Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.
Tek çekirdekli yeni nesil dizileme analizlerini desteklemek için kriyoprezervasyonlu indüklenmiş pluripotent kök hücre türevli stromal/endotel ve kan hücresi tiplerinden yüksek kaliteli çekirdeklerin çıkarılması için bir protokol açıklıyoruz. Yüksek kaliteli, sağlam çekirdekler üretmek, multiomik deneyler için zorunludur, ancak bazı laboratuvarlar için sahaya giriş için bir engel olabilir.
İndüklenmiş pluripotent kök hücre (iPSC) tabanlı modeller, kan gelişimini anlamak için mükemmel platformlardır ve iPSC'den türetilen kan hücreleri, klinik test reaktifleri ve transfüzyon hücre terapötikleri olarak translasyonel faydaya sahiptir. Tek çekirdekli RNA dizilimi (snRNAseq) ve Transpozaz Erişilebilir Kromatin dizilimi için Test (snATACseq) dahil ancak bunlarla sınırlı olmamak üzere multiomik analizin ortaya çıkışı ve genişlemesi, hücre gelişimi anlayışımızda devrim yaratma potansiyeli sunar. Bu, in vitro hematopoietik modeller kullanan gelişimsel biyolojiyi içerir. Bununla birlikte, bozulmamış çekirdekleri kültürlenmiş veya birincil hücrelerden izole etmek teknik olarak zor olabilir. Farklı hücre tipleri genellikle hücresel sertliğe ve içeriğe bağlı olarak özel nükleer preparatlar gerektirir. Bu teknik zorluklar veri kalitesini sınırlayabilir ve multiomik çalışmaları sürdürmek isteyen araştırmacılar için bir engel teşkil edebilir. Hücre toplama ve/veya işleme ile ilgili sınırlamalar nedeniyle numune kriyoprezervasyonu genellikle gereklidir ve donmuş numuneler, bozulmamış nükleer izolasyon için ek teknik zorluklar ortaya çıkarabilir. Bu yazıda, tek çekirdekli multiomik iş akışlarında kullanılmak üzere in vitro hematopoietik gelişimin farklı aşamalarında iPSC'den türetilmiş hücrelerden yüksek kaliteli çekirdekleri izole etmek için ayrıntılı bir yöntem sunuyoruz. Yöntem geliştirmeyi, iPSC'den türetilen yapışık stromal/endotelyal hücrelerden ve yapışık olmayan hematopoietik progenitör hücrelerden çekirdeklerin izolasyonu üzerine odakladık, çünkü bunlar yapısal ve hücresel kimlik açısından çok farklı hücre tiplerini temsil eder. Açıklanan sorun giderme adımları, nükleer topaklanmayı ve döküntüleri sınırlayarak, sonraki analizler için çekirdeklerin yeterli miktar ve kalitede geri kazanılmasına izin verdi. Benzer yöntemler, çekirdekleri diğer kriyoprezervasyonlu hücre tiplerinden izole etmek için uyarlanabilir.
Hematopoez nispeten iyi karakterize edilmiş bir gelişimsel sistemdir, ancak in vitro olarak kan hücresi oluşumunu özetleyememe, ilgili faktörlerin eksik bir şekilde anlaşıldığını gösterir. İndüklenmiş pluripotent kök hücre (iPSC) tabanlı hematopoez modelleri, temel gelişimsel faktörlerin ve ilgili biyolojinin aydınlatılmasına yardımcı olabilir. iPSC sistemi ayrıca kan bozukluklarını incelemek için mükemmel bir model sunar ve iPSC bazlı kan hücreleri, translasyonel ve terapötik olarak ilgili reaktifler 1,2,3,4 üretmek için geliştirilmiştir.
1. Hücrelerin dondurularak saklanması
2. Hücrelerin çözülmesi
Dondurularak korunmuş iPSC'den türetilmiş yapışık stromal/endotel hücrelerinden ve yapışık olmayan (yüzen) hematopoietik progenitör hücrelerden çekirdekleri çıkarmak için yukarıda belirtilen protokolü kullandık. Nükleer izolasyon prosedürünün ayrıntılı bir şematik gösterimi Şekil 1'de bulunabilir.
Morfolojik inceleme için, izole edilmiş çekirdekler tripan mavisi ile boyandı ve mikroskop altında görüntülendi. Nükleer morfoloji.......
Protokol içindeki kritik adımlar
Yüksek kaliteli çekirdeklerin izole edilmesi, hızla gelişen mevcut tek çekirdek tabanlı yeni nesil dizileme modalitelerinin başarılı bir şekilde uygulanması için esastır. Bu yaklaşımlarla, özellikle de dondurularak korunmuş örneklerle ilgilenen laboratuvarlar için mevcut engelleri göz önünde bulundurarak, niyetimiz daha önce donmuş hücreler için özel olarak tasarlanmış bir nükleer izolasyon tekniği oluşturmaktı. Dondurularak saklanmı.......
Yazarların ifşa edecek herhangi bir çıkar çatışması yoktur.
Yazarlar, rehberlik ve önerileri için Jason Hatakeyama'ya (10x Genomik) ve Diana Slater'a (Philadelphia Uygulamalı Genomik Merkezi Çocuk Hastanesi) teşekkür eder. Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri (CST'ye HL156052) tarafından desteklenmiştir.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cell Culture Reagents | |||
Dimethyl sulfoxide solution (DMSO) | Sigma | 673439 | |
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) | Corning | 21031CV | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GeminiBio | 100106 | |
RPMI Medium 1640 (1X) | Gibco | 11875093 | |
Cells | |||
Induced pluripotent stem cells | N/A | N/A | The iPSCs used in this study were obtained through the CHOP Human Pluripotent Stem Cell Core Facility |
Cell Staining Reagents | |||
Trypan Blue Solution | Corning | 25900CI | |
Dead Cell Removal Reagents | |||
Calcium chloride (CaCl2) | Sigma | C4901 | |
EasySep Dead Cell Removal (Annexin V) Kit | StemCell Technologies | 17899 | This kit is designed for the depletion of unwanted cell types labeled with biotin. The kit includes Dead Cell Removal (Annexin V) Cocktail, Biotin Selection Cocktail, and Dextran beads. This kit targets phosphatidylserine on the outer leaflet of the cell membrane of apoptotic cells using Annexin V. Unwanted cells are labeled with Annexin V, Biotinylated antibodies, and magnetic particles, and separated without columns using an EasySep magnet. Desired cells are simply poured off into a new tube. |
Materials | |||
10 µl Micropipette | Wards science | 470231606 | |
100 µl Micropipette | Wards science | 470231598 | |
1000 µl Extended Universal Tip | Oxford Lab Products | OAR-1000XL-SLF | |
1000 µl Micropipette | Wards science | 470231602 | |
2.0 ml Cryogenic vials | Corning | 431386 | |
20 µl Micropipette | Wards science | 470231608 | |
200 µl Micropipette | Wards science | 470231600 | |
5ml Polystyrene Round-Bottom Tube | Falcon | 352063 | |
Corning DeckWork 0.1-10 µl Pipet Tip Station | Corning | 4143 | |
Corning DeckWork 1-200 µl Pipet Tip Station | Corning | 4144 | |
Counting chamber | CytoSMART | 699910591 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
Magnet | StemCell Technologies | 18000 | |
NALGENE Cryo 1°C Freezing Container | Nalgene | 51000001 | |
Nuclei Isolation Reagents | Nuclei isolation reagents include Lysis Buffer, Wash buffer, and Diluted Nuclei Buffer,and Lysis Dilution Buffer. The constitution of these buffers are in the Table 1, 2, and 3. Our nuclei isolation method improved isolation from the standard kit protocols (e.g., 10x Genomics Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression User Guide [CG000338]). This protocol can be used with several commercial kits, including the Chromium Next GEM Single Cell Multiome ATAC + Gene Expression Reagent Bundle, 16 rxns (PN-1000283). | ||
Dead Cell Removal kit | STEMCELL | 17899 | |
Digitonin | Thermo Fisher Scientific | BN2006 | |
DL-Dithiothreitol solution (DTT) | Sigma | 646563 | |
Flowmi Cell Strainer, 40 µm | Bel-Art | H136800040 | |
MACS bovine serum albumin (BSA) stock Solution | Miltenyi Biotec | 130091376 | |
Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma | 7786303 | |
Magnesium Chloride Solution, 1 M | Sigma | M1028 | |
Nonidet P40 Substitute | Sigma | 74385 | |
Nuclease-Free Water | Thermo Fisher Scientific | AM9937 | |
Nuclei Buffer (20X) | 10X Genomics | 2000153 | |
Protector RNase inhibitor | Sigma | 3335399001 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma | S7653-250G | |
Sodium Chloride Solution, 5 M | Sigma | 59222C | |
Trizma Hydrochloride Soultion, pH 7.4 | Sigma | T2194 | |
Trizma hydrochloride (Tris-HCl) (pH7.4) | Sigma | T3252-500G | |
Tween 20 | Bio-Rad | 1662404 | |
Other equipment | |||
Automated cell counter | CytoSMART | 699910591 | |
Microscope | Zeiss | Primostar 3 |
Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi
Izin talebiThis article has been published
Video Coming Soon
JoVE Hakkında
Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır