Yazarlar, mali destek için Çin Ulusal Anahtar Araştırma ve Geliştirme Programına (Hibe No. 2021YFD2200502), Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı'na (Hibe No. 31971736) teşekkür eder.

1. Bambu fidelerinin hazırlanması
<ol><li>Guilin, Guangxi, Çin'de hasat edilen tohumları kullanarak moso bambu (Phyllostachys edulis) fideleri hazırlayın. Tohumları 2-3 gün suda bekleterek başlayın, suyu günlük olarak değiştirdiğinizden emin olun. Ardından, toprak ve vermiküliti 3:1 oranında karıştırarak bir alt tabaka oluşturun.</li>
	<li>Islatılmış tohumları çimlenme için alt tabakaya ekin. Fideleri laboratuvar koşullarında, sıcaklığı 18-25 °C arasında tutarak muhafaza edin. Işık fazı sırasında 250-350 μmol/m2/s ışık yoğunluğuna sahip 16 saat ışık/8 saat karanlık fotoperiyot sağlayın.</li>
	<li>Bağıl nemi yaklaşık% 60 oranında koruyun. Agrobacterium enfeksiyonu için, dönüşüm için en iyi aşama olan 15 günlük ve 2-10 cm yüksekliğe sahip fideler kullanın. NOT: Bambu çiçeklenmesi tahmin edilemez olduğundan, tohumlar her yıl mevcut değildir. Tohumlar genellikle kuru bir ortamda 4 °C'de 2-3 yıl saklanır ve yine de %20'nin üzerinde bir canlılığı koruyabilir.</li>
</ol>2. Plazmitlerin ve Agrobacterium'un hazırlanması
<ol><li>Plazmitler: Geçici ekspresyon etkisini doğrulamak için, CaMV 35S promotörü10 tarafından yönlendirilen görünür bir raportör geni içeren pHDE-35S::RUBY yapısını kullanın. Gen düzenleme için, mısır Ubi promotörü11 tarafından yönlendirilen Cas9 genini taşıyan pCambia1300-Ubi::Cas9 yapısını kullanın. PeVDE ve diğer hedef genlerin sgRNA kılavuz dizilerini pCambia1300-Ubi::Cas9 yapı9'daki iki AarI bölgesi arasına yerleştirin.</li>
	<li>CRISPR/Cas9 kılavuz RNA dizilerini, PeVDE ve PeCCR5 hedef genleri dahil olmak üzere pCambia1300-Ubi::Cas9 yapısının iki AarI kısıtlama endonükleaz bölgesi arasına yerleştirin.</li>
	<li>20 nükleotid dizisinin 5' ucuna GGCA ekleyin ve tek sarmallı bir DNA dizisi sentezleyin. 20 nükleotid dizisini ters tamamlayın ve 5' ucuna AAAC ekleyin, ardından başka bir tek sarmallı DNA dizisi sentezleyin.</li>
	<li>Her iki tek sarmallı DNA dizisini seyreltilmiş suda 10 nM/L konsantrasyona seyreltin, iyice karıştırın ve 95 °C'de 5 dakika ısıtın. Karışımın oda sıcaklığına soğumasını bekleyin, bu da çift telli adaptörlerin oluşmasına neden olur.</li>
	<li>Adaptörleri, T4 DNA ligaz kullanılarak AarI endonükleaz tarafından sindirilen doğrusal pCambia1300-Ubi::Cas9 fragmanına bağlayın ve istenen gen hedefleme yapısını elde etmek için yapılandırılmış CRISPR/Cas9 vektörünü sıralayın.</li>
	<li>Plazmitleri Agrobacterium'a dönüştürmek için donma-çözülme yöntemini aşağıdaki gibi kullanın: 1 μL plazmitleri (konsantrasyon: 10 - 1.000 ng/μL) 100 μL Agrobacterium-yetkin hücrelerle (translasyon verimliliği: > 1 x 10 4 koloni oluşturan birim/μg) karıştırın ve hafifçe karıştırın. Karışımı 5 dakika buz üzerine koyun. Karışımı 5 dakika boyunca sıvı nitrojene aktarın.</li>
	<li>Karışımı 37 °C'lik bir su banyosunda 5 dakika çözdürün. Karışıma 500 μL Luria-Bertani (LB) ortamı ekleyin ve 28 ° C'de 200 rpm'de 2-3 saat çalkalayan bir inkübatörde inkübe edin. pHDE-35S::RUBY plazmitleri için, bunları Agrobacterium tumefaciens'in (A. tumefaciens)12 AGL1, GV3101, LBA4044 ve EHA105 suşlarına ayrı ayrı sokun. CRISPR/Cas9 plazmitleri için, bunları A. tumefaciens'in GV3101 suşuna sokun.</li>
	<li>Agrobacterium'u maya özü pepton (YEP) ortamında (10 g sığır eti özü, 10 g maya özü ve L başına 5 g NaCl) karşılık gelen antibiyotiklerle (35S için spektinomisin::RUBY ve CRISPR/Cas9 için kanamisin) 28 °C'de büyütün. Tek koloniler ekimden 36-48 saat sonra gözlendi.</li>
	<li>Daha fazla büyüme için kolonileri seçin ve sıvı YEP ortamına (karşılık gelen antibiyotiklerle birlikte) aktarın. 24-36 saat sonra, plazmitlerin Agrobacterium'a başarılı bir şekilde aktarıldığını doğrulamak için PCR gerçekleştirmek için RUBY-F ve RUBY-R (Tablo 1) primerlerini kullanın.</li>
	<li>Başarılı bir şekilde dönüştürülmüş Agrobacterium'un 1 mL'sini 100 mL taze sıvı YEP ortamına (karşılık gelen antibiyotiklerle birlikte) aktarın ve daha sonra gece boyunca 28 ° C'de 0.8'lik bir OD600'e büyütün.</li>
	<li>Bakteriyel süspansiyonu 4.000 x g'da 4 °C'de 5 dakika santrifüjleyin, bakteri peletini süspansiyon infiltrasyon ortamıyla (10 mM MgCl2 ve 10 mM MES-KOH [pH 5.6]) bir kez yıkayın ve ardından tekrar santrifüjleyin. Bambu dönüşümü için bir süspansiyon infiltrasyon ortamında bakteri peletini 0.6'lık bir OD600'e yeniden süspanse edin.</li>
</ol>3. Bitki dönüşüm sisteminde agrobakteri aracılı
<ol><li>Dönüşüme hazırlanın; Kökleri toprağa bağlı olan fideleri alt tabakadan dikkatlice çıkarın ve köklerin sağlam kalmasını sağlayın. Nemi korumak ve toprağın ayrılmasını önlemek için fideleri kalay folyo ile sarın (Şekil 1A).</li>
	<li>Sarılmış fideleri 2 saat süreyle daha yüksek nemli (bağıl hava nemi %>90) ve daha düşük aydınlatmalı (yoğunluğu 50 μmol/m2/s'den az yoğunluk) bir ortama aktarın.</li>
	<li>Bir şırıngadan keskin bir iğne kullanarak, bambu fidelerinin kıvrılmış olgunlaşmamış yapraklarının üst kısmını (üstten yaklaşık 1-2 cm) bir veya iki kez sarın ( Şekil 1A'daki kırmızı üçgenlerle gösterildiği gibi).</li>
	<li>Daha sonra, fidelerin yaralı üst kısmını Agrobacterium süspansiyonlarına batırın. Taze yara aşılama verimliliğini artıracağından, yaralamadan Agrobacterium'a daldırmaya kadar tüm süreci hızlı bir şekilde gerçekleştirin.</li>
	<li>Fideleri hemen 2 dakika boyunca 25-27 mmHg basınçla bir vakum odasına aktarın (Şekil 1B).</li>
	<li>Vakumladıktan sonra, fideleri dikkatlice açın ve alt tabakaya tekrar dikin. Fideleri 2 gün boyunca oda sıcaklığında (18-25 °C) loş ışıkta veya karanlıkta (<50 μmol/m2/s) yüksek nemli (RH>%90) yere yerleştirin. Daha sonra, fideleri normal büyüme koşulları altında kültürleyin ve her 5-7 günde bir sulayın. Sonraki deneyler için materyal sağlamak için fenotiplerini gözlemleyin.</li>
</ol>4. Gen düzenleme için tek kılavuzlu RNA'ların (sgRNA'lar) tasarlanması
<ol><li>Hedef gen dizisinin belirli ve korunmuş bir alanının yakınında bulunan bir protospacer bitişik motif (PAM) bölgesini tanımlayın. Bu CRISPR/Cas9 sisteminde belirli PAM dizisinin NGG olduğundan emin olun. Bambu genom veritabanında bir BlastN araması gerçekleştirerek seçilen dizinin hedef üzerindeki özgüllüğünü doğrulayın. sgRNA'nın özellikle yukarı akış bölgesinde ve PAM 9,11'e yakın benzersiz olduğundan emin olun. NOT: Bu karşılaştırma, gen düzenleme sürecinden etkilenen genomdaki potansiyel hedef dışı bölgeleri etkili bir şekilde azaltacaktır.</li>
	<li>PeVDE geni13'ün ilk ekzonu üzerinde iki sgRNA (sgRNA-1 ve sgRNA-2) tasarlayın. sgRNA-1'de PAM'ın yukarısındaki YaşI kısıtlama bölgelerini ve sgRNA-2'de PAM'ın yukarısındaki XbaI kısıtlama bölgelerini dahil edin. KNWYCYGK'nin korunmuş motifini kodlayan PeCCR5 geninin dördüncü ekzonu üzerinde bir sgRNA tasarlayın. Bu motif, CCR'lerin14'ün katalizi için kritik öneme sahiptir.</li>
	<li>PAM bölgesine bitişik bir 20 nükleotid ara dizisi tasarlayın. Bu ara parça dizisi, Cas9 enzimini DNA bölünmesi ve ardından gen düzenlemesi için hedef bölgeye yönlendirecektir. NOT: PAM bölgesi içinde endonükleaz enzim bölünme bölgesinin yukarısında bir hedef bölge seçilmesi tavsiye edilir. Bu, gen düzenleme verimliliğinin doğrulanmasını kolaylaştıracaktır.</li>
</ol>5. Astar tasarımı ve PCR
<ol><li>PeVDE ve PeCCR5 fragmanlarının amplifikasyonu için özel primerleri manuel olarak tasarlayın. Elektroforez sırasında farklı bant ayrımına izin vermek için yukarı ve aşağı akış primerlerini, hedef bölgenin en az 100 bp dışına yerleştirilecek ve 100 bp'nin üzerinde bir uzunluk farkı olacak şekilde tasarlayın. Genin ilk 500 bp'si içinde RUBY'nin amplifikasyonu için primerler tasarlayın. Kullanılan tüm primerlerin bir listesi Tablo 1'de verilmiştir.</li>
	<li>PCR için yüksek kaliteli bir DNA polimeraz kullanın. Bu durumda, gen klonlamada yüksek sadakat ve verimli amplifikasyona sahip DNA polimeraz kullanın.</li>
	<li>PCR reaksiyon karışımını aşağıdaki gibi hazırlayın: 5x tampon (Mg2+ Plus): 4 μL; dNTP karışımı (her biri 2,5 mM): 1,6 μL; İleri ve geri primerler (her biri 10 pmol): her biri 1 μL; bambu genom DNA'sı (yaklaşık 50 ng); DNA Polimeraz (2.5 U/μL): 0.2 μL; Suyu toplam 20 μL hacme kadar seyreltin.</li>
	<li>PCR çalışma koşullarını takip edin: 98 °C'de 5 dakika boyunca ilk denatürasyon; 98 °C'de 10 saniye denatürasyon; 56 °C'de 5 sn tavlama; 72 °C'de 30 sn uzatma; 32 döngü boyunca denatürasyonu uzatmaya tekrarlayın; 72 °C'de 5 dakika son uzatma; 4 °C'de süresiz olarak tutun. NOT: PCR koşulları örnek olarak verilmiştir ve belirli uygulamalar veya hedefler için optimize edilmesi gerekebilir.</li>
</ol>6. DNA ekstraksiyonu, endonükleaz enzim sindirimi ve dizilimi
<ol><li>Görüntüleme-PAM florometresi ile tanımlandığı gibi, makas kullanarak taze bambu yaprağı bıçaklarından daha düşük NPQ değerlerine sahip bölgeyi ayırın (bkz. adım 7.4). Yaprak numunelerini sıvı nitrojen ile dondurun ve donmuş yaprak numunelerini bir havanda aktarın. Numuneleri bir havaneli kullanarak ince bir toz haline getirin ve öğütme işlemi sırasında yeterli sıvı nitrojen ekleyin. Bu adım, DNA da dahil olmak üzere hücresel içeriğin serbest bırakılmasına yardımcı olur.</li>
	<li>Setiltrimetilamonyum Amonyum Bromür (CTAB) yöntemini kullanarak toz haline getirilmiş yapraktan genomik DNA'yı çıkarın. 800 μL'lik %2'lik bir CTAB çözeltisine 50 mg yaprak tozu numunesi ekleyin. Numuneyi iyice karıştırın ve her 5 dakikada bir hafifçe çalkalayarak 65 °C'de 30 dakika inkübe edin.</li>
	<li>Eşit hacimde kloroform/izoamil alkol (24:1, h/v) ekleyin ve karışımı kuvvetlice çalkalayın. 8.000 g'da 8 dakika santrifüjlendikten sonra, süpernatanı yeni bir tüpe aktarın.</li>
	<li>Eşit hacimde kloroform/izoamil alkol ekleyin ve adım 6.3'ü tekrarlayın. Eşit hacimde buz gibi soğuk izopropanol ekleyin ve 30 dakika boyunca -20 ° C'ye yerleştirilmeden önce tüpü birkaç kez ters çevirin. 5 dakika boyunca 8.000 x g'da santrifüjlemeden sonra, süpernatanı atın.</li>
	<li>DNA peletini 2x %75 etanol ile 4 °C'de yıkayın, ardından 50 μL suda çözün.</li>
	<li>Hem yabani tip hem de Agrobacterium ile enfekte olmuş bambu yapraklarından hedef genlerin hedef bölgesini içeren genomik DNA'yı adım 5.4'teki protokolle çoğaltın.</li>
	<li>PCR ürünlerinin endonükleaz enzim sindirimini gerçekleştirin. Amplifiye edilmiş DNA fragmanları içinde istenen kısıtlama bölgelerini tanıyan spesifik bir enzim seçin. Sindirim için AgeI ve XbaI endonükleazlarını kullanın.</li>
	<li>YaşI veya XbaI (20 birim/μL)- 1 μL, 1 μg PCR ürünleri, 10x tampon- 5 μL'den oluşan bir reaksiyon karışımı hazırlayın ve toplam 50 μL hacme su ekleyin. 37 °C'de 1 saat inkübe edin.</li>
	<li>Jel elektroforezi kullanarak sindirilmiş DNA parçalarının oranını analiz edin. Gen düzenleme verimliliğini değerlendirmek için vahşi tip ve Agrobacterium ile enfekte olmuş örneklerden sindirilmiş parçaları karşılaştırın.</li>
	<li>PeVDE ve PeCCR5 fragmanlarının 9,15 amplifikasyonu için transpozaz adaptörü TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG ve GTCTCGTGGGCTCGGAGATGTGTATAAGAGACAG dizilerini sırasıyla ileri ve geri primerlerin 5' ucuna etiketleyin. Amplifikasyon için adım 5.4'te açıklanan protokolü kullanın. PCR ürünlerini (sindirimden önce) derin dizileme için hazırlayın.</li>
</ol>7. Yapraklarda NPQ değerlerinin klorofil floresansının ölçülmesi
<ol><li>Ölçümlerden önce, bambu fidelerini 2 saat boyunca 1200 μmol/m2/s'lik yüksek ışık yoğunluğu koşullarına maruz bırakın. Bu maruziyet, emilen ışık miktarını arttırır ve yapraklardaki fotokoruma sistemini harekete geçirir.</li>
	<li>Bambu yapraklarının in vivo PS II klorofil floresansını ölçmek için bir görüntüleme-PAM florometresi kullanın. 800 dakikalık floresan ölçümleri için aktinik ışık yoğunluğunu 2 μmol/m6/s'ye ayarlayın. Bu süre zarfında, klorofil floresan eğrileri elde etmek için her 30 saniyede bir doyurucu bir darbe uygulayın. Eğrilerin kararlı değerleri hesaplamalar için kullanılacaktır13.</li>
	<li>Aşağıdaki formülü kullanarak fotokimyasal olmayan söndürmeyi (NPQ) hesaplayın: NPQ = (F m - F m') / F m' burada F m, karanlığa uyarlanmış durumda maksimum floresansı temsil eder ve Fm', ışığa uyarlanmış herhangi bir durumda maksimum floresansı temsil eder.</li>
	<li>NPQ değerlerini görüntüleme yazılımının görsel arayüzünden izleyin. Yazılım, NPQ değerleri de dahil olmak üzere floresan verilerinin gerçek zamanlı analizine ve görüntülenmesine izin verir.</li>
</ol>

Bambuda Gen Dönüşümü ve Düzenleme Yöntemlerinin Geliştirilmesi

<ol>
	<li>Jiang, Z. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> World Bamboo and Rattan (in Chinese). , (2002).</li><li>Ye, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+efficient+plant+regeneration+and+transformation+system+of+ma+bamboo+(Dendrocalamus+latiflorus+Munro)+started+from+young+shoot+as+explant.">An efficient plant regeneration and transformation system of ma bamboo (Dendrocalamus latiflorus Munro) started from young shoot as explant.</a> Frontiers in Plant Science. 8, 1298 (2017).</li><li>Ye, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Robust+CRISPR/Cas9+mediated+genome+editing+and+its+application+in+manipulating+plant+height+in+the+first+generation+of+hexaploid+Ma+bamboo+(Dendrocalamus+latiflorus+Munro).">Robust CRISPR/Cas9 mediated genome editing and its application in manipulating plant height in the first generation of hexaploid Ma bamboo (Dendrocalamus latiflorus Munro).</a> Plant Biotechnology Journal. 18 (7), 1501-1503 (2020).</li><li>Xiang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Production+of+purple+Ma+bamboo+(Dendrocalamus+latiflorus+Munro)+with+enhanced+drought+and+cold+stress+tolerance+by+engineering+anthocyanin+biosynthesis.">Production of purple Ma bamboo (Dendrocalamus latiflorus Munro) with enhanced drought and cold stress tolerance by engineering anthocyanin biosynthesis.</a> Planta. 254 (3), 50 (2021).</li><li>Huang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+efficient+genetic+transformation+and+CRISPR/Cas9-based+genome+editing+system+for+moso+bamboo+(Phyllostachys+edulis).">An efficient genetic transformation and CRISPR/Cas9-based genome editing system for moso bamboo (Phyllostachys edulis).</a> Frontiers in Plant Science. 13, 822022 (2022).</li><li>Lee, M. W., Yang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+expression+assay+by+agroinfiltration+of+leaves.">Transient expression assay by agroinfiltration of leaves.</a> Methods in Molecular Biology. 323, 225-229 (2006).</li><li>Canto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transient+expression+systems+in+plants:+potentialities+and+constraints.">Transient expression systems in plants: potentialities and constraints.</a> Advances in Experimental Medicine and Biology. 896, 287-301 (2016).</li><li>Chen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+the+production+and+expedient+screening+of+CRISPR/Cas9-mediated+non-transgenic+mutant+plants.">A method for the production and expedient screening of CRISPR/Cas9-mediated non-transgenic mutant plants.</a> Horticulture Research. 5, 13 (2018).</li><li>Sun, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+biotechnology+for+in-planta+gene+editing+and+its+application+in+promoting+flavonoid+biosynthesis+in+bamboo+leaves.">A new biotechnology for in-planta gene editing and its application in promoting flavonoid biosynthesis in bamboo leaves.</a> Plant Methods. 19 (1), 20 (2023).</li><li>He, Y., Zhang, T., Sun, H., Zhan, H., Zhao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+reporter+for+noninvasively+monitoring+gene+expression+and+plant+transformation.">A reporter for noninvasively monitoring gene expression and plant transformation.</a> Horticulture Research. 7 (1), 152 (2020).</li><li>Wang, C., Shen, L., Fu, Y., Yan, C., Wang, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+CRISPR/Cas9+system+for+multiplex+genome+editing+in+rice.">A simple CRISPR/Cas9 system for multiplex genome editing in rice.</a> Journal of Genetics and Genomics. 42 (12), 703-706 (2015).</li><li>McCormick, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Leaf+disc+transformation+of+cultivated+tomato+(L.+esculentum)+using+Agrobacterium+tumefaciens.">Leaf disc transformation of cultivated tomato (L. esculentum) using Agrobacterium tumefaciens.</a> Plant Cell Reports. 5 (2), 81-84 (1986).</li><li>Lou, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=a+violaxanthin+de-epoxidase+gene+from+moso+bamboo,+confers+photoprotection+ability+in+transgenic+Arabidopsis+under+high+light.">a violaxanthin de-epoxidase gene from moso bamboo, confers photoprotection ability in transgenic Arabidopsis under high light.</a> Frontiers in Plant Science. 13, 927949 (2022).</li><li>Zhou, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+cinnamoyl+CoA+reductases+involved+in+parallel+routes+to+lignin+in+Medicago+truncatula.">Distinct cinnamoyl CoA reductases involved in parallel routes to lignin in Medicago truncatula.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (41), 17803-17808 (2010).</li><li>De Roeck, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deleterious+ABCA7+mutations+and+transcript+rescue+mechanisms+in+early+onset+Alzheimer's+disease.">Deleterious ABCA7 mutations and transcript rescue mechanisms in early onset Alzheimer's disease.</a> Acta Neuropathologica. 134 (3), 475-487 (2017).</li></ol>

Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Bu yöntem, tipik olarak 1-2 yıl süren geleneksel genetik transformasyon yöntemlerine kıyasla gereken süreyi önemli ölçüde azaltır ve 5 gün içinde eksojen genlerin geçici ekspresyonunu ve endojen genlerin gen düzenlemesini sağlar. Bununla birlikte, bu yöntemin sınırlamaları vardır, çünkü hücrelerin yalnızca küçük bir kısmını dönüştürebilir ve gen düzenlenmiş yapraklar kimeriktir ve tam bitkilere dönüşme yeteneğinden yoksundur. Bununla birlikte, planta gen ekspresyonu ve gen düzen...

Bambudaki gen fonksiyonunun araştırılması, bambunun ileri düzeyde anlaşılması ve genetik modifikasyon potansiyelinin ortaya çıkarılması için büyük umut vaat ediyor. Bunun etkili bir yolu, bambu yapraklarında Agrobacterium aracılı enfeksiyon süreci ile elde edilebilir, bu sayede eksojen genleri içeren T-DNA fragmanı hücrelere sokulur ve daha sonra yaprak hücreleri içindeki genlerin ekspresyonuna yol açar.
Bambu, imalat, sanat ve araştırmada geniş bir uygulama yelpazesine sahip değerli ve yenilenebilir bir kaynaktır. Bambu, yüksek mekanik mukavemet, tokluk, orta sertlik ve esneklik 1 gibi mükemmel ahşap özelliklerine sahiptir ve şu anda diş fırçaları, pipetler, düğmeler, tek kullanımlık sofra takımları, yeraltı boru hatları ve termal enerji üretimi için soğutma kulesi dolguları dahil olmak üzere çeşitli evve endüstriyel malzemelerde yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu nedenle, bambu yetiştiriciliği, plastiklerin yerini almak ve plastik kullanımını azaltmak, çevreyi korumak ve iklim değişikliğiyle mücadele etmek için mükemmel ahşap özelliklere sahip bambu çeşitlerinin elde edilmesinde ve ayrıca önemli ekonomik değer yaratmada çok önemli bir rol oynamaktadır.
Bununla birlikte, geleneksel bambu yetiştiriciliği, uzun vejetatif büyüme aşaması ve belirsiz çiçeklenme dönemi nedeniyle zorluklarla karşı karşıyadır. Moleküler ıslah teknikleri geliştirilmiş ve bambu ıslahına uygulanmış olsa da, bambu gen dönüşümü süreci, kallus indüksiyonu ve rejenerasyon süreçlerinedeniyle zaman alıcı, emek yoğun ve karmaşıktır 2,3,4,5. Stabil genetik dönüşüm genellikle kallus indüksiyonu ve rejenerasyonu gibi doku kültürü süreçlerini içeren Agrobacterium aracılı yöntemler gerektirir. Bununla birlikte, bambu, kallus rejenerasyonu için düşük bir yeteneğe sahiptir ve bambuda kararlı genetik dönüşümün uygulanmasını büyük ölçüde sınırlar. Agrobacterium bitki hücrelerini enfekte ettikten sonra, T-DNA fragmanı bitki hücrelerine girer ve T-DNA fragmanlarının çoğu hücrelere entegre olmadan kalır ve bu da geçici ekspresyona neden olur. T-DNA fragmanlarının sadece küçük bir kısmı rastgele kromozomuna entegre olur ve bu da kararlı ekspresyona yol açar. Geçici ekspresyon seviyeleri, Agrobacterium tarafından verilen bir T-DNA'dan eksprese edilen her gen için değişebilen bir birikim eğrisi gösterir. Çoğu durumda, en yüksek ekspresyon seviyeleri infiltrasyondan 3-4 gün sonra ortaya çıkar ve 5-6 gün sonra hızla azalır 6,7. Önceki çalışmalar, direnç için seleksiyon baskısı olmadan elde edilen gen düzenlenmiş bitkilerdeki mutasyonların 1/3'ünden fazlasının CRISPR/Cas9'un geçici ekspresyonundan geldiğini, geri kalan 2/3'ünden daha azının ise DNA'nın genom8'e entegrasyonundan sonra kararlı ekspresyondan geldiğini göstermiştir. Bu, gen düzenleme için T-DNA'nın bitki genomuna entegrasyonunun gerekli olmadığını gösterir. Ayrıca, direnç için seleksiyon baskısı, enfekte eksplantların rejenerasyon sürecini doğrudan etkileyen, transgenik olmayan hücrelerin büyümesini önemli ölçüde inhibe eder. Bu nedenle, bambuda direnç için seleksiyon baskısı olmadan geçici ekspresyon kullanarak, eksojen genlerin entegre olmayan ekspresyonunu elde etmek ve gen fonksiyonunu doğrudan bitki organlarında incelemek mümkündür. Bu nedenle, bambu9'da eksojen gen ekspresyonu ve düzenlenmesi için kolay ve zaman kazandıran bir yöntem geliştirilebilir.
Geliştirilen eksojen gen ekspresyonu ve gen düzenleme yöntemi, basitliği, maliyet etkinliği ve pahalı ekipman veya karmaşık prosedürlerin olmaması ile karakterize edilir9. Bu yöntemde, bambu endojen violaksantin de-epoksidaz geni (PeVDE), seleksiyon baskısı olmaksızın eksojen gen ekspresyonu için raportör olarak kullanıldı. Bunun nedeni, bambu yapraklarındaki düzenlenmiş PeVDE'nin yüksek ışık altında foto koruma yeteneğini azaltması ve klorofil floresan görüntüleme ile tespit edilebilen fotokimyasal olmayan söndürme (NPQ) değerinde bir azalma göstermesidir. Bu yöntemin etkinliğini göstermek için, başka bir bambu endojen geni olan sinnamoil-CoA redüktaz geni (PeCCR5)9, bu sistem kullanılarak nakavt edildi ve bu genin mutantlarını başarıyla üretti. Bu teknik, bambu yapraklarında işlevleri olan genlerin fonksiyonel karakterizasyonu için kullanılabilir. Bu genleri bambu yapraklarında geçici olarak aşırı eksprese ederek, ekspresyon seviyeleri arttırılabilir veya gen düzenleme ile ekspresyonları düşürülebilir, bu da aşağı akış gen ekspresyon seviyelerinin, yaprak fenotiplerinin ve ürün içeriklerinin incelenmesine izin verir. Bu, bambuda gen fonksiyonu araştırması için daha verimli ve uygulanabilir bir yaklaşım sağlar. Bu teknik, bambu yapraklarında işlev gören genlerin fonksiyonel karakterizasyonuna uygulanabilir. Bu genleri bambu yapraklarında geçici olarak aşırı eksprese ederek, ekspresyon seviyeleri arttırılabilir veya gen düzenleme ile ekspresyonları düşürülebilir, bu da aşağı akış gen ekspresyon seviyelerinin, yaprak fenotiplerinin ve ürün içeriklerinin incelenmesine izin verir. Ek olarak, kapsamlı poliploidizasyon nedeniyle, bambu genomlarındaki ticari açıdan önemli genlerin çoğunun birden fazla kopyada bulunduğunu ve bunun da genetik fazlalığa neden olduğunu belirtmek önemlidir. Bu, bambuda multipleks genom düzenlemesi yapmak için bir zorluk teşkil ediyor. Kararlı genetik transformasyon veya gen düzenleme tekniklerinin uygulanmasından önce, gen fonksiyonlarını hızlı bir şekilde doğrulamak çok önemlidir. Çoklu gen kopyaları konusunu ele alırken, bir yaklaşım, belirli aşamalarda aktif olarak eksprese edilen genleri tanımlamak için transkriptom ekspresyon profillerini analiz etmektir. Ayrıca, bu gen kopyalarının korunmuş fonksiyonel alanlarını hedeflemek, ortak hedef dizilerin tasarımına veya birden fazla hedef bölgenin aynı CRISPR / Cas9 vektörüne dahil edilmesine izin vererek, bu genlerin aynı anda nakavt edilmesini sağlar. Bu, bambuda gen fonksiyonu araştırması için daha verimli ve uygulanabilir bir yaklaşım sağlar.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>35S::RUBY</td>
			<td>Addgene, United States</td>
			<td>160908</td>
			<td>Plamid construct</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agrobacterium competent cells of GV3101, EHA105,LBA4404, and AGL1</td>
			<td>Biomed, China</td>
			<td>BC304-01, BC303-01, BC301-01, and BC302-01</td>
			<td>For Agrobacterium infection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CTAB</td>
			<td>Sigma-Aldrich, United States</td>
			<td>57-09-0</td>
			<td>DNA extraction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging-PAM fluorometer</td>
			<td>Walz, Effeltrich, Germany</td>
			<td></td>
			<td>Detect chlorophyll fluorescence of bamboo leaves</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImagingWin</td>
			<td>Walz, Effeltrich, Germany</td>
			<td></td>
			<td>Software for Imaging-PAM fluorometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paq CI or Aar I</td>
			<td>NEB, United States</td>
			<td>R0745S</td>
			<td>Incorporate the target sequence onto the CRISPR/Cas9 vector.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PrimeSTAR Max DNA polymerase</td>
			<td>Takara, Japan</td>
			<td>R045Q</td>
			<td>For gene cloning</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T4 DNA ligase</td>
			<td>NEB, United States</td>
			<td>M0202V</td>
			<td>Incorporate the target sequence onto the CRISPR/Cas9 vector.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in planta gene expression and gene editing in moso bamboo leaves

Bambu için, zaman alıcı ve emek yoğun kallus indüksiyonu ve rejenerasyon işlemlerine olan ihtiyacı ortadan kaldıran yeni bir planta gen dönüşüm yöntemi geliştirilmiştir. Bu yöntem, bambu fideleri için yaralama ve vakum yoluyla Agrobacterium aracılı gen ekspresyonunu içerir. Bambu yapraklarında RUBY raportörü ve Cas9 geni gibi eksojen genlerin ekspresyonunu başarıyla gösterdi. RUBY fidelerinde betalain birikimi için en yüksek dönüşüm verimliliği, enfeksiyondan sonra% 85.2'lik bir yüzde ile GV3101 suşu kullanılarak elde edildi. Yabancı DNA, bambu genomuna entegre olmamasına rağmen, yöntem eksojen genleri ifade etmede etkiliydi. Ayrıca, bu yöntem kullanılarak doğal bir raportör ile bir gen düzenleme sistemi de geliştirilmiştir ve bundan, bambu yapraklarında düzenlenmiş bambu violaksantin de-epoksidaz geni (PeVDE) tarafından üretilen ve %17.33'lük bir mutasyon oranına sahip bir in situ mutant elde edilmiştir. PeVDE'nin mutasyonu, bir florometre ile doğru bir şekilde tespit edilebilen, yüksek ışık altında fotokimyasal olmayan söndürme (NPQ) değerlerinin azalmasına neden oldu. Bu, düzenlenmiş PeVDE'yi bambudaki hem eksojen hem de endojen genler için potansiyel bir yerli raportör yapar. PeVDE raportörü ile bir sinnamoil-CoA redüktaz geni, %8.3'lük bir mutasyon oranıyla başarılı bir şekilde düzenlendi. Bu işlem, bambuda eksojen genleri ve endojen gen düzenlemesini eksprese etmek için hızlı ve verimli olan doku kültürü veya kallus indüksiyonu sürecini önler. Bu yöntem, gen fonksiyon doğrulamasının verimliliğini artırabilir ve bambudaki temel metabolik yolların moleküler mekanizmalarını ortaya çıkarmaya yardımcı olacaktır.

The investigation of gene function in bamboo holds great promise for the advanced understanding of bamboo and unlocking its potential for genetic modification. An effective way of this can be achieved through the process of Agrobacterium-mediated infection in bamboo leaves, whereby the T-DNA fragment containing exogenous genes is introduced into the cells, subsequently leading to the expression of the genes within the leaf cells.
Bamboo is a valuable and renewable resource with a wide range of applications in manufacturing, art, and research. Bamboo possesses excellent wood properties such as high mechanical strength, toughness, moderate stiffness, and flexibility1, which is now widely used in a variety of household and industrial supplies, including toothbrushes, straws, buttons, disposable tableware, underground pipelines, and cooling tower fillers for thermal power generation. Therefore, bamboo breeding plays a crucial role in obtaining bamboo varieties with excellent wood properties for replacing plastics and reducing plastic usage, protecting the environment, and tackling climate change, as well as generating significant economic value.
However, traditional bamboo breeding faces challenges due to the lengthy vegetative growth stage and uncertain flowering period. Although molecular breeding techniques have been developed and applied to bamboo breeding, the process of bamboo gene transformation is time-consuming, labor-intensive, and complicated due to the callus induction and regeneration processes2,3,4,5. Stable genetic transformation often requires Agrobacterium-mediated methods, which involve tissue culture processes such as callus induction and regeneration. However, bamboo has a low ability for callus regeneration, greatly limiting the application of stable genetic transformation in bamboo. After Agrobacterium infects plant cells, the T-DNA fragment enters the plant cells, with the majority of T-DNA fragments remaining non-integrated in the cells, resulting in transient expression. Only a small portion of T-DNA fragments randomly integrate into its chromosome, leading to stable expression. The transient expression levels show an accumulation curve that can vary for each gene expressed from an Agrobacterium-delivered T-DNA. In most cases, the highest expression levels occur 3-4 days after infiltration and quickly decrease after 5-6 days6,7. Previous studies have shown that more than 1/3rd of mutations in gene-edited plants obtained without selection pressure for resistance come from the transient expression of CRISPR/Cas9, while the remaining less than 2/3rd come from stable expression after DNA integration into the genome8. This indicates that T-DNA integration into the plant genome is not necessary for gene editing. Moreover, selection pressure for resistance significantly inhibits the growth of non-transgenic cells, directly affecting the regeneration process of infected explants. Therefore, by using transient expression without selection pressure for resistance in bamboo, it is possible to achieve non-integrated expression of exogenous genes and study gene function directly in plant organs. Hence, an easy and time-saving method can be developed for exogenous gene expression and editing in bamboo9.
The developed exogenous gene expression and gene editing method is characterized by its simplicity, cost-effectiveness, and the absence of expensive equipment or complex procedures9. In this method, the bamboo endogenous violaxanthin de-epoxidase gene (PeVDE) was used as the reporter for exogenous gene expression without selection pressure. This is because the edited PeVDE in bamboo leaves reduces the photoprotection ability under high light and demonstrates a decrease in the non-photochemical quenching (NPQ) value, which can be detected through chlorophyll fluorescence imaging. To demonstrate the effectiveness of this method, another bamboo endogenous gene, the cinnamoyl-CoA reductase gene (PeCCR5)9, was knocked out using this system and successfully generated mutants of this gene. This technique can be used for the functional characterization of genes that have functions in bamboo leaves. By overexpressing these genes transiently in bamboo leaves, their expression levels can be enhanced, or by gene editing, their expression can be knocked down, allowing for the study of downstream gene expression levels, leaf phenotypes, and product contents. This provides a more efficient and feasible approach for gene function research in bamboo. This technique can be applied to the functional characterization of genes that function in bamboo leaves. By overexpressing these genes transiently in bamboo leaves, their expression levels can be enhanced, or by gene editing, their expression can be knocked down, allowing for the study of downstream gene expression levels, leaf phenotypes, and product contents. Additionally, it is important to note that, due to extensive polyploidization, the majority of commercially important genes in bamboo genomes are present in multiple copies, resulting in genetic redundancy. This poses a challenge for performing multiplex genome editing in bamboo. Prior to the application of stable genetic transformation or gene editing techniques, it is crucial to quickly validate gene functions. In addressing the issue of multiple gene copies, one approach is to analyze transcriptome expression profiles to identify genes that are actively expressed during specific stages. Furthermore, targeting the conserved functional domains of these gene copies allows for the design of common target sequences or the incorporation of multiple target sites into the same CRISPR/Cas9 vector, enabling the simultaneous knockout of these genes. This provides a more efficient and feasible approach for gene function research in bamboo.

Yazar Spotlight: Sürdürülebilir Plastik Alternatifler için Bambu Yapraklarında Gen Düzenlemeyi Geliştirme 

Burada: Planta Moso Bambu Yapraklarında Gen İfadesi ve Gen Düzenleme

In this study, we used Agrobacterium as a vector to introduce foreign DNA fragments into bamboo leaves. Most DNA fragments are not integrated into chromosomes and undergo transient expression. We took advantage of this transient expression to carry out gene editing.The main challenge is the limitation of gene editing of bamboo leaves, which cannot regenerate. This propose difficulties in performing editing in regenerative organs, like young shoots, and obtaining edited branches or subsequent generations with desired genetic challenges. Its main advantage is the time-saving aspect of the principle.By being able to edit bamboo genes directly in bamboo leaves, it allows for quick verification of gene fractions. This eliminates the needs for time-consuming procedures, like tissue culture or transformation, significantly speeding up research on bamboo gene fractions. The primary research will be focused on investigating the molecular mechanism of bamboo biomass formation.This will involve understanding why bamboo grows rapidly, and using that knowledge to develop bamboo varieties which are suitable for plastic substituent.

Bambu yapraklarında planta gen ekspresyonunda agrobakteri aracılı RUBY raportör geninin, tirozin10'dan canlı kırmızı betalain üretme kabiliyeti nedeniyle geçici gen ekspresyonunu görselleştirmede etkili olduğu gösterilmiştir. Bu çalışmada, bambu yapraklarında eksojen RUBY genini geçici olarak eksprese etmek için Agrobacterium aracılı transformasyon kullanılmıştır (Şekil 1). En...

Watch this Scientific Journal Video about Advancing Gene Editing in Bamboo Leaves for Sustainable Plastic Alternatives at JoVE.com

Bu çalışmada, bambuda Agrobacterium'un aracılık ettiği planta gen ekspresyonu ve gen düzenleme yönteminde yeni bir yöntem geliştirilmiştir. Bu yöntem, bambu ıslah sürecini hızlandırmak için önemli etkileri olan bambuda gen fonksiyon doğrulamasının verimliliğini büyük ölçüde artırdı.

A novel in planta gene transformation method was developed for bamboo, which avoids the need for time-consuming and labor-intensive callus induction and ...

Bu çalışmada, bambu yapraklarına yabancı DNA parçaları eklemek için Agrobacterium'u bir vektör olarak kullandık. Çoğu DNA parçası kromozomlara entegre değildir ve geçici ekspresyona uğrar. Gen düzenlemesini gerçekleştirmek için bu geçici ifadeden yararlandık.Asıl zorluk, yenilenemeyen bambu yapraklarının gen düzenlemesinin sınırlandırılmasıdır. Bu, genç sürgünler gibi rejeneratif organlarda düzenleme yapmada ve istenen genetik zorluklarla düzenlenmiş dallar veya sonraki nesiller elde etmede zorluklar ortaya koymaktadır. Başlıca avantajı, prensibin zaman kazandıran yönüdür.Bambu genlerini doğrudan bambu yapraklarında düzenleyerek, gen fraksiyonlarının hızlı bir şekilde doğrulanmasını sağlar. Bu, doku kültürü veya transformasyon gibi zaman alıcı prosedürlere olan ihtiyacı ortadan kaldırarak bambu gen fraksiyonları üzerindeki araştırmaları önemli ölçüde hızlandırır. Birincil araştırma, bambu biyokütle oluşumunun moleküler mekanizmasını araştırmaya odaklanacaktır.Bu, bambunun neden hızla büyüdüğünü anlamayı ve bu bilgiyi plastik ikame için uygun bambu çeşitleri geliştirmek için kullanmayı içerecektir.

in-planta-gene-expression-and-gene-editing-in-moso-bamboo-leaves

Research

JoVE Journal

Biology

In Planta Gene Expression and Gene Editing in Moso Bamboo Leaves

1.1K Görüntüleme.  Key Laboratory of State Forestry and Grassland Administration/Beijing on Bamboo & Rattan Science and Technology. Bu çalışmada, bambu yapraklarına yabancı DNA parçaları eklemek için Agrobacterium'u bir vektör olarak kullandık. Çoğu DNA parçası kromozomlara entegre değildir ve geçici ekspresyona uğrar. Gen düzenlemesini gerçekleştirmek için bu geçici ifadeden yararlandık.Asıl zorluk, yenilenemeyen bambu yapraklarının gen düzenlemesinin sınırlandırılmasıdır. Bu, genç sürgünler gibi rejeneratif organlarda düzenleme yapmada ve istenen genetik zorluklarla düzenlenm...

Video: Yazar Spotlight: Sürdürülebilir Plastik Alternatifler için Bambu Yapraklarında Gen Düzenlemeyi Geliştirme 

A novel in planta gene transformation method was developed for bamboo, which avoids the need for time-consuming and labor-intensive callus induction and regeneration processes. This method involves Agrobacterium-mediated gene expression via wounding and vacuum for bamboo seedlings. It successfully demonstrated the expression of exogenous genes, such as the RUBY reporter and Cas9 gene, in bamboo leaves. The highest transformation efficiency for the accumulation of betalain in RUBY seedlings was achieved using the GV3101 strain, with a percentage of 85.2% after infection. Although the foreign DNA did not integrate into the bamboo genome, the method was efficient in expressing the exogenous genes. Furthermore, a gene editing system has also been developed with a native reporter using this method, from which an in situ mutant generated by the edited bamboo violaxanthin de-epoxidase gene (PeVDE) in bamboo leaves, with a mutation rate of 17.33%. The mutation of PeVDE resulted in decreased non-photochemical quenching (NPQ) values under high light, which can be accurately detected by a fluorometer. This makes the edited PeVDE a potential native reporter for both exogenous and endogenous genes in bamboo. With the reporter of PeVDE, a cinnamoyl-CoA reductase gene was successfully edited with a mutation rate of 8.3%. This operation avoids the process of tissue culture or callus induction, which is quick and efficient for expressing exogenous genes and endogenous gene editing in bamboo. This method can improve the efficiency of gene function verification and will help reveal the molecular mechanisms of key metabolic pathways in bamboo.

In this study, a novel in planta gene expression and gene editing method mediated by Agrobacterium was developed in bamboo. This method greatly improved the efficiency of gene function validation in bamboo, which has significant implications for accelerating the process of bamboo breeding.

Biyoloji

Preparation of Bamboo Seedlings and Agrobacterium-Mediated In Planta Transformation System for Gene Expression

Preparation of Bamboo Seedlings and Agrobacterium -Mediated In Planta Transformation System for Gene Expression  

To begin, sow the pre-soaked bamboo seeds into the substrate of soil and vermiculite for germination. For agrobacterium infection, carefully remove the 15 day old seedlings with soil attached roots from the substrate. Wrap the seedlings with tinfoil to maintain moisture and prevent soil detachment.Transfer the wrapped seedlings to the plant growth chamber with higher humidity and lower illumination for two hours. Next, using a sharp needle from a syringe, wound the upper part of curled immature leaves once or twice. Quickly dip the wounded part of the leaves into agrobacterium suspension.Then immediately transfer the seedlings to a vacuum chamber with a pressure of 25 to 27 millimeters of mercury for two minutes. After vacuuming, carefully unwrap the seedlings and replant them into the substrate. Allow the seedlings to grow in a plant growth chamber in dim light with high humidity for two days.Then culture the seedlings under normal growth conditions, watering them every five to seven days.

Bambu Fidelerinin ve Planta Transformasyon Sisteminde Agrobakteri Aracılı Gen Ekspresyonu Hazırlanması

In Planta Gene Expression and Measurement of Chlorophyll Fluorescence of Non-Photochemical Quenching Values in Bamboo Leaves

Begin by extracting the genomic DNA from the wild-type and Agrobacterium-infected bamboo leaves. Amplify the genomic DNA containing the target site of the target genes from wild-type and Agrobacterium-infected bamboo leaves using the following PCR conditions. After PCR, perform endonuclease enzyme digestion by preparing a reaction mixture containing one microliter of age-1, one microgram of PCR products, and five-microliter 10X buffer.Then, add water to a final volume of 50 microliters. Incubate the digestion mixture at 37 degrees Celsius for one hour. Using gel electrophoresis, analyze the proportion of digested DNA fragments.Compare the digested fragments from the wild-type and Agrobacterium-infected samples to assess gene editing efficiency. Expose the bamboo seedlings to high light intensity conditions to increase the amount of absorbed light quantum and activation of the leaf photoprotection system. Next, turn on the IMAGING-PAM fluorometer and set the actinic light intensity to measure in vivo photosystem II chlorophyll fluorescence of bamboo leaves.The red beta lane color produced by the RUBY gene indicated successful Agrobacterium-mediated gene expression in bamboo leaves. Out of the four Agrobacterium strains, GV3101 strain caused the most significant beta lane accumulation in infected bamboo leaves. After infection with the CRISPR-Cas9 constructs and high light treatments, certain areas of the leaf blades showed lower non-photochemical quenching values.Furthermore, enzyme digestion and sequencing analysis confirmed the successful mutation of the PeVDE gene in the edited regions. Sanger sequencing results of the PeVDE fragment after editing by both sgRNA1 and sgRNA2 showed deletion of a long fragment in the PeVDE gene. After 30 days of Agrobacterium infection, the leaf areas transfected with sgRNAs for both PeVDE and PeCCR5 exhibited lower non-photochemical quenching values.