JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokol, bir Yucatan minipiginde tekrarlanabilir çok derinlikli bir yanık yarası modelini açıklar.

Özet

Yanık yarası iyileşmesi karmaşık ve uzun bir süreçtir. Kapsamlı deneyime rağmen, yanık merkezlerindeki plastik cerrahlar ve uzman ekipler hala önemli zorluklarla karşı karşıyadır. Bu zorluklar arasında, yanmış yumuşak dokunun kapsamı erken aşamada gelişebilir ve konservatif tedaviler ile nekrozan doku çıkarılması arasında hassas bir denge oluşturur. Termal yanıklar en yaygın türdür ve yanık derinliği, sıcaklık ve maruz kalma süresi gibi birçok parametreye bağlı olarak değişir. Yanık derinliği de zamanla değişir ve "gölge bölgesinin" ikincil ağırlaşması tam olarak anlaşılmamış bir fenomen olmaya devam eder. Bu zorluklara yanıt olarak, birkaç yenilikçi tedavi üzerinde çalışılmıştır ve daha fazlası erken geliştirme aşamasındadır. Modern yara örtülerindeki nanopartiküller ve yapay deri, halen değerlendirilmekte olan bu modern tedavilere örnektir. Birlikte ele alındığında, hem yanık teşhisi hem de yanık tedavileri önemli ilerlemelere ihtiyaç duyar ve araştırma ekiplerinin yeni araçları ve tedavileri test etmek için güvenilir ve ilgili bir modele ihtiyacı vardır. Hayvan modelleri arasında domuzlar, deri yapısındaki insanlarla olan güçlü benzerlikleri nedeniyle en alakalı olanlardır. Daha spesifik olarak, Yucatan minipigleri, melanin pigmentasyonu ve yavaş büyüme gibi ilginç özellikler gösterir, bu da yüksek fototiplerin incelenmesine ve uzun süreli iyileşmeye izin verir. Bu makale, Yucatan minipiglerinde çok derinlikli yanık yaralarını incelemek, uzun süreli takip sağlamak ve tanı ve tedavi çalışmaları için uygun bir model sağlamak için güvenilir ve tekrarlanabilir bir protokolü tanımlamayı amaçlamaktadır.

Giriş

Yanıklar önemli bir halk sağlığı sorunudur ve Ulusal Yanık Deposu 1,2'ye göre ABD'de her yıl 480.000'den fazla hastayı etkilemektedir. Bu, derinlemesine bakım gerektiren ölümcül olmayan karmaşık vakalar için yıllık 50.000'den fazla hastaneye yatışa yol açar2. Ayrıca, yanıklar askeri mortalite ve morbiditenin temel bir nedenidir ve askeri kayıpların %10 ila %30'undan sorumludur 3,4. Yanıkların yönetimi, hastalar üzerindeki fizikselden psikolojik ve duygusal etkilere kadar muazzam ve çeşitli etkilerine rağmen, uzun bir süre neredeyse değişmeden kalmıştır5.

Yanık yaralanmalarının ilk teşhisi ve değerlendirilmesi, yanıkların tipine (birinci, ikinci ve üçüncü) veya etkilenen dokunun derinliğine (yüzeysel, kısmi kalınlık ve derin yanıklar) göre temel bir sınıflandırmaya yol açar6,7,8. Kısmi kalınlıktaki yanıklar (birinci ve ikinci derece) epidermisi ve dermisin farklı derinliklerini (yüzeysel veya derin dermis, yani yüzeysel ve derin ikinci derece yanıklar) içerir9. Özellikle, derin dermisteki eklerin hasar görmesi, adneksiyal epitelden10 yeniden epitelizasyon olasılığını dışlar. Tanım olarak, tam kalınlıkta yanıklar deri altı yağına, fasyaya ve/veya alttaki kasa (üçüncü derece yanıklar) ve bazen kemiğe (dördüncü derece yanıklar olarak da adlandırılır) ulaşır11,12.

Hastaneye yatıştan sonra, yanık hastaları doku debridmanı ve koruma arasında hassas bir dengeden oluşan bir stratejiyi içeren özel bakım alırlar. Hasarlı ve/veya ikincil olarak enfekte olmuş yumuşak dokunun, sağlıklı doku açığa çıkana kadar aşamalı olarak çıkarılması gerekir, bu da iyileşme sürecini iyileştirmek için özel pansumanların ve deri greftlerinin kullanılmasına izin verir 13,14,15,16. Yine de, iyileşme dokusunun kasıtsız olarak çıkarılmasını önlemek ve optimal iyileşme için komplikasyonları azaltmak için ameliyat sırasında dikkatli olunmalıdır. Biyolojik olarak, yanıklar, potansiyel olarak geri dönüşümlü iskemiyi gösteren bir 'gölge' veya 'durağan' bölge ile çevrili merkezi bir nekrotik alan sergiler. Bu alan ya bozulabilir, bu da genişlemiş bir nekroz bölgesi ile sonuçlanabilir ya da apoptotik süreci tersine çevirerek iyileşebilir 17,18. Yanıkların bu değişen şiddeti, cerrahların doğru bir şekilde değerlendirmesi için zorluklar yaratmakta ve konservatif tedaviler ile cerrahi eksizyon arasındaki dengeyi karmaşıklaştırmaktadır19. Bugüne kadar, yanma dönüşümünden önceki bu "gölge bölgeyi" karakterize etmeye yardımcı olacak verimli bir araç mevcut değildir. Bu tür araçları geliştirmek, bu hassas dengeyi optimize etmek için çok önemlidir.

İkincil yanık dönüşümünü azaltmaya yardımcı olmak için çeşitli tedaviler test edilmiştir. Yine de, şu anda klinikte spesifik bir tedavi mevcut değildir18. Yanık tedavilerindeki ilerlemelerin diğer örnekleri arasında modern yara örtülerinin ve nanomalzemeleringeliştirilmesi 20,21, doku mühendisliği yapılmış cilt22,23 ve yeni epidermal kültür yaklaşımları24,25 sayılabilir. Ayrıca, modern rekonstrüktif cerrahi ve fasyokutanöz flepler, özellikle kıvrım alanlarının patolojik iyileşmesini takiben yanık kontraktürleri olmak üzere uzun vadeli yan etkilerin yönetimini iyileştirmiştir26,27. Bu gelişmeler, yanık hastaları için tedavi stratejilerini ve yaşam kalitelerini iyileştiren umut verici beklentiler vermektedir, ancak son sonuçlar, fonksiyonel etkinin hem fiziksel hem de psikolojik alanlarda hala önemli olduğunu göstermektedir28. Birlikte ele alındığında, hem yanık teşhisinde hem de yanık tedavisinde yenilikçi gelişmelere olan talep büyüktür.

Genel olarak, birçok yaklaşım karmaşık yanık vakalarının tanısını, yönetimini ve tedavisini iyileştirmeyi amaçlamaktadır ve araştırmacıların bu yeni yaklaşımları test etmek için tekrarlanabilir ve ilgili bir modele ihtiyacı vardır. Birkaç organı ve sistemik reaksiyonları içeren biyolojik karmaşıklığı nedeniyle, yanık yarası sürecini incelemek için hiçbir in vitro model kendini kanıtlamamıştır29. Kemirgen modelleri, biyoloji, cilt mimarisi, elastikiyet ve altta yatan yapılara yapışma eksikliğindeki büyük farklılıklar nedeniyle insanlarla büyük farklılıklar göstermiştir29. Buna karşılık, domuz derisinin insan derisine yapısal benzerliği nedeniyle domuz modelinin alakalı olduğu kanıtlanmıştır 30,31,32. Benzer bir vaskülarizasyon, elastik lif bileşimi ve yenilenme zamanlaması ile kendini gösterir. Ayrıca, saç folikülü ve apokrin ekleri, klinik yüzeysel yanıklardagözlenebileceği gibi, adalı yeniden epitelizasyona izin verir 33,34. Daha spesifik olarak, Yucatan minipig modelleri ilginç özellikler sunarak, onları pigmentli cildi35 incelemek ve minimum fiziksel değişikliklerle uzun vadeli sonuçları36 ile ilgili hale getirir.

Bu makalenin amacı, Yucatán domuzlarında güvenilir bir çok dereceli yanık modelini tanımlamak ve aynı konuda birkaç ikinci ve üçüncü derece yanığın incelenmesini sağlamaktır. Bu, yanıkların yönetimi için tanısal ve terapötik yenilikleri incelemek için ilgili ve tekrarlanabilir bir model sağlar. Ayrıca, bu model farklı yanık tipleri ve şiddeti, yanık kontraktürü ve patolojik iyileşmenin incelenmesine izin veren uzun süreli bir takip ve spesifik özelliklere sahip olduğu bilinen pigmentli cilt diferansiyel davranışı içerir.

Protokol

Tüm hayvan çalışmaları, ARRIVE (Hayvan Araştırmaları: İn Vivo Deneylerin Raporlanması) kontrol listesi37'ye uygun olarak gerçekleştirildi ve protokol #2021N000271 kapsamında Massachusetts Genel Hastanesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) ile uyumluydu. Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi38'e uyularak hayvanlara insancıl bakım sağlanmıştır. Bu deneyler için beş adet 30 kg'lık dişi Yucatán minipigi kullanıldı. Hayvanlar ticari bir kaynaktan elde edilmiştir (bkz.

1. Ameliyat öncesi bakım ve anestezi

  1. Genel anesteziden önce hayvanları 12 saat aç bırakın.
  2. Anesteziyi 2-4 mg / kg tiletamin hidroklorür ve zolazepam hidroklorür ve 1-2 mg / kg ksilazin intramüsküler enjeksiyonu ile başlatın, ardından izofluranın (oksijende% 2-3) solunması (bkz.

2. Yanık yarası tasarımı ve randomizasyonu

  1. Aynı hayvan üzerinde negatif kontrollerle hem kısmi hem de tam kalınlıkta yanıkları incelemek için (bireyler arası varyasyon yok), paravertebral bölgedeki her domuzun sırtında sekiz yara oluşturun. Üç tam kalınlıkta yara, üç kısmi kalınlıkta yara ve iki kontrol yarası gerçekleştirin.
  2. Yaraları 1'den 8'e kadar numaralandırın ve sırttaki farklı anatomik konumlara farklı yanık dereceleri (kısmi kalınlık, tam kalınlık, kontrol) tahsis etmek için randomizasyon yapın.
    NOT: Önemi artırmak için her yaranın randomizasyonu (derinlik ve yer) yapılır: Domuz dermisinin kalınlık ve kollajen bileşimi açısından farklılık gösterdiği bilinmektedir39. Bu nedenle, potansiyel önyargıları azaltmak için her hayvan üzerinde randomizasyon kullanılır.

3. Dövme yarası sınırlaması

NOT: İlk prosedür, randomize yaraları lokalize etmek ve numaralandırmak için domuzun sırtında dairesel dövmeler oluşturmaktan oluşur (Şekil 1). Bu, daha iyi iklimlendirme sağlamak için ilk yanma prosedüründen iki gün önce gerçekleştirilir, ancak yanık prosedürünün yapıldığı gün de yapılabilir.

  1. Anesteziden (bkz. Adım 1) ve sırtüstü pozisyonda orotrakeal entübasyondan40 sonra, domuzu yüzüstü pozisyona getirin ve hayvanın rahatlığı ve stabilizasyonu için (ön ayakların, göbek bölgesinin ve arka ayakların altına) yumuşak takozlar (yatak çarşafları) yerleştirin41. Yeterli vücut ısısını korumak için hayvanın başına ve boynuna cebri hava ısıtma battaniyesi yerleştirin.
  2. Çizimlerin simetrisini sağlamak için domuzun sırtına ortada düz bir çizgi yerleştirin.
  3. Merkezi çizginin her iki tarafına, ondan 6,5 cm yanal olarak yerleştirilmiş bir dermografik kalem ( Malzeme Tablosuna bakınız) kullanarak iki dikey çizgi çizin. Dairelerin merkezini yerleştirmek için iki yanal çizgi kullanılacaktır.
  4. 4.5 cm çapındaki dairelerin her bir çiftini, iki farklı daire arasında en az 4 cm mesafe bırakarak simetrik olarak çizin (Şekil 1A).
  5. Çizimler yapıldıktan sonra, cilt bakteri florasını azaltmak için tek adımlı bir cilt hazırlığı (povidon-iyot% 7.5) yapın.
  6. Bir iğne dövme makinesi, steril siyah mürekkep ve sterilize edilmiş 5 noktalı bir iğne kullanarak sekiz adet 4,5 cm'lik daireden42'si dövme prosedürünü gerçekleştirin (bkz. Nihai sonuç Şekil 1B'de sunulmuştur.
  7. Yanık oluşturma işleminin gecikmesi durumunda, dövmelerin üzerine üçlü antibiyotikli merhem sürün ve şeffaf yapışkan pansuman ile örtün.

4. Yanık yarası oluşturma ve ileri yara pansumanı

NOT: Yanıklar, pirinç bloğun 30 saniye (değişmez) boyunca özel noktaya (randomizasyon) cilt ile temas edecek şekilde yerleştirilmesiyle oluşturulacaktır. Sıcaklık, yanma derinliğini belirleyecektir.

  1. Yanma prosedürünün olduğu gün, hayvan uyuşturulduktan ve Adım 1'de tartışıldığı gibi yüzüstü pozisyona getirildikten sonra, silindirik pirinç blokları alüminyum boncuklarla doldurulmuş paslanmaz çelik kaplara yerleştirin (bkz. Malzeme Tablosu). Kapları sıcaklık kontrollü bir sıcak plaka üzerine yerleştirin. Bir sıcak plakayı 65 °C'ye (kısmi kalınlıktaki yanıklar için) ve ikincisini 93 °C'ye (tam kalınlıkta yanık için, Şekil 2) ayarlayın.
    NOT: Kap, haşlanma yanıklarını önlemek için kuru tutulabilir (sıcaklık dengesine ulaşmak için 2-3 saat gerekir) veya yarı yarıya su ile doldurulabilir (sıcaklık dengesine ulaşmak için 30 dakika). Su kullanılıyorsa, haşlanma nedeniyle müteakip yanıkları önlemek için pirinç blokların adım 4.5'ten önce iyice kurutulması gerekir.
  2. Çekirdek sıcaklığını izlemek için merkezi açıklığından pirinç silindire bir termometre yerleştirin ve yüzey sıcaklığını bir sıcaklık tabancasıyla onaylayın. Gerekirse, küçük ısı dağılımına rağmen silindirde sıcak plakanın sıcaklığını 65 °C veya 93 ° C'ye yükseltin.
    NOT: Alüminyum folyo, kabı kaplamak ve ısı dağılımını daha da en aza indirmek ve istenen sıcaklığa daha hızlı ulaşmak için kullanılabilir.
  3. Paralel olarak, dövme prosedürüne benzer şekilde yakma prosedürü için hayvanı yüzüstü pozisyona getirin (adım 3.1).
  4. Hayvan yüzüstü pozisyonda hazır olduğunda, cildi üç adımda hazırlayın (povidon-iyot% 7.5, tuzlu su çözeltisi% 0.9, kurutma).
  5. Pirinç bloğu ısıya dayanıklı eldivenlerle kavrayın ve rastgeleleştirmeye bağlı olarak özel dövme noktasına yerleştirin. Pirinç blok cilde temas eder etmez zamanlayıcıyı başlatın. Cilde pirinç bloğun kendi ağırlığından daha fazla baskı uygulamamaya dikkat edin.
  6. 30 saniye sonra pirinç bloğu deriden çıkarın ve özel ısıtma kabına geri koyun. Sıcaklığı hedefe ulaşana kadar izleyin ve tüm yaralar için prosedürü tekrarlayın.
  7. Hayvan iyileştikten sonra pansuman stabilitesini sağlamak için gelişmiş bir çok katmanlı pansuman yapın.
    1. Kontroller de dahil olmak üzere her yanık yerine petrol emdirilmiş bir gazlı bez yerleştirin ve kuru, dokunmamış bir gazlı bez ve büyük şeffaf bir yapışkan örtü ile örtün.
    2. Şeffaf sargıların cilde daha iyi yapışması için çevredeki cilde bir benzoin çözeltisi tentürü püskürtün.
    3. Hayvanı, aşırı sıkmamaya dikkat ederek (pulmoner hacimlerin kısıtlanması) kendinden yapışkanlı yapışkan sargı sargısına sarın.
    4. Son bir kat boru şeklinde çorap (hayvana uyarlanmış boyut) ekleyerek pansumanı tamamlayın ( Malzeme Tablosuna bakınız). Alternatif olarak, hayvanın çalışma süresi boyunca pansumanı temiz tutamaması durumunda, özel olarak takılmış domuz ceketleri kullanılabilir
    5. Tek bir doz buprenorfin (0.05-0.1 mg / kg, IM) ve tek bir doz carprofen (2-4 mg / kg, IM) enjekte ettikten sonra hayvanın boynuna bir transdermal opioid (fentanil) yaması yerleştirerek doğru analjeziyi sağlayın.
    6. Her anesteziden sonra, iyileşmeden 2 saat sonrasına kadar hayvanları yakından izleyin. Gerekirse ılık bir ped kullanın ve tam ayakta durma pozisyonuna ulaştıktan sonra yiyecekleri serbestçe sağlayın.

5. Tam kalınlıkta yanık eskarotomisi

NOT: Ameliyattan 1 ila 3 gün sonra, hayvanlara üçüncü derece yanıkları takiben eskarın tam kalınlıkta cerrahi eksizyonu yapılacaktır.

  1. Anestezi, entübasyon ve hayvanı sırtüstü pozisyona getirme dahil olmak üzere hayvanın benzer şekilde hazırlanmasından sonra, cildi üç aşamalı deri hazırlığı ile hazırlayın, hayvanın sırtının steril örtülmesini gerçekleştirin.
  2. Yaralanma tipini doğrulamak için yara üzerinde 4 mm'lik punch biyopsileri ( Malzeme Tablosuna bakınız) yapın.
  3. Eskarotomiyi43,44, derin dermise ulaşana kadar steril bir neşter bıçağı (n°15) ile eskarın dairesel bir kesisi ile gerçekleştirin.
  4. Eskarın bir tarafını bir çift steril Adson doku forseps (2/1 dişli) ile sıkıca kavrayın (Malzeme Tablosuna bakın) ve eskarın derin sınırını ortaya çıkarmak için yukarı doğru bağlayın.
  5. Derin dermis/alttaki fasya içinde aynı düzlemde kalırken neşter bıçağını kullanarak eskarotomiye devam edin. Kanayan bir dermis, doku canlılığının bir işareti olarak kabul edilir.
    1. İşlem sırasında bir arteriyol kesilirse, bipolar pıhtılaşma forsepsleri kullanarak minimal bir koterizasyon gerçekleştirin (bkz. Malzeme Tablosu). DİKKAT: Oluşturulan yara yatağının kapsamlı koterizasyonu iyileşmenin gecikmesine neden olabilir ve kesinlikle kaçınılmalıdır.
  6. Kesin pansumanı yerleştirmeden önce lokal hemostazı arttırmak için yara yatağına 5 dakika boyunca ilk kuru guaze setini koyun.
  7. Yaraları daha önce olduğu gibi pansuman yapın (adım 4.7), boşluğu doldurmak için birkaç kuru gazlı bez ilavesi. Daha önce belirtildiği gibi aynı katmanları uygulayın: Tentür benzoin spreyi, yapışkanlı şeffaf örtü, kendinden yapışkanlı sargı, boru şeklinde çorap.
  8. Opioïd transdermal yamayı değiştirerek ve Caprofen (2-4 mg / kg, IM) enjekte ederek analjezi sağlayın.

6. Takip yara pansumanları

NOT: Sonraki pansumanlar, deneysel tedavi tasarımına ve hayvanın toleransına bağlı olarak her 2 ila 7 günde bir yapılır. Kuru bir ortamda yeniden epitelizasyona izin vermek ve hayvanın toleransını artırmak için yara pansumanları 21 gün sonra durdurulabilir. Alternatif olarak, tedavi grubu nemli veya ıslak bir ortam gerektiriyorsa, pansumanlar çalışmanın sonuna kadar uzatılabilir. Hem akut hem de uzamış iyileşme süreçlerini incelemek için takip süresi 10 haftaya kadar uzatıldı.

  1. Hayvanı kısa bir süre için uyuşturun ve bir burun konisi (izofluran 2-5 L / dak) ile sırtüstü pozisyona getirin.
  2. Önceki pansumanları çıkarın ve steril% 0.9 salin ve steril gazlı bez kullanarak yaraları temizleyin.
  3. Mümkünse deneysel tedaviyi uygulayın.
  4. Benzer şekilde, çalışma tarafından ihtiyaç duyulursa bu prosedür sırasında sonraki biyopsileri gerçekleştirin. Hayvan daha sonra carprofen (2-4 mg / kg, IM, 24 saat etki) gibi ağrı kesici ilaçlar almalıdır.
  5. Kontrol yaraları da dahil olmak üzere tüm yara yerlerini petrol emdirilmiş veya eşdeğer gazlı bez, kuru, dokumasız gazlı bez ve yapışkan şeffaf sargı ile örtün.

Sonuçlar

Şekil 2A,B, bir Yucatàn minipiginin sırtındaki çoklu yanıkların sonuçlarını göstermektedir. Yaralar (I) ve (VII) kontrol yaralarıdır (37 °C). İkinci derece yaralar (II; III ve VIII) yoğun kızarıklık ve kabarcıklar ile kendini gösterir. Buna karşılık, üçüncü derece yaralar (IV; V; ve VI) soluktur ve palpasyona dayanıklıdır. Yara VIII'in ikinci ve üçüncü derece arasında orta düzeyde göründüğüne dikkat ...

Tartışmalar

Yanık yaralanmalarını takiben yara iyileşmesi, çeşitli tedavi seçenekleri ve hasta bakımı için dikkat edilmesi gereken hususlarla birkaç ay kadar sürebilen uzun bir süreçtir 2,13. Bunu incelemek için güvenilir ve tekrarlanabilir bir modele ihtiyaç vardır. Esas olarak kemirgenler 29,45,46 ve domuzlar29,47

Açıklamalar

Yazarların beyan edebilecekleri herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Bu çalışma, Shriners Çocuk Araştırma Bursu'ndan S.N.T.'ye sağlanan cömert fonlarla desteklenmiştir. YB, Shriners Çocuk Hastanesi tarafından desteklenmiştir. Ayrıca, ABD Ulusal Sağlık Enstitüsü'nden (K99/R00 HL1431149; R01HL157803; R01DK134590, R24OD034189), Amerikan Kalp Derneği (18CDA34110049), Harvard Tıp Okulu Eleanor ve Miles Shore Bursu, Polsky Aile Vakfı ve MGH Cerrahi Bölümü ve / veya MGH Araştırma İcra Komitesi adına Claflin Seçkin Bilim Adamı Ödülü. Ayrıca, Massachusetts Genel Hastanesi Araştırma İcra Komitesi tarafından Tıbbi Keşif Fonu (FMD) ödülünün RJ'ye verilmesi için sağlanan desteği kabul ediyoruz. Son olarak, "Fondation des Gueules Cassées" (Fransa), Rennes Üniversitesi (Fransa), CHU de Rennes (Fransa) ve Fransız Plastik Cerrahi Derneği'nin Y.B.'ye verdiği destek büyük ölçüde kabul görmektedir. Yazarlar, hayvanların anestezisine katkıları ve yardımları için Knight Surgery Research Laboratory'ye teşekkür eder.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
Adson tissue forcepsJarit130-234
Aluminum beadsLab Armor42370-002Lab Armor Beads 
Buprenorphine hydrochlorideRanbaxy PharmaceuticalsNDC:12469-0757-01Buprenex Injectable
CarprofenPfizerNADA 141-199Rymadyl 50mg/ml injectable 
Cylindric brass blockHand-madeN/AEngineering drawing included in the manuscript
Dermographic penMcKessonSurgical Skin Marker Sterile
Disposable #15 surgical scalpelsMedlineMDS15315Scalpel blades
Fentanyl patchMylanNDC:60505-7082Fentanyl Transdermal System
Isoflurane PiramalNDC:66794-013-25Isoflurane, USP
McPherson Bipolar coagulation forcepsBovieA842Reusable, autoclavable
Miltex assorted biopsy punches (3,4 and 5 mm)Integra33-38Biopsy punches- size to adapt to the study
Non woven gauzeStarryshineGZNW222 x 2" non woven 4 ply medical gauze pads
Povidone-IodineBetadineNDC:0034-9200-88Surgical scrub 7.5% 
Sterile isotonic sodium chloride solution 0.9%Aqualite SystemRL-2095Sterile saline solution
Tattoo inkSpaulding & RogersBlack - 2 oz - #9053
Tattoo markerSpaulding & RogersSpecial Electric Tattoo Marker
Tattoo needleSpaulding & Rogers1310251Tattoo 5 point needle
Tegaderm Transparent Film Dressing3M1.628Large transparent adhesive dressing
Temperature-controlled hot plateCole-Parmer03407-11StableTemp hot plate stirrer
ThermometerAmerican ScientificU14295Tube mercury thermometerr
Tiletamine and zolazepam hydrochlorideZoetisNDC:54771-9050Telazol
Tincture of Benzoin SpraySmith&Nephew407000Adhesive layer spray
Triple Antibiotic ointmentFougeraNDC 0168-0012-31Triple antibiotic ointment
Tubular stockinetteMedlineNONNET02Curad Medline Latex Free Elastic Nets
Warming blanket3MBair Hugger 750 warming unit
Xeroform Occlusive Gauze StripCovidien8884433301Xeroform petrolatum wound dressings
XylazineVetoneNDC:13985-704-10AnaSed LA
Yucatàn minipigs (female, 30 kg)Sinclair Bio ResourcesN/AFull pigmentation 

Referanslar

  1. Rui, P., Kang, K. National hospital ambulatory medical care survey: 2017 emergency department summary tables. National Center for Health Statistics. , (2017).
  2. Carter, J. E., et al. Evaluating real-world national and regional trends in definitive closure in u.S. Burn care: A survey of u.S Burn centers. J Burn Care Res. 43 (1), 141-148 (2022).
  3. Atiyeh, B. S., Gunn, S. W., Hayek, S. N. Military and civilian burn injuries during armed conflicts. Ann Burns Fire Disasters. 20 (4), 203-215 (2007).
  4. Gurney, J., Tadlock, M. D., Cancio, L. C. Burn injuries from a military perspective. Current Trauma Reports. 8, 113-126 (2022).
  5. Pruitt, B. A., Wolf, S. E., Mason, A. D. Epidemiological, demographic, and outcome characteristics of burn injury. Total burn care. 4, 15-45 (2012).
  6. Yadav, D. P., et al. Spatial attention-based residual network for human burn identification and classification. Sci Rep. 13 (1), 12516 (2023).
  7. Sadeghipour, H., et al. Blockade of igm-mediated inflammation alters wound progression in a swine model of partial-thickness burn. J Burn Care Res. 38 (3), 148-160 (2017).
  8. Gandolfi, S., et al. Assessment of quality-of-life in patients with face-and-neck burns: The burn-specific health scale for face and neck (bshs-fn). Burns. 44 (6), 1602-1609 (2018).
  9. Lőrincz, A., et al. Paediatric partial-thickness burn therapy: A meta-analysis and systematic review of randomised controlled trials. Life (Basel). 12 (5), 619 (2022).
  10. Keenan, C. S., et al. Full-thickness skin columns: A method to reduce healing time and donor site morbidity in deep partial-thickness burns. Wound Repair Regen. 31 (5), 586-596 (2023).
  11. Ali, H. A., Fayi, K. A., Alkhathami, A. M., Alturaiki, N., Alshammari, E. M. Foot drop in patients with extensive 3rd and 4th degree burn, case series study. Int. J. Burn. Trauma. 13 (1), 8-12 (2023).
  12. Leković, A., Nikolić, S., Djukić, D., Živković, V. Burn index, burn characteristics and carboxyhemoglobin levels in indoor fire-related deaths: Significance and interpretation of the autopsy findings. Forensic Sci Int. 345, 111618 (2023).
  13. Costa, P. C. P., et al. Nursing care directed to burned patients: A scoping review. Rev Bras Enferm. 76 (3), e20220205 (2023).
  14. Souto, J., Rodrigues, A. G. Reducing blood loss in a burn care unit: A review of its key determinants. J Burn Care Res. 44 (2), 459-466 (2023).
  15. Wong, L., Rajandram, R., Allorto, N. Systematic review of excision and grafting in burns: Comparing outcomes of early and late surgery in low and high-income countries. Burns. 47 (8), 1705-1713 (2021).
  16. Abdel-Sayed, P., Hirt-Burri, N., De Buys Roessingh, A., Raffoul, W., Applegate, L. A. Evolution of biological bandages as first cover for burn patients. Adv Wound Care. 8 (11), 555-564 (2019).
  17. Singer, A. J., Mcclain, S. A., Taira, B. R., Guerriero, J. L., Zong, W. Apoptosis and necrosis in the ischemic zone adjacent to third degree burns. Acad Emerg Med. 15 (6), 549-554 (2008).
  18. Lu, M., et al. Research advances in prevention and treatment of burn wound deepening in early stage. Front Surg. 9, 1015411 (2022).
  19. Tuncer, H. B., et al. Do pre-burn center management algorithms work? Evaluation of pre-admission diagnosis and treatment adequacy of burn patients referred to a burn center. J Burn Care Res. 45 (1), 180-189 (2024).
  20. Ashwini, T., et al. Transforming wound management: Nanomaterials and their clinical impact. Pharmaceutics. 15 (5), 1560 (2023).
  21. Caffin, F., Boccara, D., Piérard, C. The use of hydrogel dressings in sulfur mustard-induced skin and ocular wound management. Biomedicines. 11 (6), 1626 (2023).
  22. Oryan, A., Alemzadeh, E., Moshiri, A. Burn wound healing: Present concepts, treatment strategies and future directions. J Wound Care. 26 (1), 5-19 (2017).
  23. Elfawy, L. A., et al. Sustainable approach of functional biomaterials-tissue engineering for skin burn treatment: A comprehensive review. Pharmaceuticals (Basel). 16 (5), 701 (2023).
  24. Gardien, K. L., Middelkoop, E., Ulrich, M. M. Progress towards cell-based burn wound treatments). Regen Med. 9 (2), 201-218 (2014).
  25. Baus, A., et al. marjolin ulcers after cultured epidermal autograft in severely burned patients: A rare case series and literature review. Eur J Dermatol. 31 (6), 759-770 (2021).
  26. Obaidi, N., Keenan, C., Chan, R. K. Burn scar management and reconstructive surgery. Surg Clin North Am. 103 (3), 515-527 (2023).
  27. Lellouch, A. G., Ng, Z. Y., Pozzo, V., Suffee, T., Lantieri, L. A. Reconstruction of post-burn anterior neck contractures using a butterfly design free anterolateral thigh perforator flap. Arch Plast Surg. 47 (2), 194-197 (2020).
  28. Spronk, I., et al. Health related quality of life in adults after burn injuries: A systematic review. PLoS One. 13 (5), e0197507 (2018).
  29. Abdullahi, A., Amini-Nik, S., Jeschke, M. G. Animal models in burn research. Cell Mol Life Sci. 71 (17), 3241-3255 (2014).
  30. Carney, B. C., et al. Evaluation of healing outcomes combining a novel polymer formulation with autologous skin cell suspension to treat deep partial and full thickness wounds in a porcine model: A pilot study. Burns. 48 (8), 1950-1965 (2022).
  31. El Masry, M., et al. Swine model of biofilm infection and invisible wounds. J Vis Exp. (196), e65301 (2023).
  32. Nakano, T., et al. Dried human-cultured epidermis accelerates wound healing in a porcine partial-thickness skin defect model. Regen Ther. 22, 203-209 (2023).
  33. Kong, R., Bhargava, R. Characterization of porcine skin as a model for human skin studies using infrared spectroscopic imaging. Analyst. 136 (11), 2359-2366 (2011).
  34. Rosenberg, L. K., et al. A comparison of human and porcine skin in laser-assisted drug delivery of chemotherapeutics. Lasers Surg Med. 53 (1), 162-170 (2021).
  35. Xu, N., et al. Light-activated sealing of skin wounds. Lasers Surg Med. 47 (1), 17-29 (2015).
  36. Yao, F., et al. Age and growth factors in porcine full-thickness wound healing. Wound Repair Regen. 9 (5), 371-377 (2001).
  37. Percie Du Sert, N., et al. The arrive guidelines 2.0: Updated guidelines for reporting animal research. PLoS Biol. 18 (7), e3000410 (2020).
  38. Committee for the Update of the Guide for The care and Use of Laboratory Animals. . Guide for the care and use of laboratory animals. , (2011).
  39. Turner, N. J., Pezzone, D., Badylak, S. F. Regional variations in the histology of porcine skin. Tissue Eng Part C Methods. 21 (4), 373-384 (2015).
  40. Theisen, M. M., et al. Ventral recumbency is crucial for fast and safe orotracheal intubation in laboratory swine. Lab Anim. 43 (1), 96-101 (2009).
  41. Moon, P. F., Smith, L. J. General anesthetic techniques in swine. Vet Clin North Am Food Anim Pract. 12 (3), 663-691 (1996).
  42. Granick, M. S., Heckler, F. R., Jones, E. W. Surgical skin-marking techniques. Plast Reconstr Surg. 79 (4), 573-580 (1987).
  43. Grünherz, L., et al. Enzymatic debridement for circumferential deep burns: The role of surgical escharotomy. Burns. 49 (2), 304-309 (2023).
  44. Krieger, Y., et al. Escharotomy using an enzymatic debridement agent for treating experimental burn-induced compartment syndrome in an animal model. J Trauma. 58 (6), 1259-1264 (2005).
  45. Sharma, R., et al. Rat burn model to study full-thickness cutaneous thermal burn and infection. J Vis Exp. (186), e64345 (2022).
  46. Hu, X., et al. Modification and utility of a rat burn wound model. Wound Repair Regen. 28 (6), 797-811 (2020).
  47. Wang, X. Q., Kravchuk, O., Kimble, R. M. A retrospective review of burn dressings on a porcine burn model. Burns. 36 (5), 680-687 (2010).
  48. Monteiro-Riviere, N., Riviere, J. The pig as a model for human skin research. Swine in Biomedical Research: Update on Animal Models. , 17-22 (2005).
  49. Howroyd, P. C., Peter, B., De Rijk, E. Review of sexual maturity in the minipig. Toxicol Pathol. 44 (4), 607-611 (2016).
  50. Nair, X., Tramposch, K. M. The yucatan miniature swine as an in vivo model for screening skin depigmentation. J Dermatol Sci. 2 (6), 428-433 (1991).
  51. Roberts, W. E. Skin type classification systems old and new. Dermatol Clin. 27 (4), 529-533 (2009).
  52. Rice, P., Brown, R. F., Lam, D. G., Chilcott, R. P., Bennett, N. J. Dermabrasion--a novel concept in the surgical management of sulphur mustard injuries. Burns. 26 (1), 34-40 (2000).
  53. Salles, A. G., et al. Fractional carbon dioxide laser in patients with skin phototypes iii to vi and facial burn sequelae: 1-year follow-up. Plast Reconstr Surg. 142 (3), 342-350 (2018).
  54. Bowes, L. E., et al. Treatment of pigmented hypertrophic scars with the 585 nm pulsed dye laser and the 532 nm frequency-doubled nd:Yag laser in the q-switched and variable pulse modes: A comparative study. Dermatol Surg. 28 (8), 714-719 (2002).
  55. Ud-Din, S., Bayat, A. New insights on keloids, hypertrophic scars, and striae. Dermatol Clin. 32 (2), 193-209 (2014).
  56. Zhu, K. Q., et al. The female, red duroc pig as an animal model of hypertrophic scarring and the potential role of the cones of skin. Burns. 29 (7), 649-664 (2003).
  57. Stricker-Krongrad, A., Shoemake, C. R., Bouchard, G. F. The miniature swine as a model in experimental and translational medicine. Toxicol Pathol. 44 (4), 612-623 (2016).
  58. Branski, L. K., et al. A porcine model of full-thickness burn, excision and skin autografting. Burns. 34 (8), 1119-1127 (2008).
  59. Kim, J. Y., Dunham, D. M., Supp, D. M., Sen, C. K., Powell, H. M. Novel burn device for rapid, reproducible burn wound generation. Burns. 42 (2), 384-391 (2016).
  60. Seswandhana, R., et al. A modified method to create a porcine deep dermal burn model. Ann Burns Fire Disasters. 34 (2), 187-191 (2021).
  61. Fan, G. Y., et al. Severe burn injury in a swine model for clinical dressing assessment. J Vis Exp. (141), e57942 (2018).
  62. Shaw, P., et al. Early cutaneous inflammatory response at different degree of burn and its significance for clinical diagnosis and management. J Tissue Viability. 32 (4), 550-563 (2023).
  63. Asuku, M., Shupp, J. W. Burn wound conversion: Clinical implications for the treatment of severe burns. J Wound Care. 32, S11-S20 (2023).
  64. Bohr, S., et al. Resolvin d2 prevents secondary thrombosis and necrosis in a mouse burn wound model. Wound Repair Regen. 21 (1), 35-43 (2013).
  65. Yucel, B., Coruh, A., Deniz, K. Salvaging the zone of stasis in burns by pentoxifylline: An experimental study in rats. J Burn Care Res. 40 (2), 211-219 (2019).
  66. Xiao, M., et al. 3,4-methylenedioxy-β-nitrostyrene ameliorates experimental burn wound progression by inhibiting the nlrp3 inflammasome activation. Plast Reconstr Surg. 137 (3), 566-575 (2016).
  67. Yeganeh, P. M., Tahmasebi, S., Esmaeilzadeh, A. Cellular and biological factors involved in healing wounds and burns and treatment options in tissue engineering. Regen Med. 17 (6), 401-418 (2022).
  68. Abbas, O. L., et al. Prevention of burn wound progression by mesenchymal stem cell transplantation: Deeper insights into underlying mechanisms. Ann Plast Surg. 81 (6), 715-724 (2018).
  69. Rizzo, J. A., Burgess, P., Cartie, R. J., Prasad, B. M. Moderate systemic hypothermia decreases burn depth progression. Burns. 39 (3), 436-444 (2013).
  70. Battal, M. N., et al. Reduction of progressive burn injury by using a new nonselective endothelin-a and endothelin-b receptor antagonist, tak-044: An experimental study in rats. Plast Reconstr Surg. 99 (6), 1610-1619 (1997).
  71. Bohr, S., et al. Alternative erythropoietin-mediated signaling prevents secondary microvascular thrombosis and inflammation within cutaneous burns. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (9), 3513-3518 (2013).
  72. Holzer, P. W., et al. Clinical impact of cryopreservation on split thickness skin grafts in the porcine model. J Burn Care Res. 41 (2), 306-316 (2020).
  73. Davis, S. C., Mertz, P. M., Eaglstein, W. H. Second-degree burn healing: The effect of occlusive dressings and a cream. J Surg Res. 48 (3), 245-248 (1990).
  74. Svensjö, T., Pomahac, B., Yao, F., Slama, J., Eriksson, E. Accelerated healing of full-thickness skin wounds in a wet environment. Plast Reconstr Surg. 106 (3), 602-612 (2000).
  75. Kuznetsova, T. A., Andryukov, B. G., Besednova, N. N. Modern aspects of burn injury immunopathogenesis and prognostic immunobiochemical markers (mini-review). BioTech (Basel). 11 (2), 18 (2022).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Yan k Yara yile mesiDomuz Yan Modeliok Derinlikli Yan k YaralarYucatan MinipigsYan k Derinli iYan k Te hisiYan k TedavisiTermal Yan klarYara PansumanlarYapay DeriNanopartik ller

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır