anti-PDL1 antikorları, iki ayrı raportör kanalında her iki florofor için numuneleri sorgulayan çift raportörlü bir akış sitometrik alet kullanılarak eşzamanlı olarak analiz edilir. Her numune için çıktı değerleri, her bir floroforun medyan floresan yoğunluğudur. PDL1-Vaxx ile indüklenen antikorlar tarafından PD1/PD-L1 kompleks oluşumunun inhibisyonu daha sonra deneysel sinyallerin rhPD-L1'i bağlamayan negatif bir kontrol monoklonal antikoru kullanılarak üretilenlerle karşılaştırılmasıyla tahmin edilir (%0 inhibisyon). Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Temsili Sonuçlar

Test, potansiyel kanser terapötik ajanları olarak araştırılan rhPD-L1 aşı peptitlerine karşı üretilen dört benzersiz poliklonal antikor tarafından PD-1 / PD-L1 etkileşiminin inhibisyonunu kesin olarak ölçebildi. Bu tahlilin şeması Şekil 1'de verilmiştir. rhPD-1-konjuge boncuklara bağlanan biyotinile rhPD-L1 miktarı ve bu bağlanmanın dört PLD1-Vaxx ile indüklenen antikor adayı tarafından inhibisyonu, rhPD-L1'i doğrudan bağlayan bir streptavidin-PE tespit reaktifi kullanılarak Reporter Channel 1'de ölçüldü (Şekil 2).

Dört poliklonal anti-PDL1-peptit antikorunun tümü, mikroküreler üzerinde değişken derecelerde hareketsiz hale getirilmiş olan PD-1 ile rhPD-L1 etkileşimini bloke etti. Farklı anti-PDL1 peptit antikorlarının inhibisyon yüzdesi, test edilen maksimum 1.000 μg / mL konsantrasyonda% 48 ila% 74 arasında değişmektedir. Pozitif kontrol monoklonal antikoru atezolizumab, test edilen maksimumkonsantrasyon 14 4 μg/mL'de PD-1/PD-L1 etkileşiminin% 92 blokajını elde etti (Şekil 2). Deneysel PDL1-Vaxx antikorlarının tümü, PD-1/PD-L1 sistemi ile etkileşime girmesi beklenmeyen negatif kontrol antikoru olan trastuzumab ile karşılaştırıldığında, rhPD-L1'in rhPD-1 konjuge boncuklara bağlanmasının konsantrasyona bağlı inhibisyonunu gösterdi.

figure-representative results-1489
Şekil 2: Yeni bir floresan boncuk bazlı immünolojik test ile gösterildiği gibi, anti-PDL1-peptit antikorları tarafından manyetik boncuklara bağlanmış rhPD-1 ile rhPD-L1 etkileşiminin blokajı. Rekombinant insan PD-1, manyetik mikrokürelere bağlandı ve boncuklar daha sonra farklı anti-PDL1-peptit antikorları ile önceden inkübe edilmiş biyotinile rhPD-L1 ile inkübe edildi. Biyotini bağlamak ve böylece PD-1'e bağlanmak için mevcut olan rhPD-L1'in nispi miktarını değerlendirmek için bir streptavidin-fikoeritrin tespit reaktifi kullanıldı. Tavşanlarda PDL1 peptit aşılarına (anti-PDL1 [36], anti-PDL1 [50], anti-PDL1 [95] ve anti-PDL1 [130]) karşı yetiştirilen poliklonal antikorlar, inhibitör aktivite açısından test edildi ve test edilen en yüksek konsantrasyonda rekombinant PD-1/PD-L1 etkileşimlerinin %48-74 blokajını gösterdi. Pozitif kontrol olarak Atezolizumab (farklı bir anti-PDL1 monoklonal antikor) kullanıldı. Negatif kontrol olarak ilişkisiz ticari monoklonal antikor trastuzumab (anti-HER2) kullanıldı. Bu rakam Guo ve ark.14'ten uyarlanmıştır. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

figure-representative results-2947
Şekil 3: Farklı PDL1-Vaxx ile indüklenen antikorların, rhPD1 kaplı manyetik boncuklara komplekslenmiş rhPD-L1'e karşılaştırmalı bağlanması. Farklı tavşan poliklonal anti-PDL1-peptit antikorlarının rhPD-1 kaplı boncuklar yoluyla rhPD-L1'e bağlanmasını karşılaştırmak için parlak menekşe 421-konjuge ikincil tespit antikoru kullanıldı. BV421 mavi floresan sinyali, çift muhabir cihazının Muhabir Kanal 2'sine kaydedildi; bu sinyal, deneysel anti-PDL1-peptit antikorlarının nispi bağlanma etkinliği ile ilişkilidir. PD-1 / PD-L1'den farklı bir kontrol noktasını hedefleyen bir monoklonal antikor olan trastezumab (anti-HER2), negatif kontrol olarak kullanıldı. MFI, koşul başına çift reaksiyon kuyularında ölçülen ortalama boncuk medyan floresan yoğunluğunu temsil eder. Bu rakam Guo ve ark.14'ten uyarlanmıştır. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Dört deneysel PDL1-Vaxx ile indüklenen aday antikorun rhPD-L1'i bağlama konusundaki nispi yetenekleri, cihazın ikinci raportör kanalında değerlendirilen ayrı bir tespit sistemi (BV421-konjuge anti-tavşan IgG) kullanılarak karşılaştırıldı. Bu sonuçlar, dört poliklonal anti-PDL1-peptit antikorunun tümünün konsantrasyona bağlı bir şekilde rhPD-L1'e bağlandığını göstermiştir14 (Şekil 3). Anti-PDL1 (130) antikoru, dört PDL1-Vaxx ile indüklenen antikor adayının en yüksek rhPDL1 bağlanma sinyalini gösterdi.

Tartışmalar

Kontrol noktası ile ilişkili kanser immünoterapisinin amacı, tümör sağkalımı ve ilerlemesinde kontrol noktası proteinleri ile bunların önemli ligandları arasındaki etkileşimi bozmaktır2. Bu araştırma grubu, PD-1/PD-L1 kontrol noktası 3,8,13,14'ü hedefleyen ve kesintiye uğratan bir antikor tepkisi ortaya çıkaran yeni PD-1 ve PD-L1 aşılarını aktif olarak geliştirmektedir. Daha önce, anti-PDL1-peptit antikorlarının rekombinant PD1 / PD-L1 etkileşiminin inhibisyonu üzerindeki etkilerini değerlendirmek için enzime bağlı immünosorbent testlerinin (ELISA'lar) iki varyasyonu gerçekleştirilmiştir14. (1) İlk varyantta, rhPD-L1 bir mikrotitre plakası üzerine kaplandı ve daha sonra plaka, seyreltilmiş anti-PDL1 aşı adayı kaynaklı antikorlarla inkübe edildi. Antikorlar tarafından rekombinant PD-1 / PD-L1 etkileşiminin inhibisyonu daha sonra biyotinile rhPD-1 eklenerek ve bir streptavidin-yaban turpu peroksidaz konjugatı ve bir kolorimetrik substrat kullanılarak hareketsizleştirilmiş rhPD-L1'e bağlanmanın ölçülmesiyle değerlendirildi. Bunu doğrudan abluka testi olarak tanımladık. (2) İkinci varyantta, PD-1 mikrotitre plakası üzerine kaplanmıştır. Biyotinillenmiş rhPD-L1, ayrı reaksiyon tüplerinde anti-PLD1 adayı kaynaklı poliklonal antikorların her biri ile önceden inkübe edildi. rhPDL1/anti-PDL1 karışımları daha sonra hareketsizleştirilmiş rhPD-1 içeren plaka kuyucuklarına ilave edildi ve reaksiyona girmesine izin verildi. Potansiyel olarak bloke edici PDL1-Vaxx ile indüklenen antikorların varlığında hareketsizleştirilmiş rhPD-1 ile reaksiyona giren herhangi bir rhPDL1, sonraki streptavidin-HRP ve kolorimetrik substrat inkübasyonu ile tespit edildi. Bunu ters blokaj testi olarak tanımladık.

Anti-PDL1-peptit antikorları tarafından rekombinant PD-1 / PD-L1 etkileşiminin ters blokajı, antikor konsantrasyonuna bağlı bir şekilde sinyalin inhibisyonunu (yani, PD-1 / PD-L1 blokajı)gösterdi 14, doğrudan blokaj yaklaşımı tutarlı sonuçlar vermedi (gösterilmedi). Boncuk bazlı çift raportör blokaj testi, ELISA sonuçlarını doğrulamak ve PD-1/PD-L1 etkileşiminin bir sıvı fazında blokajını araştırmak için geliştirilmiştir, bu da kuyu diplerinde rekombinant proteinlerin immobilize edilmesiyle ilişkili potansiyel sterik engelleme/bağlanma epitop kullanılabilirliği sorunlarını ortadan kaldırır. Mikroküre analizi, ters blokaj testi kullanılarak ELISA blokaj sonuçlarıyla doğrudan ilişkilendirildi (Şekil 2). Ek olarak, floresan bazlı immünolojik testler, kolorimetrik ELISA'lara18 kıyasla gelişmiş test duyarlılığı ve genişletilmiş bir dinamik aralık sağlayabilir ve ayrıca, çoğullanmış boncuk bazlı test, tek bir reaksiyon içinde iki bağımsız immünolojik testin eşzamanlı performansına izin verir. Mikrokürelerin rhPD-1'e kovalent bağlanması için kullanılan sülfo-NHS ve EDC, doğrudan blokaj ve ters blokaj deneyleri arasında görülen performans farklılıklarına ve ELISA ile Luminex boncuk bazlı rekombinant PD-1 / PD-L1 etkileşim deneyleri arasında gözlenen duyarlılık farklılıklarına yol açmış olabilir. Bu farklılıklardan sorumlu olası mekanizmaları incelemek için daha fazla kimyasal ve moleküler düzeyde araştırma yapılması gerekmektedir.

Hem ELISA14 hem de boncuk bazlı testler, PDL1-Vaxx ile indüklenen anti-PDL1 antikorlarının PD1/PD-L1 kontrol noktası kompleks oluşumunu inhibe edebileceğini göstermektedir. Peptit bazlı PDL1-Vaxx, PD-1/PD-L1 etkileşimini bloke edebilen anti-PDL1 antikorlarını başarıyla indükler. Bu yaklaşım, klinik öncesi hayvan çalışmaları 3,13,14 tarafından desteklendiği gibi, kanseri tedavi etmek için yeni bir terapötik strateji olarak hizmet edebilir. Planlanan klinik çalışmalar, kanser hastalarında kontrol noktası immünoterapisi ve hastalık kontrolü için PDL1-Vaxx'ın etkinliğini belirleyecektir.

Açıklamalar

Pravin TP Kaumaya, Imugene, Ltd.'nin danışmanıdır.

Teşekkürler

Yazarlar, araştırma desteği için Luminex Corporation'dan (Austin, TX) MBA Sherry Dunbar'a ve bilimsel ve yazma yardımı için Biyomedikal Yayıncılık Çözümleri Doktora'dan (Panama City, FL; mattsilver@yahoo.com) Matthew Silverman'a teşekkür eder. Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri'nden (R21 CA13508 ve R01 CA84356) ve Sidney, Avustralya'daki Imugene Ltd'den (OSU 900600, GR110567 ve GR124326) Pravin TP Kaumaya'ya verilen ödüllerle desteklenmiştir.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Buffers
Activation Buffer: 0.1 M NaH2PO4, pH 6.2Millipore/SigmaS3139
Assay/Wash Buffer: PBS-TBN (1x PBS, pH 7.4 + 0.1% BSA + 0.05 % (v/v) Tween-20; 0.05% NaN3)Millipore/SigmaP3563 (PBS+Tween20), A7888 (Bovine serum albumin), S8032 (sodium azide)
Coupling Buffer: 50 mM 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES), pH 5.0MilliporeSigma M2933
Coupling Reagents
1-Ethyl-3-[3-dimethylaminopropyl]carbodiimide hydrochloride (EDC)ThermoFisher Scientific (Waltham, MA)77149
xMAP Antibody Coupling Kit (if desired), includes:Luminex Corp.  (Austin, TX)40-50016
EDC, 10 mg 
sNHS solution, 250 µL
Activation/Coupling Buffer: 0.1 M 2-morpholinoethanesulfonic acid (MES), pH 6.0
Wash Buffer: 1x PBS, pH 7.4 + 0.1% BSA + 0.05 % (v/v) Tween-20; 0.05% NaN3 (PBS-TBN)
Sulfo-NHS (N-hydroxysulfosuccinimide)ThermoFisher Scientific (Waltham, MA)24510
Instrumentation and Ancillary Lab Supplies
xMAP INTELLIFLEX (dual-reporter instrument)Luminex Corp.  (Austin, TX)INTELLIFLEX-DRSE-RUO
Low protein-binding round bottom 96-well plateThermoFisher Scientific (Waltham, MA)07-200-761
Luminex Magnetic Plate Separator (or comparable) Luminex Corp.  (Austin, TX)CN-0269-01
Luminex Magnetic Tube Separator (or comparable)Luminex Corp.  (Austin, TX)CN-0288-01
MagPlex Microspheres (magnetic, fluorescent, 6.5-µm-diameter beads)Luminex Corp.  (Austin, TX)MC-1**** (varies by bead label)
Protein LoBind microcentrifuge tubesThermoFisher Scientific (Waltham, MA)022431081
Peptides, Antibodies, & Detection Reagents
Atezolizumab (humanized anti-PDL1 IgG1 monoclonal antibody), positive controlGenentech/Roche (San Francisco, CA)n/a (prescription medications)
Biotinylated recombinant human PDL1 Sino Biological (Wayne, PA)10084-H49H-B
Brilliant Violet 421-congugated donkey anti-human IgGJackson Immunoresearch Laboratories Inc. (Westgrove, PA)709-675-149
Brilliant Violet 421-congugated donkey anti-rabbit IgGJackson Immunoresearch Laboratories Inc. (Westgrove, PA)711-675-152
Recombinant human PD-1 (poly-histidine tagged)Acro Biosystems (Newark, DE)PD1-H5256 
Streptavidin-conjugated R-phycoerythrin (SAPE)Agilent (Santa Clara, CA)PJRS34-1
Trastuzumab (Herceptin, humanized anti-HER2 monoclonal antibody), negative controlGenentech/Roche (San Francisco, CA)n/a (prescription medications)

Referanslar

  1. Kaumaya, P. T. B-cell epitope peptide cancer vaccines: a new paradigm for combination immunotherapies with novel checkpoint peptide vaccine. Future Oncology. 16 (23), 1767-1791 (2020).
  2. Pandey, P., et al. Revolutionization in cancer therapeutics via targeting major immune checkpoints PD-1, PD-L1 and CTLA-4. Pharmaceuticals. 15 (3), 335 (2022).
  3. Guo, L., Overholser, J., Good, A. J., Ede, N. J., Kaumaya, P. T. P. Preclinical studies of a novel human PD-1 B-cell peptide cancer vaccine PD1-Vaxx from BALB/c mice to beagle dogs and to non-human primates (cynomolgus monkeys). Frontiers in Oncology. 12, 826566 (2022).
  4. Brahmer, J. R., Hammers, H., Lipson, E. J. Nivolumab: Targeting PD-1 to bolster antitumor immunity. Future Oncology. 11 (9), 1307-1326 (2015).
  5. Shah, N. J., Kelly, W. J., Liu, S. V., Choquette, K., Spira, A. Product review on the Anti-PD-L1 antibody atezolizumab. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 14 (2), 269-276 (2018).
  6. Postow, M. A., Sidlow, R., Hellmann, M. D. Immune-related adverse events associated with immune checkpoint blockade. The New England Journal of Medicine. 378 (2), 158-168 (2018).
  7. Kaumaya, P. T. A paradigm shift: Cancer therapy with peptide-based B-cell epitopes and peptide immunotherapeutics targeting multiple solid tumor types: Emerging concepts and validation of combination immunotherapy. Human Vaccines & Immunotherapeutics. 11 (6), 1368-1386 (2015).
  8. Guo, L., Kaumaya, P. T. P. First prototype checkpoint inhibitor B-cell epitope vaccine (PD1-Vaxx) en route to human Phase 1 clinical trial in Australia and USA: Exploiting future novel synergistic vaccine combinations. British Journal of Cancer. 125 (2), 152-154 (2021).
  9. Dakappagari, N. K., Douglas, D. B., Triozzi, P. L., Stevens, V. C., Kaumaya, P. T. Prevention of mammary tumors with a chimeric HER-2 B-cell epitope peptide vaccine. Cancer Research. 60 (14), 3782-3789 (2000).
  10. Dakappagari, N. K., et al. Conformational HER-2/neu B-cell epitope peptide vaccine designed to incorporate two native disulfide bonds enhances tumor cell binding and antitumor activities. The Journal of Biological Chemistry. 280 (1), 54-63 (2005).
  11. Kaumaya, P. T., et al. Phase I active immunotherapy with combination of two chimeric, human epidermal growth factor receptor 2, B-cell epitopes fused to a promiscuous Tcell epitope in patients with metastatic and/or recurrent solid tumors. Journal of Clinical Oncology. 27 (31), 5270-5277 (2009).
  12. Bekaii-Saab, T., et al. Phase I immunotherapy trial with two chimeric HER-2 B-cell peptide vaccines emulsified in montanide ISA 720VG and Nor-MDP adjuvant in patients with advanced solid tumors. Clinical Cancer Research. 25 (12), 3495-3507 (2019).
  13. Kaumaya, P. T. P., Guo, L., Overholser, J., Penichet, M. L., Bekaii-Saab, T. Immunogenicity and antitumor efficacy of a novel human PD-1 B-cell vaccine (PD1-Vaxx) and combination immunotherapy with dual trastuzumab/pertuzumab-like HER-2 B-cell epitope vaccines (B-Vaxx) in a syngeneic mouse model. Oncoimmunology. 9 (1), 1818437 (2020).
  14. Guo, L., Overholser, J., Darby, H., Ede, N. J., Kaumaya, P. T. P. A newly discovered PD-L1 B_cell epitope peptide vaccine (PDL1-Vaxx) exhibits potent immune responses and effective anti-tumor immunity in multiple syngeneic mice models and (synergizes) in combination with a dual HER-2 B-cell vaccine (B-Vaxx). Oncoimmunology. 11 (1), 2127691 (2022).
  15. . Luminex Corporation. The xMAP® Cookbook, 5th edition Available from: https://info.luminexcorp.com/en-us/research/download-the-xmap-cookbook?utm_referrr=https%3A%2F%2Fwww.luminexcorp.com%2F (2022)
  16. MagPlex® Microspheres Documentation. Product information sheet. Luminex Corporation Available from: https://www.luminexcorp.com/magplex-microspheres/#overview (2014)
  17. Green, M. R., Sambrook, J. . Estimation of cell number by hemocytometry counting. 2019 (11), (2019).
  18. Selecting the Detection System - Colorimetric, Fluorescent, Luminescent Methods for ELISA Assays. Corning Inc Available from: https://www.corning.com/catalog/cls/documents/application-notes/CLS-DD-AN-458.pdf (2019)

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Manyetik Floresan Boncukift Raport rl Ak AnaliziPDL1 Vaxx Peptit A sAntikor BlokajPD 1 PD L1 Etkile imiKontrol Noktas Resept rleriMonoklonal AntikorlarKlinik Ara t rmalarKanser HastalarKanser mm noterapisiTerap tik StratejilerB h cresi Peptit EpitopuPDL1 Kanser A sKlinik ncesi Testlermm nojenik AntikorlarT m r Y kSa kal m OranlarEtki MekanizmalarManyetik Boncuk Tabanl Test

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır