Finansman: Bu çalışma, Çin Ulusal Bilim Vakfı (32270538), Çin Ulusal Anahtar Ar-Ge Programı (2022YFF0710603), Pekin Doğa Bilimleri Vakfı (6222046) ve G.H.W. Yazar katkılarına verilen CAS-CSIRO finansman programı (152111KYSB20210011) aracılığıyla CAS stratejik finansmanı tarafından desteklenmiştir: tüm yazarlar derlemenin kapsamını ve odağını geliştirmiş ve makalenin yazılmasına katkıda bulunmuştur.

1. Mikropsuz Nasonia yetiştirme ortamının hazırlanması
<ol><li>Piyasada satılan L. sericata pupalarını (bkz. Malzeme Tablosu) tepsi veya kağıt gibi tüm pupaları barındırabilecek bir yüzeye yerleştirin. Az gelişmiş larvaları, koyu yaşlı pupaları, boş pupa kabuklarını, talaşları veya diğer safsızlıkları atın. Sadece kahverengimsi-kırmızı renkli genç pupaları saklayın ve bunları bir behere (yaklaşık 3.000-4.000 pupa) aktarın. NOT: Birçok deney yapıldıktan sonra, karanlık eski pupalardan yapılan ortamın kolayca karardığı ve mikropsuz eşekarısı gelişimini durdurduğu bulunmuştur. Bu fenomen, genç kahverengimsi-kırmızı pupaları orta üretmek için kullanırken ortaya çıkmadı. Bunun nedeni hala belirsizdir ve doğrulamak için daha fazla araştırma yapılması gerekmektedir.</li>
	<li>Pupaların tüm yüzeyini kaplayacak kadar behere yeterli miktarda deiyonize su ekleyin. Beherin ağzını infoil veya gazlı bezle sarın, pupaların yüzeyindeki safsızlıkları temizlemek için beheri sallayın ve ardından suyu dökün. Üç ila beş kez tekrarlayın.</li>
	<li>Temizlenmiş L. sericata pupalarını bir sarımsak presinin filtre tankına yerleştirin, sert sıkın ve L. sericata pupalarının doku sıvısını 50 mL'lik steril bir santrifüj tüpünde toplayın . Ardından, pupa pisliklerini dökün ve hepsi sıkılana kadar sarımsak presinin filtre tankına yeni pupa koyun. NOT: Wang ve ark.14 tarafından kullanılan iğne ekstrüzyon cihazına kıyasla, sarımsak presi daha uygundur ve interstisyel sıvıyı daha iyi ayırabilir. Bu ilerleme, NRM'nin büyük ölçekli üretimi ve uzun süreli depolanması için temel oluşturmaktadır.</li>
	<li>Karışımı 4 °C'de (25.000 x g) 10 dakika boyunca santrifüj edin. Santrifüjlemeden sonra, karışım aşağıdan yukarıya doğru üç katmana ayrılacaktır: tortu tabakası, protein tabakası ve yağ tabakası (Şekil 1).</li>
	<li>Filtrasyon sırasında tıkanmayı önlemek için, protein tabakasını 18 G steril bir iğne kullanarak aspire edin ve yeni bir 50 mL konik steril polipropilen santrifüj tüpüne aktarın.</li>
	<li>Protein ekstraktına 1: 1 oranında ticari sıvı Drosophila ortamı (bakınız Malzeme Tablosu) ekleyin. NOT: NRMv3 ile karşılaştırıldığında, konakçı ve NRM hammaddesi olarak daha uygun ticarileştirilmiş L. sericata kullanılmıştır. Bu nedenle, beslenme oranı, steril Nasonya'nın büyümesi ve gelişmesi için daha uygun olan NRMv3'e dayanarak 1: 2'den 1: 1'e ayarlandı (Şekil 2).</li>
	<li>Farklı boyutlardaki parçacıkları gidermek için karışık ortamı (Drosophila ortamı ve L. sericata pupa'nın protein özü), farklı gözenek boyutlarına (8, 1.2, 0.8 ve 0.45 μm; bkz. Malzeme Tablosu) sahip bir vakum filtreleme sistemi kullanarak filtreleyin. Tıkanmayı önlemek için, akış yavaşladığında filtre kağıdını değiştirin. NOT: Her filtreleme için yeni bir 50 mL steril santrifüj tüpünün kullanılması gerekmektedir.</li>
	<li>Sıvıyı 10 dakika boyunca 4 ° C'de (15.000 x g) tekrar santrifüj edin ve süpernatant ortamı 0,22 μm şırınga filtresiyle sterilize edin. Yukarıdaki adımları bir kez tekrarlayın.</li>
	<li>Uzun süreli depolama için ayırma işleminden sonra kültür ortamını -20 ° C'de saklayın (Şekil 3A). NOT: Kontaminasyonu ve tekrarlanan donma ve çözülmeyi önlemek için, ambalajlamadan sonra kültür ortamını kullanırken NRM'nin her bir tüpünün sadece bir kez açılması önerilir (Şekil 3A).</li>
</ol>2. Mikropsuz yumurta toplama
<ol><li>Yavrularda istikrarlı bir erkek-dişi oranı sağlamak için, pupaları pupa evresi sırasında haploid genetik özelliklerinden dolayı 50 dişi ila 15 erkek oranında bir Drosophila şişesine yerleştirin (erkekler haploid hücrelerden gelişirken, dişiler döllenmiş yumurtalardan kaynaklanan diploid hücrelerden gelişir)4,15.<ol><li>Yetişkinlere çıktıktan sonra, erkeklerin ve dişilerin 1,5 gün boyunca çiftleşmesine izin verin ve ardından şişeye yaklaşık 40 L. sericata pupa koyun. Parazitleşmeden sonraki 12-24 saat içinde, pupa kabuğunun bir ucunu stereomikroskop altında dikkatlice açmak için steril bir diseksiyon iğnesi kullanın (Şekil 4).</li>
		<li>Diğer ucunu elle tutun ve yaban arısı embriyolarını bulun. Embriyoları L. sericata pupa dokusunun yüzeyinden fosfat tamponlu salin (PBS) içeren steril bir hücre süzgecine aktarmak için diseksiyon iğnesi kullanın14. NOT: Parazitizm için eski L. sericata pupa kullanılmalıdır, çünkü kuru L. sericata pupa dokusunun embriyoları transfer etmesi daha kolaydır. Yumurtaların L. sericata pupa doku yüzeyinden düzgün bir şekilde aktarılmasını sağlamak için, diseksiyon iğnesi pupa vakasını açtığında dokuyu delmemeye dikkat edin, böylece interstisyel sıvı dışarı akmaz.</li>
	</ol></li>
	<li>Bir hücre süzgeci üzerine 20-30 embriyo yerleştirin ve bunları 1.000 μL% 10 ticari sodyum hipoklorit çözeltisi ile eşit şekilde yıkayın (bakınız Malzeme Tablosu), ardından 1.000 μL 1x steril PBS ile başka bir yıkama yapın. Daha sonra, 1.000 μL% 70 etanol çözeltisi ile bir kez yıkayın ve 1.000 μL 1x steril PBS ile üç kez yıkayın.</li>
	<li>İlk olarak, 1x PBS ile önceden ıslatılmış 5 mm çapında bir polipropilen örgü levhayı (bkz. Malzeme Tablosu) 24 delikli bir plakaya yerleştirin. Daha sonra, sterilize edilmiş küçük bir fırça kullanarak, hücre süzgeci üzerindeki yaban arısı embriyolarını polipropilen ağ tabakasına nazikçe fırçalayın. Bu, 24 delikli plakanın dikey bir sütunundaki dört kuyucuk için de yapılabilir.</li>
</ol>3. Mikropsuz yaban arısı yetiştiriciliği
<ol><li>Laminer akış davlumbazındaki her bir kuyucuğa 50 μL NRM ekleyin. Büyüme için nemli bir ortam sağlamak için, 24 delikli plakadaki her bir kuyucuk arasına 1 mL steril su ekleyin. 30 mL steril su içeren küçük bir beher, 24 delikli plakaya sahip 5 L steril plastik kutuya da yerleştirilebilir.<ol><li>Tüm deney boyunca, steril plastik kutuyu ve 24 delikli plakayı bir iklim odasında 25 ± 2 ° C'lik sabit bir sıcaklıkta ve sabit ışık altında tutun.</li>
	</ol></li>
	<li>NRM'yi her gün aktarmadan ve eklemeden önce, dondurulmuş NRM'yi laminer bir akış tezgahında çözün. Steril bir ortamda, üzerinde larva bulunan polipropilen ağı bir kuyudan diğerine aktarmak için alkolle dezenfekte edilmiş cımbız kullanın. Son olarak, oda sıcaklığına dengelenmiş 50 μL NRM ekleyin (Şekil 3B). Pupalar gözlenene kadar yukarıdaki işlemleri her gün tekrarlayın. NOT: Eşekarısı gelişimi ile, mikropsuz eşekarısı yeterli beslenmeye sahip olmasını sağlamak için NRM miktarı uygun şekilde arttırılmalıdır. Örneğin, dördüncü instar larvalarına 60 ila 70 μL NRM verildi. Farklı gelişim aşamaları aynı kuyuda bir arada bulunabileceğinden, pupaları dışarı aktarmak için sterilize edilmiş bir fırça kullanın. Kalan larvalara az miktarda NRM ekleyin. Mikrobiyal istila ve kirliliği önlemek için aseptik teknikler kullanın.</li>
	<li>9 ila 11 gün beslendikten sonra larvaların% 80'inden fazlası beyaz veya sarı pupaya dönüşür. Şu anda, filtreyi temiz bir kuyu plakasına taşıyın ve eklosyonu beklemek için kültür ortamı eklemeyi bırakın.</li>
</ol>

Mikropsuz Nasonia Yaban Arıları Yetiştirme

<ol>
	<li>Diviccaro, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exploring+the+impact+of+the+microbiome+on+neuroactive+steroid+levels+in+germ-free+animals.">Exploring the impact of the microbiome on neuroactive steroid levels in germ-free animals.</a> International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12551 (2021).</li><li>Pang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inter-species+transplantation+of+gut+microbiota+from+human+to+pigs.">Inter-species transplantation of gut microbiota from human to pigs.</a> The ISME Journal. 1 (2), 156-162 (2007).</li><li>Uzbay, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Germ-free+animal+experiments+in+the+gut+microbiota+studies.">Germ-free animal experiments in the gut microbiota studies.</a> Current Opinion in Pharmacology. 49, 6-10 (2019).</li><li>Zhu, Z., Liu, Y., Hu, H., Wang, G. -. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nasonia-microbiome+associations:+a+model+for+evolutionary+hologenomics+research.">Nasonia-microbiome associations: a model for evolutionary hologenomics research.</a> Trends in Parasitology. 39 (2), 101-112 (2022).</li><li>Li, J., Wei, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+an+efficient+germ-free+animal+system+to+support+functional+microbiome+research.">Establishment of an efficient germ-free animal system to support functional microbiome research.</a> Science China Life Sciences. 62 (10), 1400-1403 (2019).</li><li>Wang, G. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+microbiome+confer+multigenerational+host+resistance+after+sub-toxic+pesticide+exposure.">Changes in microbiome confer multigenerational host resistance after sub-toxic pesticide exposure.</a> Cell Host Microbe. 27 (2), 213-224 (2020).</li><li>Wang, G. H., Dittmer, J., Douglas, B., Huang, L., Brucker, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coadaptation+between+host+genome+and+microbiome+under+long-term+xenobiotic-induced+selection.">Coadaptation between host genome and microbiome under long-term xenobiotic-induced selection.</a> Science Advances. 7 (19), (2021).</li><li>Dittmer, J., Brucker, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=When+your+host+shuts+down:+larval+diapause+impacts+host-microbiome+interactions+in+Nasonia+vitripennis.">When your host shuts down: larval diapause impacts host-microbiome interactions in Nasonia vitripennis.</a> Microbiome. 9 (1), 85 (2021).</li><li>Dittmer, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Disentangling+a+holobiont-recent+advances+and+perspectives+in+Nasonia+wasps.">Disentangling a holobiont-recent advances and perspectives in Nasonia wasps.</a> Frontiers in Microbiology. 7, 1478 (2016).</li><li>Brooks, A. W., Kohl, K. D., Brucker, R. M., van Opstal, E. J., Bordenstein, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phylosymbiosis:+relationships+and+functional+effects+of+microbial+communities+across+host+evolutionary+history.">Phylosymbiosis: relationships and functional effects of microbial communities across host evolutionary history.</a> PLoS Biology. 14 (11), e2000225 (2016).</li><li>Heavner, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Partial+venom+gland+transcriptome+of+a+Drosophila+parasitoid+wasp,+Leptopilina+heterotoma,+reveals+novel+and+shared+bioactive+profiles+with+stinging+Hymenoptera.">Partial venom gland transcriptome of a Drosophila parasitoid wasp, Leptopilina heterotoma, reveals novel and shared bioactive profiles with stinging Hymenoptera.</a> Gene. 526 (2), 195-204 (2013).</li><li>Brucker, R. M., Bordenstein, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+cultivation+of+the+hymenoptera+genetic+model,+Nasonia.">In vitro cultivation of the hymenoptera genetic model, Nasonia.</a> PLoS One. 7 (12), e51269 (2012).</li><li>Shropshire, J. D., van Opstal, E. J., Bordenstein, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+optimized+approach+to+germ-free+rearing+in+the+jewel+wasp+Nasonia.">An optimized approach to germ-free rearing in the jewel wasp Nasonia.</a> PeerJ. 4, e2316 (2016).</li><li>Wang, G. H., Brucker, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+optimized+method+for+Nasonia+germ-free+rearing.">An optimized method for Nasonia germ-free rearing.</a> Scientific Reports. 12 (1), 219 (2022).</li><li>Brucker, R. M., Bordenstein, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+hologenomic+basis+of+speciation:+gut+bacteria+cause+hybrid+lethality+in+the+genus+Nasonia.">The hologenomic basis of speciation: gut bacteria cause hybrid lethality in the genus Nasonia.</a> Science. 341 (6146), 667-669 (2013).</li><li>Fontaine, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+free+of+germs+is+germ-free?+Detection+of+bacterial+contamination+in+a+germ+free+mouse+unit.">How free of germs is germ-free? Detection of bacterial contamination in a germ free mouse unit.</a> Gut Microbes. 6 (4), 225-233 (2015).</li><li>Mazmanian, S. K., Liu, C. H., Tzianabos, A. O., Kasper, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+immunomodulatory+molecule+of+symbiotic+bacteria+directs+maturation+of+the+host+immune+system.">An immunomodulatory molecule of symbiotic bacteria directs maturation of the host immune system.</a> Cell. 122 (1), 107-118 (2005).</li><li>Weersma, R. K., Zhernakova, A., Fu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interaction+between+drugs+and+the+gut+microbiome.">Interaction between drugs and the gut microbiome.</a> Gut. 69 (8), 1510-1519 (2020).</li></ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yok.

Genomik ve metabolomik gibi yüksek verimli tespit teknolojilerinin uygulanmasıyla, araştırmacılar yavaş yavaş bağırsak mikrobiyotasında büyük genetik çeşitlilik ve metabolik karmaşıklık olduğunu fark ettiler16. Bu simbiyotik bakteriler, konakçı beslenme metabolizması, tümörler, bağışıklık ve konakçı ile karmaşık etkileşimler yoluyla yaşlanma gibi çeşitli fizyolojik veya patolojik durumlarla yakından ilişkilidir17. Bununla birlikte, kona...

Mikropsuz hayvanlar, tespit edilebilir canlı mikroorganizmalara ve parazitlere sahip olmayan hayvanlardır1. Mikropsuz embriyolar, annenin aseptik koşullar altında diseke edilmesi ve daha sonra bariyer sistemlerde yetiştirilmesi ile elde edilebilir2. Bu tür hayvanlar, mikroorganizmaların bağırsak mikrobiyotası, bağışıklık sistemi ve metabolizma 1 gibi hayvanlar üzerindeki etkilerini incelemek içinkullanılabilir. Bazı teknik araçlarla, birçok böcek ve hatta memeliler steril hale getirilebilir 3,4. Mikropsuz hayvanlar benzersiz bir role sahiptir ve mikrobiyoloji araştırmalarının çeşitli yönlerinde yaygın olarak kullanılmaktadır5. Örneğin, mikropsuz Nasonia yaban arılarının kullanımı, mikroorganizmaların konakçıların uzun süreli eksojen çevresel stres altında yeni ortamlara uyum sağlamasına yardımcı olabileceğini ortaya koymuştur 6,7.
Nasonia parazitoidleri, yumurtalarını sineklerin pupalarına enjekte eden küçük parazitik eşekarısıdır4. Nasonia vitripennis, Nasonia longicornis, Nasonia giraulti ve Nasonia oneida 8 dahil olmak üzere bilinen dört Nasonia türü vardır. N. vitripennis dünya çapında bulunabilirken, diğer üç türün Kuzey Amerika'da sınırlı aralıkları vardır4. Nasonya parazitoid eşekarısı, kolay ekim, kısa üreme döngüsü, dizilenmiş genom ve uzun süreli diapause 8,9 gibi özellikleri nedeniyle ideal model böcekler olarak kabul edilir. Böcek evrimi, genetik, gelişim, davranış ve simbiyoz10'un çeşitli yönlerini incelemek için kullanılabilirler. Ayrıca, Nasonia parazitoid eşekarısı da tarım ve hastalık11'de zararlı sineklerin kontrolüne yardımcı olabilir. Steril bir böcek sisteminin başarılı bir şekilde kurulması iki ana adımı içerir: (1) embriyoların sterilizasyonu ve (2) larvalara in vitro steril gıda sağlanması. Steril gıda elde etmek için Brucker ve Bordenstein 12, bakterileri öldürmek için antibiyotik, ağartıcı ve fetal sığır serumu gibi kimyasallar kullanarak 2012 yılında Nasonya yetiştirme ortamını (NRMv1) geliştirdi12. Bununla birlikte, kimyasal sterilizasyon yöntemi, N. vitripennis13'ün düşük sağkalım ve eklosyon oranlarına neden olmuştur. Daha sonra, 2016 yılında, Shropshire ve ark., antibiyotiklerin ve diğer maddelerin tehlikelerini ortadan kaldırmak için kimyasal sterilizasyon yöntemi yerine bir filtre sterilizasyon yöntemi kullanarak NRMv2'yi geliştirdi ve üreme sürecini optimize etti13. Ne yazık ki, bu yöntemin hala ortamın hazırlanması ve kullanılmasıyla ilgili zorlukların yanı sıra embriyolar, larvalar ve kapalı pupalar için boğulma, yetersiz beslenme veya dehidrasyon riskleri gibi bazı dezavantajları vardır14. Wang ve Brucker14 yakın zamanda Nasonia yetiştirme ortamı sürüm 3 (NRMv3) ve mikropsuz yetiştirme sürüm 2 (GFRv2) protokollerini geliştirdi. Bu iyileştirmeler maliyeti ve medya tüketimini azalttı. Bununla birlikte, NRMv3 çok kısa bir depolama süresine sahiptir ve kontaminasyona karşı oldukça hassastır.
NRMv3 üzerine inşa edilen NRM hazırlama aracı depolama yöntemi ve besin oranı bu çalışmada optimize edilmiştir. Bu metodolojik arıtma, N. vitripennis'in mikrobiyom çalışmaları için bir model olarak kullanılmasını kolaylaştırır. Wang ve ark.14 tarafından geliştirilen NRMv3 ile karşılaştırıldığında, NRM hammaddelerinden biri olan Sarcophaga bullata pupa'yı sıkmak için geliştirilmiş araç, Wang ve ark.14 tarafından kullanılan bir alt deliğe sahip 60 mL şırıngaya kıyasla S. bullata pupa doku sıvısının üretim verimliliğini büyük ölçüde artırmaktadır. NRM'nin besin oranını ayarladık, bu da mikropsuz Nasonya eşekarısının hayatta kalma oranında, gelişim sürelerini etkilemeden belirli bir artışa yol açtı. Ek olarak, NRM küçük kapasiteli santrifüj tüplerine (1,5 mL) paketlendi ve depolama süresini uzatmak için -20 ° C'lik bir buzdolabında donduruldu. Ev sineği Lucilia sericata'yı NRM hazırlığı için konakçı ve kaynak olarak kullanırken, bu protokolün laboratuvarda bulunan diğer Nasonia konakçıları için uyarlanabileceğini belirtmek gerekir.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.22 Sterile vacuum filter</td>
			<td>NEST</td>
			<td>331011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% SodiumHypochlorite</td>
			<td>LIRCON</td>
			<td>XB-84BS-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1x PBS solution</td>
			<td>Solarbio</td>
			<td>P1020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>200 mesh nylon net</td>
			<td>BIOBYING</td>
			<td>BY-378Z</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24&#160;well-plate</td>
			<td>NEST</td>
			<td>702001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>8, 1.2, 0.8, and 0.45 &#181;m filters</td>
			<td>Shanghai Xingya Purification Material Factory</td>
			<td>HN-AA-JT-10079</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absolute ethyl alcohol</td>
			<td>Macklin</td>
			<td>E809057-500ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Strainer</td>
			<td>BIOLOGIX</td>
			<td>15-1100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Commercial Drosophila Medium</td>
			<td>Boer</td>
			<td>B645446-500ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting needle</td>
			<td>Bioroyee</td>
			<td>17-9140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Garlic press</td>
			<td>Taobao</td>
			<td>No Catalog numbers</td>
			<td>Purchase on Taobao</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lucillia sericata pupae</td>
			<td>Hefei Dayuan Biotechnology Co., Ltd.</td>
			<td>No Catalog numbers</td>
			<td>Purchase on Taobao</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small writing brush</td>
			<td>Cestidur</td>
			<td>BL0508</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereoscope</td>
			<td>SOPTOP</td>
			<td>RX50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tweezers</td>
			<td>SALMART</td>
			<td>A109001-56</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

optimizing the rearing procedure of germ-free wasps

Aseptik yetiştirme teknolojisi, dış mikroorganizmaların böcek mikrobiyotası üzerindeki etkisini etkili bir şekilde ortadan kaldırabilen ve böylece böcek mikrobiyota araştırmalarının hızlı gelişimini teşvik edebilen steril veya neredeyse steril koşullar altında böceklerin kültürlenmesi için bir yöntemdir. Nasonia (yaban arısı cinsi), kısa ömürlü, yüksek genetik çeşitlilik, kolay kullanım vb. gibi birçok avantajı olan ve böcek model sistemi olarak yaygın olarak kullanılan parazitik bir yaban arısı böceğidir. Sadece hayvanlardaki mikroorganizma sayısını azaltabilen antibiyotik tedavisinin aksine, aseptik yetiştirme teknikleri, hayvanlardaki mikroorganizmaların hem bileşimini hem de miktarını kontrol edebilir ve konakçı-mikrop etkileşimlerinin incelenmesini daha da kolaylaştırabilir. Bununla birlikte, Nasonya yetiştirme ortamının (NRM) önceki sürümleri, karmaşık ve zaman alıcı bir hazırlama süreci, bakteri veya mantarlar tarafından kolay kontaminasyon ve kısa depolama süresi gibi bazı kusurlara ve sorunlara sahiptir. Bu nedenle, bu çalışma NRM hazırlama sürecinde kullanılan araçları, depolama koşullarını ve bileşen oranlarını optimize ederek bu sorunları çözmektedir. Optimize edilmiş ortam, en az 3 ay boyunca -20 ° C'de depolamaya izin verebilir ve steril eşekarısı beslemesi sırasında NRM kontaminasyonu olasılığını ortadan kaldırabilir. Bu, Nasonya'yı mikrobiyal araştırmalar için bir model olarak kullanmak için önemli olan aseptik Nasonya'nın hayatta kalma oranını ve sağlık seviyesini daha da artırır.

NRM'nin hazırlık verimliliği, hazırlık araçları geliştirilerek büyük ölçüde iyileştirildi. Ek olarak, besleme sürecindeki NRM kirliliği sorunu, strateji ve koruma yöntemi optimize edilerek ortadan kaldırılmıştır. Aynı zamanda, ayarlanmış NRM, konakçı olarak L. sericata ile mikropsuz eşekarısının büyümesi ve gelişmesi için daha uygun bir beslenme oranına sahipti. Larvalardan pupalara kadar mikropsuz eşekarısının hayatta kalma oranı, GFRv3 kullanılarak NRMv2 ile yetiştiri...

Watch this Scientific Journal Video about Optimizing the Rearing Procedure of Germ-Free Wasps at JoVE.com

Yazar Spotlight: Mikropsuz Yaban Arılarının Yetiştirme Prosedürünü Optimize Etme  

Nasonya yaban arısı embriyoları, 12-24 saat boyunca parazitizasyondan sonra Lucillia sericata pupalarından diseke edildi ve mikropsuz embriyolar elde etmek için alkol ve% 10 sodyum hipoklorit çözeltisi ile yıkandı. Mikropsuz embriyoları yetiştirdikten ve in vitro olarak büyümek ve gelişmek için onlara Nasonya yetiştirme ortamı sağladıktan sonra, mikropsuz Nasonia yetişkinleri elde edildi.

Mikropsuz eşekarısı yetiştirme prosedürünün optimize edilmesi

Aseptic rearing technology is a method of culturing insects under sterile or almost sterile conditions, which can effectively eliminate the influence of ...

Araştırmamız, böcek-mikrobiyota etkileşimlerinin incelenmesine, özellikle bu simbiyotik bakterilerin etkisini araştırmaya ve konakçı-mikrop ilişkilerinin dinamiklerini keşfetmeye odaklanmaktadır. Mikropsuz Nasonya, bu araştırmayı yürütmek için önemli bir araçtır. Mevcut araştırmalar, yüksek verimli dizileme, mikropsuz böcek yetiştiriciliği, transkriptomik, proteomik ve gelişmiş mikroskop gibi teknolojileri kullanmaktadır.Bu araç, bu alandaki anlayışımızı ilerletmek için böcek-mikrop konakçı etkileşiminin kapsamlı analizini ve sanallaştırmasını sağlar. Nasonia Yetiştirme Ortamını hazırlamak için optimize edilmiş prosedür, ekonomik avantajlar sağlar ve zamandan ve emekten tasarruf sağlar. Ek olarak, besleme işlemi sırasında NRM kontaminasyon riskini etkili bir şekilde azaltır ve aseptik Nasonya üretme verimliliğini büyük ölçüde artırır

optimizing-the-rearing-procedure-of-germ-free-wasps

Research

JoVE Journal

Biology

Optimizing the Rearing Procedure of Germ-Free Wasps

1.3K Görüntüleme.  Chinese Academy of Sciences. Araştırmamız, böcek-mikrobiyota etkileşimlerinin incelenmesine, özellikle bu simbiyotik bakterilerin etkisini araştırmaya ve konakçı-mikrop ilişkilerinin dinamiklerini keşfetmeye odaklanmaktadır. Mikropsuz Nasonya, bu araştırmayı yürütmek için önemli bir araçtır. Mevcut araştırmalar, yüksek verimli dizileme, mikropsuz böcek yetiştiriciliği, transkriptomik, proteomik ve gelişmiş mikroskop gibi teknolojileri kullanmaktadır.Bu araç, bu alandaki anlayışım...

Video: Yazar Spotlight: Mikropsuz Yaban Arılarının Yetiştirme Prosedürünü Optimize Etme  

Protocol for Mosquito Rearing (A. gambiae)

This protocol describes mosquito rearing in the insectary. The insectary rooms are maintained at 28&deg;C and ~80% humidity, with a 12 hr. day/night cycle. For this procedure, you'll need mosquito cages, 10% sterile sucrose solution, paper towels, beaker, whatman filter paper, glass feeders, human blood and serum, water bath, parafilm, distilled water, clean plastic trays, mosquito food (described below), mosquito net to cover the trays, vacuum, and a collection chamber to collect adults.

Protocol for Mosquito Rearing A. gambiae

This video illustrates the general techniques used to rear Anopheles gambiae in the laboratory. The methods for caring for laboratory mosquitoes are demonstrated through all stages of the organism's life cycle from larvae to pupae to blood-feeding adults.

Sivrisinek Yetiştirme Protokolü (A. gambiae)

This protocol describes mosquito rearing in the insectary. The insectary rooms are maintained at 28&deg;C and ~80% humidity, with a 12 hr. day/night ...

Biyoloji

Murine Renal Transplantation Procedure

Renal orthotopic transplantation in mice is a technically challenging procedure. Although the first kidney transplants in mice were performed by Russell et al over 30 years ago (1) and refined by Zhang et al years later (2), few people in the world have mastered this procedure. In our laboratory we have successfully performed 1200 orthotopic kidney transplantations with &gt; 90% survival rate. The key points for success include stringent control of reperfusion injury, bleeding and thrombosis, both during the procedure and post-transplantation, and use of 10-0 instead of 11-0 suture for anastomoses.
Post-operative care and treatment of the recipient is extremely important to transplant success and evaluation. All renal graft recipients receive antibiotics in the form of an injection of penicillin immediately post-transplant and sulfatrim in the drinking water continually. Overall animal health is evaluated daily and whole blood creatinine analyses are performed routinely with a portable I-STAT machine to assess graft function.

Renal transplantation in mice is a technically challenging procedure that requires careful post-operative care and treatment for success.

Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Renal orthotopic transplantation in mice is a technically challenging procedure. Although the first kidney transplants in mice were performed by Russell ...

Bioluminescence Imaging of Heme Oxygenase-1 Upregulation in the Gua Sha Procedure

Gua Sha is a traditional Chinese folk therapy that employs skin scraping to cause subcutaneous microvascular blood extravasation and bruises. The protocol for bioluminescent optical imaging of HO-1-luciferase transgenic mice reported in this manuscript provides a rapid in vivo assay of the upregulation of the heme oxygenase-1 (HO-1) gene expression in response to the Gua Sha procedure. HO-1 has long been known to provide cytoprotection against oxidative stress. The upregulation of HO-1, assessed by the bioluminescence output, is thought to represent an antioxidative response to circulating hemoglobin products released by Gua Sha. Gua Sha was administered by repeated strokes of a smooth spoon edge over lubricated skin on the back or other targeted body part of the transgenic mouse until petechiae (splinter hemorrhages) or ecchymosis (bruises) indicative of extravasation of blood from subcutaneous capillaries was observed. After Gua Sha, bioluminescence imaging sessions were carried out daily for several days to follow the dynamics of HO-1 expression in multiple internal organs.

Gua Sha, traditional Chinese therapeutic skin scraping, causes subcutaneous microvascular blood extravasation. We report a protocol of bioluminescence imaging of HO-1-luciferase transgenic mice to demonstrate that Gua Sha upregulates heme oxygenase-1 (HO-1) in multiple organs.

Hem oksijenaz-1 ekspresyonunun Gua Sha Usul Biyoparlaklık Görüntüleme

Gua Sha is a traditional Chinese folk therapy that employs skin scraping to cause subcutaneous microvascular blood extravasation and bruises. The protocol ...

Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera

Stable flies, Stomoxys calcitrans, are serious pests of livestock, humans, companion animals and wildlife worldwide. During the last 20+ years, changes in agronomic practices resulted in serious outbreaks of stable flies in several countries. These outbreaks disrupted livestock production and human recreation resulting in public demands for increasing research and management efforts for this pest. A simple and inexpensive procedure for rearing stable flies for laboratory studies is presented. The procedure uses locally available diet components, equipment and supplies. The procedure can be adapted for rearing other muscoid flies including face fly (Musca autumnalis), horn fly (Haematobia irritans), and house fly (Musca domestica). The procedure produces stable fly puparia averaging 12.5 mg and ~35% egg to adult survival. Approximately 3000 flies are produced in each pan.

A procedure for rearing stable flies (Stomoxys calcitrans) is presented. The procedure uses locally available materials for diet components, equipment and supplies.

Laboratuvar istikrarlı sinek ve diğer Muscoid Diptera yetiştirme

Stable flies, Stomoxys calcitrans, are serious pests of livestock, humans, companion animals and wildlife worldwide. During the last 20+ years, changes in ...

Methods for Rearing the Parasitoid Ganaspis brasiliensis, a Promising Biological Control Agent for the Invasive Drosophila suzukii

Native to East Asia, the spotted-wing drosophila, Drosophila suzukii (Matsumura) (Diptera: Drosophilidae), has established widely in the Americas, Europe, and parts of Africa over the last decade, becoming a devastating pest of various soft-skinned fruits in its invaded regions. Biological control, especially by means of self-perpetuating and specialized parasitoids, is expected to be a viable option for sustainable area-wide management of this highly mobile and polyphagous pest. Ganaspis brasiliensis Ihering (Hymenoptera: Figitidae) is a larval parasitoid that is widely distributed in East Asia, and has been found to be one of the most effective parasitoids of D. suzukii.
Following rigorous pre-introduction evaluations of its efficacy and potential non-target risks, one of the more host-specific genetic groups of this species (G1 G. brasiliensis) has been approved recently for introduction and field release in the United States and Italy. Another genetic group (G3 G. brasiliensis), which was also commonly found to attack D. suzukii in East Asia, may be considered for introduction in the near future. There is currently enormous interest in rearing G. brasiliensis for research or in mass-production for field release against D. suzukii. This protocol and associated video article describe effective rearing methods for this parasitoid, both on a small scale for research and a large scale for mass-production and field release. These methods may benefit further long-term research and use of this Asian-native parasitoid as a promising biological control agent for this global invasive pest.

Methods for Rearing the Parasitoid Ganaspis brasiliensis, a Promising Biological Control Agent for the Invasive Drosophila suzukii

Ganaspis brasiliensis-a larval parasitoid of Drosophila suzukii (a global invasive fruit crop pest)-has been approved or is considered for introduction into Europe and the United States for biological control of this pest. This article provides protocols for both small-scale and large-scale rearing of this parasitoid.

İnvaziv Drosophila suzukii için Umut Verici Bir Biyolojik Kontrol Ajanı olan Parazitoid Ganaspis brasiliensis'i Yetiştirme Yöntemleri

Native to East Asia, the spotted-wing drosophila, Drosophila suzukii (Matsumura) (Diptera: Drosophilidae), has established widely in the Americas, Europe, ...

El yetiştirme yaklaşımı kullanarak marmosetlerin hayatta kalmasını ve gelişimini artırmak

Hand-Rearing Method for Infant Marmosets

The common marmoset (Callithrix jacchus) is a small and highly social New World monkey with high reproduction rates, which has been proven to be a compelling non-human primate model for biomedical and neuroscience research. Some females give birth to triplets; however, the parents cannot raise all of them. To save these infants, we have developed a hand-rearing method for raising newborn marmosets. In this protocol, we describe the formula of the food, the time for feeding, the configuration of the temperature and humidity, as well as the adaptation of the hand-reared infants to the colony environment. This hand-rearing method significantly increases the survival rate of marmoset infants (without hand-rearing: 45%; with hand-rearing: 86%) and provides the opportunity to study the development of marmoset infants with similar genetic backgrounds raised in different postnatal environments. As the method is practical and easy to use, we anticipate that it could also be applied to other labs working with common marmosets.

Yazar Gündemi: Marmoset Araştırması - Kapsam ve Zorluklar 

Here, we describe a hand-rearing method for raising infant marmosets in an animal incubator. This method greatly increases the survival rate of marmoset infants, which provides the opportunity to study the development of marmoset infants with similar genetic backgrounds raised in different postnatal environments.

Bebek Marmosetleri için El Yetiştirme Yöntemi

The common marmoset (Callithrix jacchus) is a small and highly social New World monkey with high reproduction rates, which has been proven to be a ...

Atriyal pacing protokolü kullanarak HR'ye bağlı kardiyak performansı keşfetme

A Pacing-Controlled Procedure for the Assessment of Heart Rate-Dependent Diastolic Functions in Murine Heart Failure Models

Heart failure with preserved ejection fraction (HFpEF) is a condition characterized by diastolic dysfunction and exercise intolerance. While exercise-stressed hemodynamic tests or MRI can be used to detect diastolic dysfunction and diagnose HFpEF in humans, such modalities are limited in basic research using mouse models. A treadmill exercise test is commonly used for this purpose in mice, but its results can be influenced by body weight, skeletal muscle strength, and mental state. Here, we describe an atrial-pacing protocol to detect heart rate (HR)-dependent changes in diastolic performance and validate its usefulness in a mouse model of HFpEF. The method involves anesthetizing, intubating, and performing pressure-volume (PV) loop analysis concomitant with atrial pacing. In this work, a conductance catheter was inserted via a left ventricular apical approach, and an atrial pacing catheter was placed in the esophagus. Baseline PV loops were collected before the HR was slowed with ivabradine. PV loops were collected and analyzed at HR increments ranging from 400 bpm to 700 bpm via atrial pacing. Using this protocol, we clearly demonstrated HR-dependent diastolic impairment in a metabolically induced HFpEF model. Both the relaxation time constant (Tau) and the end-diastolic pressure-volume relationship (EDPVR) worsened as the HR increased compared to control mice. In conclusion, this atrial pacing-controlled protocol is useful for detecting HR-dependent cardiac dysfunctions. It provides a new way to study the underlying mechanisms of diastolic dysfunction in HFpEF mouse models and may help develop new treatments for this condition.

Yazar Spotlight: Yeni Bir Atriyal Pacing Yaklaşımıyla Fare Modellerinde HR'ye Bağlı Kardiyak Fonksiyonun İncelenmesi 

The present protocol describes obtaining the pressure-volume relationship through transesophageal pacing, which serves as a valuable tool in evaluating diastolic function&#160;in mouse models of heart failure.