Name: pathological analysis of lung metastasis following lateral tail-vein injection of tumor cells
Uploaded: 2020-05-20T14:45:00.000+00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells at JoVE.com

Temsili veriler Ulusal Kanser Enstitüsü (K22CA218549 ila S.T.S) aracılığıyla finanse edildi. Burada bildirilen kapsamlı analiz yönteminin geliştirilmesindeki yardımlarına ek olarak, histoloji ve immünofizyotimya hizmetleri için Ohio Eyalet Üniversitesi Kapsamlı Kanser Merkezi Karşılaştırmalı Patoloji ve Fare Fenotipleme Paylaşılan Kaynağına (Direktör – Krista La Perle, DVM, PhD) ve algoritma geliştirme ve analiz için Patoloji Görüntüleme Çekirdeğine teşekkür ederiz.

Hayvan kullanımı, OSU Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) onaylı protokol 2007A0120-R4 (PI: Dr. Gina Sizemore) kapsamında Üniversite Laboratuvar Hayvan Kaynakları (ULAR) yönetmeliklerini takip etti.
1. Meme kanseri hücrelerinin kuyruk damarı enjeksiyonu
<ol><li>Enjeksiyon için hücrelerin ve şırıncının hazırlanması<ol>
<li>Kullanılacak fare sayısına ve hücre konsantrasyonuna göre uygun sayıda hücreyi plakalar. NOT: Enjekte edilen hücre sayısı ve metastazların geliştirilmesi için zaman, kullanılan hücre hattına bağlı olacaktır ve optimize edilmesi gerekecektir. Bu gösteride NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ (NSG) farelerine intravenöz olarak 1 x 106 MDA-MB-231 hücresi enjekte edilir ve en geç 24 gün sonra makroskopik akciğer lezyonları gözlenir. MVT1 murine meme tümörü hücre hattı17 için, 3 x 106 hücre, 14 gün boyunca gözlenen çok sayıda akciğer metastazı ile bağışıklık yetkin FVB / N farelerine enjekte edilir22,23.</li>
		<li>Medyayı epire edin ve hücre plakalarını 1x PBS ile durulayın. Hücreleri minimum hacimde deneyin, uygun ortam hacmini ekleyin ve hematostatometre veya tercih edilen başka bir yöntem kullanarak hücreleri sayın. Uygun hücre sayılarını belirlemek için trypan mavisi (%0.4) veya diğer canlı/ölü hücre boyaları kullanılabilir.</li>
		<li>5 dakika boyunca 180 x g'da dönerek pelet hücreleri.</li>
		<li>Fare başına 100 μL'lik bir hacim enjekte olacak şekilde steril 1x PBS'de uygun sayıda hücreyi yeniden kullanın. Canlılığı korumak için hücre süspansiyonlarını buzda tutun.</li>
		<li>Enjeksiyondan önce, topaklanmaması için hücreleri 200 μL veya 1 mL pipetle iyice yeniden biriktirin. 28 G insülin şırındında 100 μL çizin (bkz. Malzeme Tablosu).</li>
		<li>Şırıngayı dikey tutarak, şırıngaya dokunarak ve pistonu yavaşça ayarlayarak hava kabarcıklarını ortadan kaldırın. Hava kabarcıklarının damara enjekte edilmesi ölümcül olabilecek bir hava/gaz embolisi neden olabilir.</li>
	</ol></li>
	<li>Yanal kuyruk damarı enjeksiyonu NOT: Deneysel meme kanseri metastaz tahlilleri için 6 haftalık dişi farelere enjeksiyonlar >.<ol>
<li>Fareyi kuyruğundan dolayı idare edin ve hayvanı uygun boyutta oluklu bir tüp / kısıtlama cihazına kaydırın (kullanılan kısıtlama cihazı için Malzeme Tablosuna bakın).</li>
		<li>Kısıtlama cihazının fiş kısmını takın ve fareyi yan tarafına yanal kuyruk damarının görüntülenmesi kolay olacak şekilde yerleştirin. Farenin cinsel organa uygun bir ventral arteri, bir dorsal damarı ve iki lateral kaudal damarı vardır.</li>
		<li>Farenin kuyruğunun yüzeyini aseptik bir mendille temizleyin. İşaret parmağı ve başparmak arasındaki kuyruğu baskın olmayan elle kavrayın ve hafif gerginlik uygulayın.</li>
		<li>Kuyruğun distal kısmından başlayarak, iğneyi göbek ucu ile damara paralel yerleştirin.</li>
		<li>İzin verilirse, iğneyi dikkatlice yeniden yakalayın ve 20-30 ° açıya bükün. Tek elle yaklaşım veya iğne recapping cihazı şiddetle tavsiye edilir. NOT: Damarın çökmesine neden olabileceğinden aspirasyon yapmak gerekli değildir. Bununla birlikte, ilk yerleştirildiğinde küçük bir kan parlaması görülebilir. İğne, uygun yerleşimle damara sorunsuz bir şekilde ilerleyecektir.</li>
		<li>Tüm hacmi yavaşça damara dağıtın. Piston itildiğinde direnç olmamalıdır.</li>
		<li>Herhangi bir direnç hissederse, şırınga iğnesini derhal çıkarın. Gerekirse, kuyruğun proksimal ucuna doğru hareket eden veya karşıt yan damar olan iğneyi (ideal olarak en fazla 3 deneme) yeniden yerleştirin.</li>
		<li>Enjeksiyondan sonra küçük bir kan hacmi muhtemelen yerinden çıkacaktır. Steril gazlı bezle hafif basınç uygulayın ve aseptik mendille silin.</li>
		<li>Şırınnayı derhal uygun keskinlik kabına atın.</li>
		<li>Fareyi temiz, havalandırılmış bir kafese geri döndürün ve sıkıntı belirtileri alıp almadığını izleyin.</li>
		<li>Metastaz oluşumu (zahmetli solunum, kambur duruş, kilo kaybı) ve genel sıkıntı belirtileri için fareleri 2-3x / haftalık izleyin. Metastaz geliştirme süresi hücre çizgisine ve fare zorlanmasına bağlı olacaktır.</li>
		<li>Bir in vivo canlı hayvan görüntüleme cihazı kullanıyorsanız, hücrelerin başarılı enjeksiyonu onaylamak ve zaman "sıfır" veri elde etmek için kuyruk damarı enjeksiyonundan hemen sonra görüntü fareleri (in vivo biyolüminesans görüntüleme ile ilgili belirli ayrıntılar burada yer almaz, ancak Yang ve ark.24 tarafından açıklanmaktadır).</li>
	</ol></li>
</ol>2. Akciğer dokusu fiksasyonu ve metastatik akciğer tümörü yükünün analizi
<ol><li>Histopatoloji için akciğerlerin yapısal formatını korumak için akciğer dokusu enflasyonu<ol>
<li>Onaylanan ötanazi prosedürleri (örneğin oda hacminin / dk'nın% 30 - 70'inde karbondioksit) takip edildikten sonra, fare karkasını pimli bir diseksiyon tahtasına sabitleyin. Diseksiyon sırasında farenin kürklerini yoldan uzak tutmak için sprey veya% 70 etanol uygulayın. NOT: Karbondioksit boğulması, özellikle daha yavaş akış hızlarında beklenen bir arka plan lezyonu olarak pulmoner kanamaya neden olabilir.</li>
		<li>Toraksı orta çizgi kesiği ile açın, kesiği periton boyunca kranially/kaudally uzatın ve ksifoid işlemini kavrayarak diyaframı kesin.</li>
		<li>Bıçakları köreltmemek için ayrı bir makas seti kullanarak, göğüs kafesinin her iki tarafındaki kaburgaları kesin ve akciğerlerin genişlemesi için yer bırakarak göğüs kafesini dikkatlice çıkarın.</li>
		<li>Submandibuler tükürük bezlerini ve infrahidoid kasları çıkararak trakeayı izole edin. Pimlerin nefes borusunun her iki tarafına yerleştirilmesi, iğne takılması sırasında istenmeyen hareketleri önleyebilir.</li>
		<li>26 G şırındı % 10 nötr tamponlu formalin 2-3 mL ile doldurun ve nefes borusuna yerleştirin.</li>
		<li>Yavaşça formalin enjekte edin ve akciğerlerin genişlemesini izleyin (genellikle ~1,5 mL formalin gerektirir).</li>
		<li>Formalin akciğerlerden sızmaya başladığında (aşırı enflasyondan kaçının), trakeayı bir çift ön ayakla kıstırın, şırınga iğnesini çıkarın ve tüm solunum cihazını çıkarın. Doku ek kırpması sabitleme sonrası yapılabileceğinden akciğerleri, kalbi vb. doğrudan formalin içine yerleştirin.</li>
		<li>Standart yöntemler kullanılarak tam işleme, gömme, doku kesiti ve hematoksilin ve eozin (H&E) boyama.</li>
	</ol></li>
	<li>Metastatik akciğer tümörü yükünün analizi<ol>
<li>H&E lekeli akciğer bölümlerini 40x büyütmede yüksek çözünürlüklü, slayt tarayıcıda tarayın (Şekil 3).</li>
		<li>Akciğer metastazlarının ölçülmesi için görüntüleri görüntü analiz yazılımına (örneğin Visiopharm Görüntü Analizi) içe aktarın. NOT: Yeni kullanıcıların görüntü analizi yazılımını kullanmak için yerinde veya çevrimiçi eğitim almalarını öneririz. Ticari web sayfası üzerinden çok sayıda web semineri de mevcuttur.</li>
		<li>Yazılımın uygulama kitaplığından Visiopharm 10118 H&E Lung Metastaz Uygulamasını seçin. NOT: Bu uygulamanın amacı, H&E lekeli slaytlarda akciğer metastazını etiketlemek ve ölçmektir. 10118 H&E Akciğer Metastazı Uygulamasının bir parçası olarak, ilk görüntü işleme adımı Doku Algılama Uygulaması ile akciğer dokusunu segmentlere ayırır. İkinci görüntü işleme adımı, akciğer dokusu içindeki metastazları tanımlayan Metastaz Algılama Uygulamasını kullanır. Metastazlar, metastaz olarak tanımlanamayacak kadar yanlış şekillendirilmiş, çok kırmızı veya çok seyrek olan bölgelerle birlikte şekil yoluyla tanımlanır.</li>
		<li>Şekil ve seyrekliği tanımlayan parametreleri temsili görüntülere en uygun şekilde ayarlayın. Tümör metastazlarının ve normal akciğer dokusunun parçalı bölgeleri her doku tipi için farklı renk etiketleri kullanılarak görüntülenebilir. NOT: Uygulamanın metastazları normal akciğer dokusundan doğru bir şekilde ayıramaması durumunda, Visiopharm Karar Ormanı programını kullanan özel bir uygulamanın deneyler için yapıldığı gibi yazılması gerekebilir (bkz. Şekil 2 ve Şekil 3). Özel bir algoritma yazmak için ayrıntılar aşağıdadır. Aksi takdirde, 2.2.9 adımına geçin.</li>
		<li>İstenilen bir görüntüde birden fazla Sınıf [yani akciğer dokusu (neoplastik olmayan), metastazlar, kırmızı kan hücreleri, epitel ve/veya beyaz alan] eğitilerek çalışan Karar Ormanı programını açın. Şekil 2'de tümör metastazları mavi, normal doku yeşil ve bronşiyoler epitel sarıdır. Ayrıca, kırmızı kan hücreleri kırmızı ve hava boşlukları pembedir.</li>
		<li>Her Sınıfı bir görüntü için uygun şekilde eğitmek için sorulan evet veya hayır soruları serisini izleyin. Algoritmanın doğruluğu evet/hayır sorularının sayısını belirleyecektir. Analiz için, özel algoritma / uygulama 50 'ye (aralık 0-100) ayarlanmış doğrulukla yazılmıştır.</li>
		<li>Algoritmanın/Uygulamanın doğruluğunu artırmak için keskinleştirmek, bulanıklaştırmak, şekle göre sıralamak vb. Özellikler, belirli renkleri veya yoğunlukları ortaya çıkarmak için Sınıfın görüntüyü görme şeklini değiştirir. NOT: Özel algoritma için 8500 μm2 ve üzeri ölçülerindeki metastazlar metastaz olarak etiketlenir ve ölçülür. Bu, boyut farkı ve algılamak için çok küçük metastazları hesaplar. Normal doku nicelemesinde küçük yanlış şekilli alanlar ve 8500 μm2'nin altındaki küçük metastatik alanlar yer aldı.</li>
		<li>Değiştirilen ayarları uygulamadan veya özel algoritmadan kaydedin ve ardından algoritmayı/uygulamayı H&E lekeli dokuların tamamına veya serisine uygulayın.</li>
		<li>Son olarak, Tablo 1'de listelenenleri içeren tüm çıktı değişkenlerini dışa aktar. Mikronlardaki alan kare (μm2) her doku tipi için ölçülebilir ve yüzdeler numune toplam net doku alanından (yani toplam doku eksi hava alanından) elde edilir.</li>
		<li>Özel bir algoritma oluştururken, doğru ölçümler sağlamak ve doku tipleri arasında ayrım yapmak için Amerikan Veteriner Patologlar Koleji tarafından onaylanmış bir veteriner patolog kuruluna danışarak doku işaretlemelerini gözden geçirin.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol>
	<li>Chambers, A. F., Groom, A. C., MacDonald, I. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissemination+and+growth+of+cancer+cells+in+metastatic+sites.">Dissemination and growth of cancer cells in metastatic sites.</a> Nature Reviews: Cancer. 2 (8), 563-572 (2002).</li><li>Steeg, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeting+metastasis.">Targeting metastasis.</a> Nature Reviews: Cancer. 16 (4), 201-218 (2016).</li><li>Gupta, G. P., Massague, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+metastasis:+building+a+framework.">Cancer metastasis: building a framework.</a> Cell. 127 (4), 679-695 (2006).</li><li>Steeg, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+metastasis:+mechanistic+insights+and+clinical+challenges.">Tumor metastasis: mechanistic insights and clinical challenges.</a> Nature Medicine. 12 (8), 895-904 (2006).</li><li>Chaffer, C. L., Weinberg, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+perspective+on+cancer+cell+metastasis.">A perspective on cancer cell metastasis.</a> Science. 331 (6024), 1559-1564 (2011).</li><li>Eckhardt, B. L., Francis, P. A., Parker, B. S., Anderson, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+for+the+discovery+and+development+of+therapies+for+metastatic+breast+cancer.">Strategies for the discovery and development of therapies for metastatic breast cancer.</a> Nature Reviews Drug Discovery. 11 (6), 479-497 (2012).</li><li>Gomez-Cuadrado, L., Tracey, N., Ma, R., Qian, B., Brunton, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+metastasis:+progress+and+prospects.">Mouse models of metastasis: progress and prospects.</a> Disease Models &amp; Mechanisms. 10 (9), 1061-1074 (2017).</li><li>Fantozzi, A., Christofori, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+breast+cancer+metastasis.">Mouse models of breast cancer metastasis.</a> Breast Cancer Research. 8 (4), 212 (2006).</li><li>Schoenenberger, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+c-myc+gene+expression+in+mammary+glands+of+transgenic+mice+induces+mammary+tumours+with+constitutive+milk+protein+gene+transcription.">Targeted c-myc gene expression in mammary glands of transgenic mice induces mammary tumours with constitutive milk protein gene transcription.</a> EMBO Journal. 7 (1), 169-175 (1988).</li><li>Nusse, R., Varmus, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Many+tumors+induced+by+the+mouse+mammary+tumor+virus+contain+a+provirus+integrated+in+the+same+region+of+the+host+genome.">Many tumors induced by the mouse mammary tumor virus contain a provirus integrated in the same region of the host genome.</a> Cell. 31 (1), 99-109 (1982).</li><li>Muller, W. J., Sinn, E., Pattengale, P. K., Wallace, R., Leder, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-step+induction+of+mammary+adenocarcinoma+in+transgenic+mice+bearing+the+activated+c-neu+oncogene.">Single-step induction of mammary adenocarcinoma in transgenic mice bearing the activated c-neu oncogene.</a> Cell. 54 (1), 105-115 (1988).</li><li>Lin, E. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+to+malignancy+in+the+polyoma+middle+T+oncoprotein+mouse+breast+cancer+model+provides+a+reliable+model+for+human+diseases.">Progression to malignancy in the polyoma middle T oncoprotein mouse breast cancer model provides a reliable model for human diseases.</a> American Journal of Pathology. 163 (5), 2113-2126 (2003).</li><li>Green, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+C3(1)/SV40+T-antigen+transgenic+mouse+model+of+mammary+cancer:+ductal+epithelial+cell+targeting+with+multistage+progression+to+carcinoma.">The C3(1)/SV40 T-antigen transgenic mouse model of mammary cancer: ductal epithelial cell targeting with multistage progression to carcinoma.</a> Oncogene. 19 (1), 1020-1027 (2000).</li><li>Iorns, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+mouse+model+for+the+study+of+human+breast+cancer+metastasis.">A new mouse model for the study of human breast cancer metastasis.</a> PloS One. 7 (10), 47995 (2012).</li><li>Kim, I. S., Baek, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+for+breast+cancer+metastasis.">Mouse models for breast cancer metastasis.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 394 (3), 443-447 (2010).</li><li>Mariotto, A. B., Etzioni, R., Hurlbert, M., Penberthy, L., Mayer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimation+of+the+Number+of+Women+Living+with+Metastatic+Breast+Cancer+in+the+United+States.">Estimation of the Number of Women Living with Metastatic Breast Cancer in the United States.</a> Cancer Epidemiology, Biomarkers and Prevention. 26 (6), 809-815 (2017).</li><li>Xiao, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Risk+factors+and+survival+outcomes+in+patients+with+breast+cancer+and+lung+metastasis:+a+population-based+study.">Risk factors and survival outcomes in patients with breast cancer and lung metastasis: a population-based study.</a> Cancer Medicine. 7 (3), 922-930 (2018).</li><li>Smid, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subtypes+of+breast+cancer+show+preferential+site+of+relapse.">Subtypes of breast cancer show preferential site of relapse.</a> Cancer Research. 68 (9), 3108-3114 (2008).</li><li>Kennecke, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metastatic+behavior+of+breast+cancer+subtypes.">Metastatic behavior of breast cancer subtypes.</a> Journal of Clinical Oncology. 28 (20), 3271-3277 (2010).</li><li>Soni, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Breast+cancer+subtypes+predispose+the+site+of+distant+metastases.">Breast cancer subtypes predispose the site of distant metastases.</a> American Journal of Clinical Pathology. 143 (4), 471-478 (2015).</li><li>Leone, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prognostic+impact+of+metastatic+pattern+in+stage+IV+breast+cancer+at+initial+diagnosis.">Prognostic impact of metastatic pattern in stage IV breast cancer at initial diagnosis.</a> Breast Cancer Research and Treatment. 161 (3), 537-548 (2017).</li><li>Pei, X. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Explant-cell+culture+of+primary+mammary+tumors+from+MMTV-c-Myc+transgenic+mice.">Explant-cell culture of primary mammary tumors from MMTV-c-Myc transgenic mice.</a> In Vitro Cellular and Developmental Biology: Animal. 40 (1-2), 14-21 (2004).</li><li>Mathsyaraja, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CSF1-ETS2-induced+microRNA+in+myeloid+cells+promote+metastatic+tumor+growth.">CSF1-ETS2-induced microRNA in myeloid cells promote metastatic tumor growth.</a> Oncogene. 34 (28), 3651-3661 (2015).</li><li>Yang, S., Zhang, J. J., Huang, X. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+for+tumor+metastasis.">Mouse models for tumor metastasis.</a> Methods in Molecular Biology. 928, 221-228 (2012).</li><li>La Perle, K. M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+Pathologists:+Ultimate+Control+Freaks+Seeking+Validation.">Comparative Pathologists: Ultimate Control Freaks Seeking Validation.</a> Veterinary Pathology. 56 (1), 19-23 (2019).</li><li>Blomberg, O. S., Spagnuolo, L., de Visser, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immune+regulation+of+metastasis:+mechanistic+insights+and+therapeutic+opportunities.">Immune regulation of metastasis: mechanistic insights and therapeutic opportunities.</a> Disease Models &amp; Mechanisms. 11 (10), (2018).</li><li>Gonzalez, H., Hagerling, C., Werb, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Roles+of+the+immune+system+in+cancer:+from+tumor+initiation+to+metastatic+progression.">Roles of the immune system in cancer: from tumor initiation to metastatic progression.</a> Genes and Development. 32 (19-20), 1267-1284 (2018).</li><li>Borowsky, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Syngeneic+mouse+mammary+carcinoma+cell+lines:+two+closely+related+cell+lines+with+divergent+metastatic+behavior.">Syngeneic mouse mammary carcinoma cell lines: two closely related cell lines with divergent metastatic behavior.</a> Clinical and Experimental Metastasis. 22 (1), 47-59 (2005).</li><li>Yang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunocompetent+mouse+allograft+models+for+development+of+therapies+to+target+breast+cancer+metastasis.">Immunocompetent mouse allograft models for development of therapies to target breast cancer metastasis.</a> Oncotarget. 8 (19), 30621-30643 (2017).</li><li>Resch, M., Neels, T., Tichy, A., Palme, R., Rulicke, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+assessment+of+tail-vein+injection+in+mice+using+a+modified+anaesthesia+induction+chamber+versus+a+common+restrainer+without+anaesthesia.">Impact assessment of tail-vein injection in mice using a modified anaesthesia induction chamber versus a common restrainer without anaesthesia.</a> Laboratory Animals. 53 (2), 190-201 (2019).</li><li>Rashid, O. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Is+tail+vein+injection+a+relevant+breast+cancer+lung+metastasis+model.">Is tail vein injection a relevant breast cancer lung metastasis model.</a> Journal of Thoracic Disease. 5 (4), 385-392 (2013).</li><li>Goodale, D., Phay, C., Postenka, C. O., Keeney, M., Allan, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+tumor+cell+dissemination+patterns+in+preclinical+models+of+cancer+metastasis+using+flow+cytometry+and+laser+scanning+cytometry.">Characterization of tumor cell dissemination patterns in preclinical models of cancer metastasis using flow cytometry and laser scanning cytometry.</a> Cytometry Part A. 75 (4), 344-355 (2009).</li><li>Goddard, E. T., Fischer, J., Schedin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Portal+Vein+Injection+Model+to+Study+Liver+Metastasis+of+Breast+Cancer.">A Portal Vein Injection Model to Study Liver Metastasis of Breast Cancer.</a> Journal of Visualized Experiments. (118), (2016).</li><li>Wright, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Murine+models+of+breast+cancer+bone+metastasis.">Murine models of breast cancer bone metastasis.</a> BoneKEy Reports. 5, 804 (2016).</li><li>Simmons, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+Models+of+Bone+Metastasis.">Animal Models of Bone Metastasis.</a> Veterinary Pathology. 52 (5), 827-841 (2015).</li><li>Liu, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+orthotopic+mouse+models+of+patient-derived+breast+cancer+brain+metastases+by+a+modified+intracarotid+injection+method.">Improving orthotopic mouse models of patient-derived breast cancer brain metastases by a modified intracarotid injection method.</a> Scientific Reports. 9 (1), 622 (2019).</li><li>Kodack, D. P., Askoxylakis, V., Ferraro, G. B., Fukumura, D., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Emerging+strategies+for+treating+brain+metastases+from+breast+cancer.">Emerging strategies for treating brain metastases from breast cancer.</a> Cancer Cell. 27 (2), 163-175 (2015).</li><li>Brown, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Practical+Stereology+Applications+for+the+Pathologist.">Practical Stereology Applications for the Pathologist.</a> Veterinary Pathology. 54 (3), 358-368 (2017).</li><li>Aeffner, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Digital+Microscopy,+Image+Analysis,+and+Virtual+Slide+Repository.">Digital Microscopy, Image Analysis, and Virtual Slide Repository.</a> Institute for Laboratory Animal Research Journal. 59 (1), 66-79 (2018).</li></ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Araştırmacılar metastaz için deneysel bir model olarak tümör hücrelerinin intravenöz enjeksiyonlarını kullanmaya devam ettikçe, ortaya çıkan metastatik tümör yükünü analiz etmek için standart uygulamalar eksiktir. Bazı durumlarda, belirli hücre hatlarının manipülasyonu ve/veya kimyasal bileşiklerin kullanımı üzerine metastatik tümör yükünde önemli farklılıklar makroskopik olarak gözlenebilir. Bununla birlikte, diğer durumlarda, metastatik tohumlama ve büyümedeki ince farklılıklar,...

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/61270/pathological-analysis-lung-metastasis-following-lateral-tail-vein">Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells</a>. The author list was updated.
The author list was updated from:
Katie A. Thies1,&#160;Sue E. Knoblaugh2, and Steven T. Sizemore1 
1Department of Radiation Oncology, Arthur G. James Comprehensive Cancer Center and Richard L. Solove Research Institute, The Ohio State University Medical Center 
2Department of Veterinary Biosciences, Comparative Pathology and Digital Imaging Shared Resource, The Ohio State University
to:
Katie A. Thies1, Sarah Steck1, Sue E. Knoblaugh2, and Steven T. Sizemore1 
1Department of Radiation Oncology, Arthur G. James Comprehensive Cancer Center and Richard L. Solove Research Institute, The Ohio State University Medical Center 
2Department of Veterinary Biosciences, Comparative Pathology and Digital Imaging Shared Resource, The Ohio State University

An erratum was issued for:&#160;<a href="https://www.jove.com/t/61270/pathological-analysis-lung-metastasis-following-lateral-tail-vein">Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells</a>. The author list was updated.

Erratum: Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells

Son derece karmaşık ve verimsiz bir süreç olmasına rağmen1, metastaz kanser hastalarının morbidite ve mortalitesine önemli bir katkıda bulunur2. Aslında, kansere bağlı ölümlerin çoğu hastalığın metastatik yayılmasına atfedilir3,4. Tümör hücrelerinin başarılı bir şekilde metastaz yapabilmesi için birincil bölgeden kopmaları, bitişik stroma yoluyla istila etmeleri, kan dolaşımına veya lenfatiklere intravazyona girmeleri, ikincil bir bölgenin kılcal yatağına gitmeleri, ikincil dokuya yayılmaları ve çoğalmaları veya metastatik lezyonlar oluşturmak için büyümeleri gerekir5. Fare modellerinin kullanımı, metastatik tohumlama ve büyümeden sorumlu moleküler mekanizmaların anlaşılmasını ilerletmek için kritik öneme sahiptir6,7. Burada, hem genetiği değiştirilmiş fare modellerinin hem de transplantasyon yöntemlerinin sıklıkla kullanıldığı meme kanseri metastazına odaklanıyoruz - her biri kendi avantajları ve sınırlamaları var.
Genetik olarak tasarlanmış meme tümörü modelleri, meme epitelinde transjenlerin ekspresyonini sağlamak için MMTV-LTR (fare meme tümörü virüsü uzun terminal tekrarı) ve WAP (Peynir Altı Suyu Asidik Protein) dahil olmak üzere meme bezine özgü promotörlerden yararlanır8. Polioma orta T antijeni (PyMT), ErbB2/Neu, c-Myc, Wnt-1 ve simian virüs 40 (SV40) dahil olmak üzere onkogenler bu şekilde ifade edilmiştir9,10,11,12,13 ve bu genetik modeller primer tümör başlangıç ve ilerlemesini incelemek için yararlı olmakla birlikte, çok azı uzak organlara kolayca metastaz yapmaktadır. Ayrıca, bu genetik fare modelleri genellikle spontan veya deneysel metastaz modellerine göre daha fazla zaman ve maliyet yasaklayıcıdır. Genetik olarak tasarlanmış meme tümörü modellerinin çoğunun metastaz çalışması için sınırlandırılması göz önüne alındığında, transplantasyon teknikleri bu karmaşık süreci incelemek için cazip yöntemler haline gelmiştir. Buna ortotopik, kuyruk damarı, intrakardiyak ve uygun hücre hatlarının intrakraniyal enjeksiyonu dahildir.
Meme yağı pedine ortotopik enjeksiyondan sonra birkaç meme kanseri hücre hattı kolayca metastaz yapsa da14,15, metastatik tümör yükünün tutarlılığı ve tekrarlanabilirliği zor olabilir ve bu tür çalışmaların süresi birkaç ay sırasına göre olabilir. Akciğer metastazını değerlendirmek için, özellikle kuyruk damarına intravenöz enjeksiyon genellikle birkaç hafta içinde meydana gelen metastatik yayılma ile daha tekrarlanabilir ve zaman etkili bir yöntemdir. Ancak intravenöz enjeksiyon modeli metastatik kaskadın ilk adımlarını atlatığından, bu çalışmaların sonuçlarının yorumlanmasının dikkatli olunmalıdır. Bu gösteride, meme tümörü hücrelerinin kuyruk damarı enjeksiyonunun yanı sıra doğru ve kapsamlı bir analiz yöntemi gösteriyoruz.
Araştırma topluluğu meme kanseri metastazının karmaşık sürecini anlamada önemli ilerleme kaydetmiş olsa da, şu anda 150.000'den fazla kadının metastatik meme kanserine sahip olduğu tahmin edilmektedir16. Evre IV meme kanseri olanların % > 36'sı akciğer metastazı17; bununla birlikte, metastazların bölgeye özgü deseni ve insidansı moleküler alt tipe göre değişebilir18,19,20,21. Meme kanseri ile ilişkili akciğer metastazları olan hastalar, bu hastalık için etkili tedaviler ve yeni biyobelirteçler belirleme ihtiyacını vurgulayan sadece 21 aylık ortanca bir sağkalıma sahiptir17. Tümör hücrelerinin intravenöz enjeksiyonu da dahil olmak üzere deneysel metastaz modellerinin kullanımı, bu önemli klinik zorluk hakkındaki bilgimizi ilerletmeye devam edecektir. Bu protokolde açıklanan dijital görüntüleme patolojisi ve metastatik akciğer tümörü yük analizi yöntemi ile birleştirildiğinde kuyruk damar enjeksiyonları meme kanseri metastaz araştırmaları için değerli bir araçtır.

<table><tbody><tr><td>alcohol prep pads</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-363-750</td><td>&lt;strong&gt;for cleaning tail prior to injection&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>dissection scissors</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-951-5</td><td>&lt;strong&gt;for mouse dissection and lung tissue inflation&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>DMEM with L-Glutamine, 4.5g/L Glucose and Sodium Pyruvate</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT10013CV</td><td>cell culture media base for MDA-MB-231 and MVT1 cell lines</td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s Phosphate-Buffered Salt Solution 1x</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT21030CV</td><td>used for resuspending tumor cells for injection</td></tr><tr><td>ethanol (70 % solution)</td><td>OSU</td><td></td><td>used to minimize mouse&#039;s fur during dissection; use caution - flammable</td></tr><tr><td>Evan&#039;s blue dye</td><td>Millipore Sigma</td><td>E2129</td><td>used at 1 % in sterile PBS for practice with tail-vein injection method; use caution - dangerous reagent</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Millipore Sigma</td><td>F4135</td><td>cell culture media additive; used at 10% in DMEM</td></tr><tr><td>forceps</td><td>Fisher Scientific</td><td>10-270</td><td>for dissection and lung tissue inflation</td></tr><tr><td>FVB/NJ mice</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>001800</td><td>syngeneic mouse strain for MVT1 cells</td></tr><tr><td>hemacytometer (Bright-Line)</td><td>Millipore Sigma</td><td>Z359629</td><td>for use in cell culture to obtain cell counts</td></tr><tr><td>insulin syringe (28 G)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-829-1B</td><td>for tail-vein injections (BD 329424)</td></tr><tr><td>MDA-MB-231 cells</td><td>ATCC</td><td></td><td>human breast cancer cell line</td></tr><tr><td>MVT1 cells</td><td></td><td></td><td>mouse mammary tumor cells</td></tr><tr><td>needles (26 G)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-826-15</td><td>used to inflate the mouse&#039;s lungs</td></tr><tr><td>neutral buffered formalin (10%)</td><td>Fisher Scientific</td><td>245685</td><td>used as a tissue fixative and to inflate lung tissue; use caution - dangerous reagent</td></tr><tr><td>NOD.Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ (NSG) mice</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>005557</td><td>maintained by OSUCCC Target Validation Shared Resource</td></tr><tr><td>Penicillin Streptomycin 100x</td><td>ThermoFisher</td><td>15140163</td><td>cell culture media additive</td></tr><tr><td>sterile gauze</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9379092</td><td>for applying pressue to mouse&#039;s tail if bleeding occurs</td></tr><tr><td>syringe (5 mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-955-458</td><td>used to inflate mouse lung tissue</td></tr><tr><td>tail-vein restrainer</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>TV-150 STD</td><td>used to restrain mouse for tail-vein injections</td></tr><tr><td>Trypan blue (0.4 %)</td><td>ThermoFisher</td><td>15250061</td><td>used in cell culture to assess viability</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA 0.25 %</td><td>ThermoFisher</td><td>25200-114</td><td>used in cell culture to detach tumor cells from plate</td></tr></tbody></table>

pathological analysis of lung metastasis following lateral tail-vein injection of tumor cells

Çoğu kanser hastası için morbidite ve mortalitenin birincil nedeni olan metastazın farelerde preklinik olarak model alınması zor olabilir. Birkaç spontan metastaz modeli mevcuttur. Bu nedenle, uygun hücre hatlarının kuyruk damarı enjeksiyonu içeren deneysel metastaz modeli metastaz araştırmalarının bir dayanağıdır. Kanser hücreleri lateral kuyruk damarına enjekte edildiğinde akciğer tercih ettikleri kolonizasyon bölgesidir. Bu tekniğin potansiyel bir sınırlaması metastatik akciğer tümörü yükünün doğru ölçülmesidir. Bazı araştırmacılar önceden tanımlanmış boyuttaki makrometazları sayarken ve/veya dokunun kesitini takiben mikrometazlar içerirken, diğerleri normal doku alanına göre metastatik lezyonların alanını belirler. Metastatik yük yüksek olduğunda bu niceleme yöntemlerinin her ikisi de son derece zor olabilir. Burada, akciğer metastazının intravenöz enjeksiyon modelini ve ardından görüntü analiz yazılımı kullanarak metastatik tümör yükünü ölçmek için gelişmiş bir yöntem gösteriyoruz. Bu işlem, kapsamlı bir analiz sağlamak için ortalama metastaz boyutu, toplam metastaz sayısı ve toplam metastaz alanı dahil olmak üzere birden fazla uç nokta parametresinin araştırılmasına olanak tanır. Ayrıca, bu yöntem doğruluğu sağlamak için Amerikan Veteriner Patologlar Koleji (SEK) tarafından onaylanmış bir veteriner patolog kurulu tarafından gözden geçirilmiştir.

Kuyruk damarı enjeksiyonu için etiketsiz hücreler kullanıyorsanız, makrometazlar gözlemlenebiliyorsa (1) nekropsi zamanına kadar veya (2) mikroskobik metastazlar varsa histolojik analizi takiben akciğer kolonizasyonunu doğrulamak zor olabilir. Geniş metastatik akciğer tümörü yükü ile fareler nefes almaya çalışacaktır. Herhangi bir tümör çalışmasında olduğu gibi, fareler çalışma süresi boyunca dikkatle izlenmelidir. Etiketli hücrelerin kullanımı, başarılı kuyruk damarı enjeksiyonu ona...

Watch this Scientific Journal Video about Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells at JoVE.com

Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells

Kanser hücrelerinin intravenöz enjeksiyonu genellikle metastaz araştırmalarında kullanılır, ancak metastatik tümör yükünü analiz etmek zor olabilir. Burada, metastazın kuyruk damarı enjeksiyon modelini gösteriyoruz ve ortaya çıkan metastatik akciğer tümörü yükünü analiz etmek için yeni bir yaklaşım içeriyoruz.

Tümör Hücrelerinin Lateral Kuyruk-Damar Enjeksiyonu Sonrasında Akciğer Metastazının Patolojik Analizi

Metastasis, the primary cause of morbidity and mortality for most cancer patients, can be challenging to model preclinically in mice. Few spontaneous ...

pathological-analysis-lung-metastasis-following-lateral-tail-vein

Research

JoVE Journal

Cancer Research

8.8K Görüntüleme.  The Ohio State University Medical Center. Kanser hücrelerinin intravenöz enjeksiyonu genellikle metastaz araştırmalarında kullanılır, ancak metastatik tümör yükünü analiz etmek zor olabilir. Burada, metastazın kuyruk damarı enjeksiyon modelini gösteriyoruz ve ortaya çıkan metastatik akciğer tümörü yükünü analiz etmek için yeni bir yaklaşım içeriyoruz.

Video: Pathological Analysis of Lung Metastasis Following Lateral Tail-Vein Injection of Tumor Cells

Lung Tumor Cell Recruitment Assay

To investigate the molecular mechanisms governing tumor metastasis, various assays using the mouse as a model animal have been proposed. Here, we demonstrate a simple assay to evaluate tumor cell extravasation or micrometastasis. In this assay, tumor cells were injected through the tail vein, and after a short period, the lungs were dissected and digested to count the accumulated labeled tumor cells. This assay skips the initial step of primary tumor invasion into the blood vessel and facilitates the study of events in the distant organ where tumor metastasis occurs. The number of cells injected into the blood vessel can be optimized to observe a limited number of metastases. It has been reported that stromal cells in the distant organ contribute to metastasis. Thus, this assay could be a useful tool to explore potential therapeutic drugs or devices for prevention of tumor metastasis.

This manuscript describes a method to quantify tumor cell accumulation in the lungs in an animal model of tumor metastasis.

Akciğer tümör hücre işe alım tahlil

To investigate the molecular mechanisms governing tumor metastasis, various assays using the mouse as a model animal have been proposed. Here, we ...

Kanser Araştırmaları

Experimental Metastasis Assay

Metastasis is the leading cause of death in cancer patients. To understand the mechanism of metastasis, an experimental metastasis assay was established using immunodeficient mice. This article delineates the procedures involved in this assay, including sample preparation, intravenous injection, and culturing cells from lung metastases. Briefly, a pre-determined number of human cancer cells were prepared in vitro and directly injected into the circulation of immunodeficient mice through their tail veins. A small number of cells survive the turbulence in the circulation and grow as metastases in internal organs, such as lung. The injected mice are dissected after a certain period. The tissue distribution of metastases is determined under a dissecting microscope. The number of metastases in a specific tissue is counted and it directly correlates with the metastatic ability of the injected cancer cells. The arisen metastases are isolated and cultured in vitro as cell lines, which often show enhanced metastatic abilities than the parental line when injected again into immunodeficient mice. These highly metastatic derivatives become useful tools for identifying genes or molecular pathways that regulate metastatic progression.

This article describes the procedures of an experimental metastasis assay that is used to determine the metastatic potential of human cancer cell lines.

Deneysel metastaz Testi

Metastasis is the leading cause of death in cancer patients.  To understand the mechanism of metastasis, an experimental metastasis assay was established ...

Tıp

A Portal Vein Injection Model to Study Liver Metastasis of Breast Cancer

Breast cancer is the leading cause of cancer-related mortality in women worldwide. Liver metastasis is involved in upwards of 30% of cases with breast cancer metastasis, and results in poor outcomes with median survival rates of only 4.8 - 15 months. Current rodent models of breast cancer metastasis, including primary tumor cell xenograft and spontaneous tumor models, rarely metastasize to the liver. Intracardiac and intrasplenic injection models do result in liver metastases, however these models can be confounded by concomitant secondary-site metastasis, or by compromised immunity due to removal of the spleen to avoid tumor growth at the injection site. To address the need for improved liver metastasis models, a murine portal vein injection method that delivers tumor cells firstly and directly to the liver was developed. This model delivers tumor cells to the liver without complications of concurrent metastases in other organs or removal of the spleen. The optimized portal vein protocol employs small injection volumes of 5 - 10 &#956;l, &#8805; 32 gauge needles, and hemostatic gauze at the injection site to control for blood loss. The portal vein injection approach in Balb/c female mice using three syngeneic mammary tumor lines of varying metastatic potential was tested; high-metastatic 4T1 cells, moderate-metastatic D2A1 cells, and low-metastatic D2.OR cells. Concentrations of &#8804; 10,000 cells/injection results in a latency of ~ 20 - 40 days for development of liver metastases with the higher metastatic 4T1 and D2A1 lines, and &#62; 55 days for the less aggressive D2.OR line. This model represents an important tool to study breast cancer metastasis to the liver, and may be applicable to other cancers that frequently metastasize to the liver including colorectal and pancreatic adenocarcinomas.

A surgical procedure was developed to deliver mammary tumor cells to the murine liver via portal vein injection. This model permits investigation of late stages of liver metastasis in a fully immune competent host, including tumor cell extravasation, seeding, survival, and metastatic outgrowth in the liver.

Bir Portal Ven Enjeksiyon Modeli Karaciğer Metastazı Meme Kanseri Eğitim için

Breast cancer is the leading cause of cancer-related mortality in women worldwide. Liver metastasis is involved in upwards of 30% of cases with breast ...

Practical Considerations in Studying Metastatic Lung Colonization in Osteosarcoma Using the Pulmonary Metastasis Assay

The pulmonary metastasis assay (PuMA) is an ex vivo lung explant and closed cell culture system that permits researchers to study the biology of lung colonization in osteosarcoma (OS) by fluorescence microscopy. This article provides a detailed description of the protocol, and discusses examples of obtaining image data on metastatic growth using widefield or confocal fluorescence microscopy platforms. The flexibility of the PuMA model permits researchers to study not only the growth of OS cells in the lung microenvironment, but also to assess the effects of anti-metastatic therapeutics over time. Confocal microscopy allows for unprecedented, high-resolution imaging of OS cell interactions with the lung parenchyma. Moreover, when the PuMA model is combined with fluorescent dyes or fluorescent protein genetic reporters, researchers can study the lung microenvironment, cellular and subcellular structures, gene function, and promoter activity in metastatic OS cells. The PuMA model provides a new tool for osteosarcoma researchers to discover new metastasis biology and assess the activity of novel anti-metastatic, targeted therapies.

The goal of this article is to provide a detailed description of the protocol for the pulmonary metastasis assay (PuMA). This model permits researchers to study metastatic osteosarcoma (OS) cell growth in lung tissue using a widefield fluorescence or confocal laser-scanning microscope.

Metastatik akciğer kolonizasyon pulmoner metastaz tahlil kullanarak osteosarkom içinde eğitim pratik düşünceler

The pulmonary metastasis assay (PuMA) is an ex vivo lung explant and closed cell culture system that permits researchers to study the biology of lung ...

Orthotopic Injection of Breast Cancer Cells into the Mice Mammary Fat Pad

A proper animal model is crucial for a better understanding of diseases. Animal models established by different methods (subcutaneous injections, xenografts, genetic manipulation, chemical reagents induction, etc.) have various pathological characters and play important roles in investigating certain aspects of diseases. Although no single model can totally mimic the whole human disease progression, orthotopic organs disease models with a proper stromal environment play an irreplaceable role in understanding diseases and screening for potential drugs. In this article, we describe how to implant breast cancer cells into the mammary fat pad in a simple, less invasive, and easy-to-handle way, and follow the metastasis to distant organs. With the proper features of primary tumor growth, breast and nipple pathological changes, and a high occurrence of other organs&#39; metastasis, this model maximumly mimics human breast cancer progression. Primary tumor growth in situ, long-distant metastasis, and the tumor microenvironment of breast cancer can be investigated by using this model.

Here, we present a protocol to implant breast cancer cells into the mammary fat pad in a simple, less invasive, and easy-to-handle way, and this mouse orthotopic breast cancer model with a proper mammary fat pad environment can be used to investigate various aspects of cancer.

Fareler meme yağ yastığı içine meme kanser hücrelerinin Orthotopic enjeksiyon

A proper animal model is crucial for a better understanding of diseases. Animal models established by different methods (subcutaneous injections, ...

Combined Use of Tail Vein Metastasis Assays and Real-Time In Vivo Imaging to Quantify Breast Cancer Metastatic Colonization and Burden in the Lungs

Metastasis is the main cause of cancer-related deaths and there are limited therapeutic options for patients with metastatic disease. The identification and testing of novel therapeutic targets that will facilitate the development of better treatments for metastatic disease requires preclinical in vivo models. Demonstrated here is a syngeneic mouse model for assaying breast cancer metastatic colonization and subsequent growth. Metastatic cancer cells are stably transduced with viral vectors encoding firefly luciferase and ZsGreen proteins. Candidate genes are then stably manipulated in luciferase/ZsGreen-expressing cancer cells and then the cells are injected into mice via the lateral tail vein to assay metastatic colonization and growth. An in vivo imaging device is then used to measure the bioluminescence or fluorescence of the tumor cells in the living animals to quantify changes in metastatic burden over time. The expression of the fluorescent protein allows the number and size of metastases in the lungs to be quantified at the end of the experiment without the need for sectioning or histological staining. This approach offers a relatively quick and easy way to test the role of candidate genes in metastatic colonization and growth, and provides a great deal more information than traditional tail vein metastasis assays. Using this approach, we show that simultaneous knockdown of Yes associated protein (YAP) and transcriptional co-activator with a PDZ-binding motif (TAZ) in breast cancer cells leads to reduced metastatic burden in the lungs and that this reduced burden is the result of significantly impaired metastatic colonization and reduced growth of metastases.

The described approach combines experimental tail vein metastasis assays with in vivo live animal imaging to allow real-time monitoring of breast cancer metastasis formation and growth in addition to the quantification of metastasis number and size in the lungs.

Kuyruk Ven Metastaz Tahlilleri ve Gerçek Zamanlı Vivo Görüntüleme Kombine Kullanımı Meme Kanseri Metastatik Kolonizasyon ve Yük Akciğerlerde Quantify için

Metastasis is the main cause of cancer-related deaths and there are limited therapeutic options for patients with metastatic disease. The identification ...

Modeling Brain Metastasis Via Tail-Vein Injection of Inflammatory Breast Cancer Cells

Metastatic spread to the brain is a common and devastating manifestation of many types of cancer. In the United States alone, about 200,000 patients are diagnosed with brain metastases each year. Significant progress has been made in improving survival outcomes for patients with primary breast cancer and systemic malignancies; however, the dismal prognosis for patients with clinical brain metastases highlights the urgent need to develop novel therapeutic agents and strategies against this deadly disease. The lack of suitable experimental models has been one of the major hurdles impeding advancement of our understanding of brain metastasis biology and treatment. Herein, we describe a xenograft mouse model of brain metastasis generated via tail-vein injection of an endogenously HER2-amplified cell line derived from inflammatory breast cancer (IBC), a rare and aggressive form of breast cancer. Cells were labeled with firefly luciferase and green fluorescence protein to monitor brain metastasis, and quantified metastatic burden by bioluminescence imaging, fluorescent stereomicroscopy, and histologic evaluation. Mice robustly and consistently develop brain metastases, allowing investigation of key mediators in the metastatic process and the development of preclinical testing of new treatment strategies.

We describe a xenograft mouse model of breast cancer brain metastasis generated via tail-vein injection of an endogenously HER2-amplified inflammatory breast cancer cell line.

İnflamatuar Meme Kanseri Hücrelerinin Kuyruk-Ven Enjeksiyonu ile Beyin Metastazının Modellenmesi

Metastatic spread to the brain is a common and devastating manifestation of many types of cancer. In the United States alone, about 200,000 patients are ...

Orthotopic Injection of Breast Cancer Cells into the Mammary Fat Pad of Mice to Study Tumor Growth.

Breast cancer growth can be studied in mice using a plethora of models. Genetic manipulation of breast cancer cells may provide insights into the functions of proteins involved in oncogenic progression or help to discover new tumor suppressors. In addition, injecting cancer cells into mice with different genotypes might provide a better understanding of the importance of the stromal compartment. Many models may be useful to investigate certain aspects of disease progression but do not recapitulate the entire cancerous process. In contrast, breast cancer cells engraftment to the mammary fat pad of mice better recapitulates the location of the disease and presence of the proper stromal compartment and therefore better mimics human cancerous disease. In this article, we describe how to implant breast cancer cells into mice orthotopically and explain how to collect tissues to analyse the tumor milieu and metastasis to distant organs. Using this model, many aspects (growth, angiogenesis, and metastasis) of cancer can be investigated simply by providing a proper environment for tumor cells to grow.

Cancer is a complex disease that is influenced by the tissue surrounding the tumor as well as local pro- and anti-inflammatory mediators. Therefore, orthotropic injection models, rather than subcutaneous models may be useful to study cancer progression in a manner that better mimics human pathology.

Farelerin Meme Fat Pad içine Meme Kanseri Hücreleri Ortotopik Enjeksiyon Tümör Büyüme Eğitim için.

Breast cancer growth can be studied in mice using a plethora of models. Genetic manipulation of breast cancer cells may provide insights into the ...

Injection of Syngeneic Murine Melanoma Cells to Determine Their Metastatic Potential in the Lungs

Approximately 90% of human cancer deaths are linked to metastasis. Despite the prevalence and relative harm of metastasis, therapeutics for treatment or prevention are lacking. We report a method for the establishment of pulmonary metastases in mice, useful for the study of this phenomenon. Tail vein injection of B57BL/6J mice with B16-BL6 is among the most used models for melanoma metastases. Some of the circulating tumor cells establish themselves in the lungs of the mouse, creating "experimental" metastatic foci. With this model it is possible to measure the relative effects of therapeutic agents on the development of cancer metastasis. The difference in enumerated lung foci between treated and untreated mice indicates the efficacy of metastases neutralization. However, prior to the investigation of a therapeutic agent, it is necessary to determine an optimal number of injected B16-BL6 cells for the quantitative analysis of metastatic foci. Injection of too many cells may result in an overabundance of metastatic foci, impairing proper quantification and overwhelming the effects of anti-cancer therapies, while injection of too few cells will hinder the comparison between treated and controls.

Metastasis plays a profound role in the virulence of cancer, accounting for an estimated 90% of deaths. We report a protocol for a metastatic melanoma model in mice that is useful for determining the efficacy of therapeutic agents against this clinical phenomenon.

Singenik Fare Melanom Hücreleri Enjeksiyon Akciğerler Onların Metastatik Potansiyeli belirleme

Approximately 90% of human cancer deaths are linked to metastasis.  Despite the prevalence and relative harm of metastasis, therapeutics for treatment or ...

An Orthotopic Mouse Model of Spontaneous Breast Cancer Metastasis

Metastasis is the primary cause of mortality of breast cancer patients. The mechanism underlying cancer cell metastasis, including breast cancer metastasis, is largely unknown and is a focus in cancer research. Various breast cancer spontaneous metastasis mouse models have been established. Here, we report a simplified procedure to establish orthotopic transplanted breast cancer primary tumor and resultant spontaneous metastasis that mimic human breast cancer metastasis. Combined with the bioluminescence live tumor imaging, this mouse model allows tumor growth and progression kinetics to be monitored and quantified. In this model, a low dose (1 x 104 cells) of 4T1-Luc breast cancer cells was injected into BALB/c mouse mammary fat pad using a tuberculin syringe. Mice were injected with luciferin and imaged at various time points using a bioluminescent imaging system. When the primary tumors grew to the size limit as in the IACUC-approved protocol (approximately 30 days), mice were anesthetized under constant flow of 2% isoflurane and oxygen. The tumor area was sterilized with 70% ethanol. The mouse skin around the tumor was excised to expose the tumor which was removed with a pair of sterile scissors. Removal of the primary tumor extends the survival of the 4T-1 tumor-bearing mice for one month. The mice were then repeatedly imaged for metastatic tumor spreading to distant organs. Therapeutic agents can be administered to suppress tumor metastasis at this point. This model is simple and yet sensitive in quantifying breast cancer cell growth in the primary site and progression kinetics to distant organs, and thus is an excellent model for studying breast cancer growth and progression, and for testing anti-metastasis therapeutic and immunotherapeutic agents in vivo.

An orthotopic breast cancer primary tumor model and surgical removal of primary tumor to extend mouse life to generate spontaneous metastasis are described. The tumor growth and progression are monitored and quantified by luciferase fluorescence imaging.

Tümör Hücrelerinin Lateral Kuyruk-Damar Enjeksiyonu Sonrasında Akciğer Metastazının Patolojik Analizi

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

PLAYLIST