Name: measures of heart and ventilatory rates in freely moving crayfish
Uploaded: 2009-10-15T23:30:00
Duration: 6 min 47 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Measures of Heart and Ventilatory Rates in Freely Moving Crayfish at JoVE.com

Introdução Organismos deve apresentar uma grande variedade de comportamentos para responder a estímulos ameaçadores e mudanças no ambiente. A resposta autonômica é bem estudada em vertebrados como a luta ou fuga resposta em que o sistema nervoso simpático fisiologicamente prepara o ambiente interno (Carpenter, 1976;. Nicholls et al, 2001). É através de alterações fisiológicas que o organismo pode regular a resposta ao estresse e alterar o comportamento de reagir a um ataque iminente ou mudanças ambientais. As evidências mostram que o sistema cardio-vascular está intimamente ligada com o sistema respiratório, assim, permitindo que o ambiente interno para responder e implementar uma resposta. É sabido que o controle autonômico do sistema respiratório e cardiovascular pode regular a disponibilidade de oxigênio e nutrientes para os tecidos-alvo específicos necessários para uma resposta iminente comportamentais. Nos vertebrados, a resposta autonômica e fisiológicos é tão bem evoluído, mas parece provável que os invertebrados complexos, de modo semelhante possuem um sistema de resposta desenvolvidos (Schapker et al, 2002;. Zavarzin, 1941). Apesar de vertebrados e invertebrados são muito diferentes sistematicamente; invertebrados altamente desenvolvidos exigem a rápida resposta cardiovascular e respiratória para responder em uma briga ou modo de vôo. Para muitos invertebrados, uma resposta simpática-como fisiológicos podem ser quantificados. Datado de 1927, muitos dos estudos muito cedo foram realizados em invertebrados, especificamente utilizando artrópodes em geral (Alexandrowicz, 1932; Orlov, 1927; Zavarzin, 1941). Lagostas são conhecidos por apresentar uma ampla gama de comportamentos rápida, assim como a capacidade de avaliar e responder aos estímulos ambientais. Estudos muito cedo notaram uma resposta simpática-como de uma resposta rápida e imediata de postura de defesa (Bethe, 1897; Huxley, 1880; Shuranova et al, 2006;. Wiersma, 1961). O coração lagostas adultas é neurogênica desde a batida eo ritmo são controladas pelo sistema nervoso central (Alexandrowicz, 1932; Yamagishi e Hirose, 1997;. Yamagishi et al, 1997; Wilkens, 1999). Rotineiramente, a medição da taxa de um animal cardíaca (FC) fornece uma medida direta da excitação e prontidão do ambiente interno. Em lagostas, um aumento da FC é notado durante uma postura de defesa quando apresentados com um estímulo percebido ameaçadora (Listerman et al., 2000). Este tipo de resposta do sistema nervoso também foi mostrado em lagostas (Yazawa e Katsuyama, 2001). O sistema respiratório também é neuronalmente controlados com um gerador de padrão ventilatório central (VPG), responsável pela captação de oxigênio através das brânquias pela ação de bombeamento de dois apêndices especializados scaphognathites denominado (Mendelson, 1971). A única scaphognathite reside em cada câmara branquial nas extremidades anterior e tira água através das brânquias por um movimento rítmico (Pasztor, 1968). O VPG, como com o coração, pode ser modulada por diversos fatores. Trabalho anterior no caranguejo, Cancer magister mostra ritmo cardíaco e respiratório podem ser alteradas por controle central através dos neurônios de comando (Wilkens et al., 1974). Além disso, a atividade da VPG é conhecido por mudar com as mudanças na resposta interna e com as interações sociais ou mudanças ambientais em crustáceos (Burmistrov e Shuranova, 1996; cuadras, 1979, 1980; Li et al, 2000;. Listerman et al. , 2000; McMahon e Wilkens, 1983; Schapker et al, 2002;. Shuranova et al, 2002;. Wilkens, 1976). Como visto no crustáceo, atividade ventilatória (RV) pode variar dependendo do estado interno e mudanças no VR pode ser gravado durante inesperados estímulos externos (Shuranova et al, 1993;. Shuranova et al, 2002).. Devido à confiabilidade e viabilidade de RH e medidas VR, as questões futuras a serem feitas são infinitas. Como observado anteriormente, o trabalho tem sido feito para examinar a resposta autonômica durante as interações sociais e distúrbios ambientais. Curiosamente, muitas áreas são deixadas para serem explorados como o exame da resposta autonômica durante alterações hormonais naturais e / ou outros processos fisiológicos que ocorrem no organismo. Possíveis direções futuras também podem examinar simpática-como respostas durante o acasalamento e recepção química olfativa. Mais importante ainda, respostas fisiológicas podem fornecer insights maior em uma resposta do organismo ao meio ambiente quando comparado com as observações comportamentais já que os animais nem sempre respondem comportamentalmente quando eles estão se preparando internamente. Assim, a medida fisiológica fornece um índice biológico para avaliar o estado interno de um organismo que pode explicar as mudanças globais em um organismo. Métodos Antes de começar a fio um crustáceo, preparação de fios é necessária. Corte dois fios de aço inoxidável (diâmetro 0,005 polegadas e com o revestimento 0,008 polegadas; AM Systems, Carlsburg, WA) o tempo suficiente para inserir o lagostim e adequadamente chegar a um detector de impedância (UFI, modelo 2991). Remova o isolamento (~ 0,5 mm) pelo fogo nas extremidades de ambos os fios que serão inseridos na carapaça. Tenha cuidado para não remover o isolamento muito como um fio desencapado na parte externa do animal deve ser recoberto para evitar curto-circuito de impedância gravações. Em seguida, usando uma pinça dobrar as extremidades dos fios queimados em um ângulo de 90 para a colocação na carapaça. Certifique-se que a parte inserida do fio não é muito longa, porque isso poderia causar danos aos órgãos internos. De viabilidade de inserir os fios em um tubo de plástico (que protege os fios), o melhor é vagamente torcer os fios juntos. Se o coração de gravação e as taxas de ventilação, repita os passos acima a uma segunda vez e os dois conjuntos de fios pode ser vagamente trançados juntos antes da colocação no tubo de plástico. Certifique-se de designar os fios para o coração e taxa de ventilação de modo a não confundir os quais os fios que atribuem ao detector de impedância para a gravação. É melhor para rotular os fios cortados ou um par mais curto do que o outro no começo. Viabilizar e segura o fio lagostas, é melhor para embrulhar as garras e as pernas (deixando as costas e um lado exposto), em pano molhado ou toalhas de papel para eliminar o dano à pessoa e / ou lagostim (Figura 1). <img src="/files/ftp_upload/1594/1594fig1.jpg" style="float:left;" alt="Figura 1" /> Figura 1. Envolvimento da chelipeds e as pernas do crustáceo. Envolvendo o crustáceo em uma toalha de papel molhado vai evitar lesões à pessoa e os lagostins. A embalagem vai dificultar a capacidade do crustáceo para mover o chelipeds e pernas. Para iniciar o processo de fiação, é melhor começar na câmara branquial vez que a espessura da carapaça varia de acordo com cada lagostas e força em excesso pode causar danos aos órgãos internos, assim, começando na câmara branquial, a pressão excessiva é menos provável de matar o crustáceo como em comparação com a caixa torácica. O primeiro buraco é feita usando uma ponta fina bisturi e grande o suficiente para um fio para ser colocado debaixo da cutícula na região rostral da câmara branquial (ie, câmara prebranchial para monitorar freqüência ventilatória;. Schapker et al, 2002). Um grande buraco terá perda de hemolinfa excessiva e não veda adequadamente e isso vai aumentar a probabilidade de os fios não permanecendo no buraco designado. Uma vez que o fio está no lugar, queda de uma pequena quantidade de cola (éster de cianoacrilato) e acelerador (HobbyTown EUA, Lexington, KY) para o fio. O uso da cola de secagem rápida reduz o stress manejo dos animais. Tenha cuidado para colocar apenas uma pequena quantidade de acelerador para a cutícula uma vez que este é tóxico para o lagostim e causar a morte. É melhor acabar imediatamente qualquer acelerador adicional fora com papel toalha. Repita essas etapas para o segundo fio na câmara branquial. Estes dois fios são colocados para abranger o scaphognathite (órgão respiratório) para garantir uma medida de impedância forte precisas durante cada movimento scaphognathite (Figura 2). Para obter um registro mais preciso, certifique-se que o segundo fio não é colocado fora da câmara branquial e na caixa torácica. <img src="/files/ftp_upload/1594/1594fig2.jpg" style="float:left;" alt="Figura 2" /> Figura 2. Colocação de fios de aço inoxidável na câmara branquial. Os pontos brancos na carapaça representam pontos para os fios de aço inoxidável para ser colocado sob a cutícula. Os fios atravessam o scaphognathite e movimento através da medida de impedância dinâmica. Os passos para a taxa de fiação coração na caixa torácica é o mesmo que acima, exceto os fios são colocados sob a carapaça dorsal diretamente sobre o coração e extensão do coração em um arranjo rostral-caudal (Figura 3). Este posicionamento garante uma medida de impedância forte precisas durante cada contração do coração (Listerman et al., 2001). <img src="/files/ftp_upload/1594/1594fig3.jpg" style="float:left;" alt="Figura 3" /> Figura 3. Colocação de fios de aço inoxidável na caixa torácica. Os pontos brancos na carapaça representam pontos para os fios de aço inoxidável para ser colocado sob a cutícula. Os fios atravessam o coração em um arranjo rostral-caudal. Isto irá permitir a medidas de contração do coração através de impedância dinâmica. Uma vez que a colocação de todos os quatro fios está completo, misturar um adesivo instantâneo (Eastman, 5 min e secagempoxy) e revestimento dos furos para cada local, assim como os fios. Uma vez que os fios e furos sejam adequadamente cobertos, use o epóxi restantes para segurar o tubo de plástico à volta do lagostim. Isso irá garantir que os fios não vai ser puxado para fora dos buracos em manejos futuros. Desde o epóxi leva alguns minutos para secar, deter ou coloque o crustáceo em um recipiente sem água até que o epoxy não é mais pegajosa ao toque. Uma vez que o epoxi é seco, lavar as lagostas em água para remover excesso de produtos químicos e colocá-los de volta em um ambiente aquático. Para garantir a saúde do crustáceo, o melhor é trocar a água em cerca de uma hora para remover quaisquer substâncias químicas não previamente removido. Como se observa dos investigadores anteriores, descobrimos que manipulação prolongada altera a medidas fisiológicas de estresse, devido por um período de tempo de 24 h para 3 dias (Wilkens et al, 1985.), Portanto, os animais devem ser deixados para 2 a 3 dias antes de qualquer experimentação . ECGs para gravar, conectar os fios do crustáceo a detectores de impedância. Os dois fios que medem o cardíaca (FC medida) deve ser ligado a um detector de impedância único e mesmo para os dois fios que medem o scaphognathite (medida VR). O detector de impedância medidas resistência dinâmica entre os dois fios de aço inoxidável. Esses sinais são captados por ligar o detector on-line para um PowerLab através de uma interface PowerLab/4SP (Instrumentos AD). Todos os eventos são medidos e calibrado com a versão do software 5.5.6 Gráfico PowerLab (AD Instruments, Austrália). Para começar, defina uma taxa de aquisição de 4 kHz. As deflexões grandes representará batimento cardíaco ea taxa de ventilação. Para facilitar a contagem de cada HR / VR, uma função de suavização pode aplicar ao conjunto de dados. Se 100 pontos foram suavizados (isto é, em média) o traço resultante vai retratar apenas os batimentos cardíacos. A freqüência cardíaca pode ser determinado por contagem direta de cada batida mais de 10 s intervalos e depois convertido em batimentos por min (BPM).

     

<ol>
	<li>Alexandrowicz, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+innervation+of+the+heart+of+Crustacea.">The innervation of the heart of Crustacea.</a> I. Decapoda. Wuart. J. Microsc. Sci. 75, 181-249 (1932).</li><li>Bethe, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vergleichende+Untersuchungen+uber+die+Funtionen+des+Zentrainervensystems+der+Arthropoden.">Vergleichende Untersuchungen uber die Funtionen des Zentrainervensystems der Arthropoden.</a> Pfluger s Arch. Ges. Physiol. 68, 449-545 (1897).</li><li>Burmistrov, Y. M., Shuranova, Z. P., Abramson, C. I., Shuranova, Z. P., Burmistrov, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Russian Contributions to Invertebrate Behavior. , 111-144 (1996).</li><li>Carpenter, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+autonomic+nervous+system.">The autonomic nervous system.</a> Human Neuroanatomy. , 191-212 (1976).</li><li>Cuadras, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+and+agonistic+behavior+in+unrestrained+crabs.">Heart rate and agonistic behavior in unrestrained crabs.</a> Mar. Behav. Physiol. 6, 189-196 (1979).</li><li>Cuadras, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+responses+to+visual+detection+of+movement,+mechanostimulation+and+cheliped+improsed+movement+in+hermit+crabs.">Cardiac responses to visual detection of movement, mechanostimulation and cheliped improsed movement in hermit crabs.</a> Comp. Biochem. Physiol. A. 66, 113-1171 (1980).</li><li>Huxley, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Crayfish: An introduction to the study of zoology. , (1977).</li><li>Li, H., Listerman, L. R., Doshi, D., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+heart+rate+to+measure+intrinsic+state+of+blind+cave+crayfish+during+social+interactions.">Use of heart rate to measure intrinsic state of blind cave crayfish during social interactions.</a> Comp. Bichem. Physiol. 127A, 55-70 (2000).</li><li>Listerman, L. R., Deskins, J., Bradacs, H., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+within+male+crayfish:+social+interactions+and+effects+of+5-HT.">Heart rate within male crayfish: social interactions and effects of 5-HT.</a> Comp. Biochem. Physiol. 125, 251-263 (2000).</li><li>McMahon, B. R., Wilkens, J. L., Mantel, L., Bliss, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ventilation,+perfusion+and+oxygen+uptake.">Ventilation, perfusion and oxygen uptake.</a> Biology of Crustacea. 6, 289-372 (1983).</li><li>Mendelson, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oscillator+neurons+in+crustacean+ganglia.">Oscillator neurons in crustacean ganglia.</a> Science. 171, 1170-1173 (1971).</li><li>Nicholls, J. G., Martin, A. R., Wallace, B. G., Fuchs, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> From Neuron to Brain. , 315-317 (2001).</li><li>Orlov, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Das+Magenganglion+des+Flu&#946;krebses,+Ein+Beitrag+zur+vergleichenden+Histologis+des+sympathischen+Nervensystem.">Das Magenganglion des Flu&#946;krebses, Ein Beitrag zur vergleichenden Histologis des sympathischen Nervensystem.</a> Z. Mikrosk. Anat. Forschung. 8, 67-102 (1927).</li><li>Pasztor, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neurophysiology+of+respiration+in+decapod+Crustacea:+The+motor+system.">The neurophysiology of respiration in decapod Crustacea: The motor system.</a> Can. J. Zool. 46, 585-596 (1968).</li><li>Schapker, H., Breithaupt, T., Shuranova, Z., Burmistrov, Y., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+and+ventilatory+correlative+measures+in+crayfish+during+environmental+disturbances+and+social+interactions.">Heart rate and ventilatory correlative measures in crayfish during environmental disturbances and social interactions.</a> Comp. Biochem. Physiol., A. 131, 397-407 (2002).</li><li>Shuranova, Z. P., Vekhov, A. V., Burmistrov, Y. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+behavioral+reactions+of+fresh-water+crayfish+to+sensory+exposures:+the+autonomic+components.">The behavioral reactions of fresh-water crayfish to sensory exposures: the autonomic components.</a> Zh. Vyssh Nerv. Deiat Im I P Pavlova. 43, 1159-1169 (1993).</li><li>Shuranova, Z. P., Burmistrov, Y. M., Wiese, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ventilatory+activity+in+free+moving+crayfish+is+indicative+of+its+functional+state+and+perceiving+external+stimuli.">Ventilatory activity in free moving crayfish is indicative of its functional state and perceiving external stimuli.</a> The Crustacean Nervous System. , 526-535 (2002).</li><li>Shuranova, Z. P., Burmistrov, Y. M., Strawn, J. R., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence+for+an+autonomic+nervous+system+in+decapod+crustaceans.">Evidence for an autonomic nervous system in decapod crustaceans.</a> Inter. J. Zool. Res. 2, 242-283 (2006).</li><li>Wiersma, C. A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reflexes+and+the+central+nervous+system.">Reflexes and the central nervous system.</a> The physiology of Crustacea, vol II, Sense organs, integration, and behavior. , 241-279 (1961).</li><li>Wilkens, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuronal+control+of+respiration+in+decapod+Crustacea.+Fed.">Neuronal control of respiration in decapod Crustacea. Fed.</a> Fed. Proc. 35, 2000-2006 (1976).</li><li>Wilkens, J. L., Wilkens, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+control+of+cardiac+and+scaphognathite+pacemakers+in+the+crab+Cancer+magister.">Central control of cardiac and scaphognathite pacemakers in the crab Cancer magister.</a> J. Comp. Physiol. 90, 89-104 (1974).</li><li>Wilkens, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+control+of+cardiac+rhythmicity+and+of+blood+distribution+in+crustaceans.">The control of cardiac rhythmicity and of blood distribution in crustaceans.</a> Comp. Biochem. Physiol. A. 124, 531-538 (1999).</li><li>Yamagishi, H., Ando, H., Makioka, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myogenic+heartbeat+in+the+primitive+crustacean+Triops+longicaudatus.">Myogenic heartbeat in the primitive crustacean Triops longicaudatus.</a> Biol. Bull. 193, 350-358 (1997).</li><li>Yazawa, T., Katsuyama, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spontaneous+and+repetitive+cardiac+slowdown+in+the+freely+moving+spiny+lobster,+Panulirus+japonicas.">Spontaneous and repetitive cardiac slowdown in the freely moving spiny lobster, Panulirus japonicas.</a> J. Comp. Physiol. 187, 817-824 (2001).</li><li>Zavarzin, A. A., Zavarzin, A. A., Izbrannye, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Ocherki po evol utsionnoj gistologii nervnoj sistemy (Essays on the evolutionary histology of the nervous system). III, (1950).</li></ol>

<table border="1">
<tbody>
<tr>
<td>Material Name</td>
<td>Type</td>
<td>Company</td>
<td>Catalogue Number</td>
</tr>	
<tr>
<td>Scalpel (Stainless steel surgical blades No. 11 for No. 3 handle)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td>Stainless steel wire (diameter 0.005 inches with the coating 0.008 inches; A-M Systems, Carlsburg, WA)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td>Impedance detector (UFI, model 2991)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td>Plastic tubing (Tygon Tubing ID .0812, OD .1492, Cole-Parmer Instrument Company)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td>Fast-drying glue (cyanoacrylate ester, HobbyTown USA, Lexington, KY)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td>Accelerator (HobbyTown USA, Lexington, KY)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td>Adhesive (Eastman, 5-min drying epoxy)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td><a href="http://www.adinstruments.com/products/hardware/corporate/product/ML866/" target="_blank">PowerLab via a PowerLab/4SP interface (AD Instruments)</a>.</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td><a href="http://www.adinstruments.com/products/software/research/LabChart-Software/" target="_blank">PowerLab Chart software version 5.5.6 (AD Instruments, Australia)</a></td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
<tr>
<td><a href="http://www.adinstruments.com/products/software/research/LabChart-Software/" target="_blank">Chart software version 3.5.6 (AD Instruments, Australia)</a></td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>&nbsp;</td>
</tr>
</tbody>
		</table>

measures of heart and ventilatory rates in freely moving crayfish

A resposta de vôo medo, ou lutar serve de base fisiológica fundamental para examinar a consciência de um organismo de seu ambiente em um ataque predador iminente. Embora não se sabe se os invertebrados possuem um sistema nervoso autônomo idêntico ao dos vertebrados, a evidência mostra invertebrados têm uma resposta simpática-como para regular o ambiente interno e preparar o organismo para agir comportamental a um estímulo dado. Além disso, essa resposta fisiológica pode ser viável medidos e ele age como um índice biológico para o estado interno do animal. Medições da resposta fisiológica podem estar diretamente relacionados a estressores internos e externos através de mudanças na coordenação do sistema nervoso central controlada dos sistemas cardio-vascular e respiratória. Mais especificamente, a monitorização cardíaca e ventilação fornecer medidas quantificáveis ​​da resposta ao estresse nem sempre comportamentais observadas. Lagostas são organismos bom modelo para o coração e medições freqüência ventilatória devido à possibilidade de gravação, bem como a rica história conhecida da morfologia do crustáceo, que remonta a Huxley em 1888, e os comportamentos bem estudado típico.

Watch this Scientific Journal Video about Measures of Heart and Ventilatory Rates in Freely Moving Crayfish at JoVE.com

Measures of Heart and Ventilatory Rates in Freely Moving Crayfish

Invertebrados apresentam uma resposta simpática-como autônomo semelhante ao descrito para os vertebrados. A coordenação dos sistemas cardio-vascular e ventilatórias permite a medição de um índice biológico no qual se pode avaliar um estado organismo interna.

Medidas de freqüência cardíaca e ventilatória em se movimentar livremente Crayfish

The fear, flight or fight response serves as the fundamental physiological basis for examining an organism's awareness of its environment under an ...

Research

JoVE Journal

Biology

Implantation of Engineered Tissue in the Rat Heart

Implantação de engenharia de tecidos no coração de ratos

Rodent surgery is often an important component in assessing the utility of engineered tissues. A wide variety of surgical procedures can be performed in ...

Biologia

Recordings of Neural Circuit Activation in Freely Behaving Animals

Gravações da ativação do circuito neural no Livremente Behaving Animais

The relationship between patterns of neural activity and corresponding behavioral expression is difficult to establish in unrestrained animals. ...

Historical View and Physiology Demonstration at the NMJ of the Crayfish Opener Muscle

Ver histórico e demonstração Fisiologia da MNJ da Muscle Opener Crayfish

Here we present some of the key important discoveries made with the opener neuromuscular (NMJ) preparation of crustaceans and illustrate that there is ...

Preparation of embryos for Electron Microscopy of the Drosophila embryonic heart tube

Preparation of embryos for Electron Microscopy of the Drosophila embryonic heart tube

Preparação de embriões de Microscopia Eletrônica do Drosophila Tubo cardíaco embrionário

The morphogenesis of the Drosophila  embryonic heart tube has emerged as a valuable model system for studying cell migration, cell-cell adhesion and cell ...

Quantification of &gamma;H2AX Foci in Response to Ionising Radiation

Quantification of &#947;H2AX Foci in Response to Ionising Radiation

Quantificação de γH2AX Focos em resposta à radiação ionizante

DNA double-strand breaks (DSBs), which are induced by either endogenous metabolic processes or by exogenous sources, are one of the most critical DNA ...

Quantitation of &gamma;H2AX Foci in Tissue Samples

Quantitation of &#947;H2AX Foci in Tissue Samples

Quantificação de γH2AX Focos em amostras de tecido

DNA double-strand breaks (DSBs) are particularly lethal and genotoxic lesions, that can arise either by endogenous (physiological or pathological) ...

Evaluation of the Spatial Distribution of &gamma;H2AX following Ionizing Radiation

Evaluation of the Spatial Distribution of &#947;H2AX following Ionizing Radiation

Avaliação da Distribuição Espacial da γH2AX seguintes Radiação Ionizante

An early molecular response to DNA double-strand breaks (DSBs) is phosphorylation of the Ser-139 residue within the terminal SQEY motif of the histone ...

Clonogenic Assay: Adherent Cells

Clonogênica Ensaio: células aderentes

The clonogenic (or colony forming) assay has been established for more than 50 years; the original paper describing the technique was published in 19561. ...

Assessment of Calcium Sparks in Intact Skeletal Muscle Fibers

Avaliação do cálcio Faíscas intactas fibras musculares esqueléticas

Maintaining homeostatic Ca2+ signaling is a fundamental physiological process in living cells. Ca2+ sparks are the elementary units of Ca2+ signaling in ...

Measurement of mRNA Decay Rates in Saccharomyces cerevisiae Using rpb1-1 Strains

Measurement of mRNA Decay Rates in Saccharomyces cerevisiae Using rpb1-1 Strains

Medição do mRNA Decay Preços em<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt; Usando<em&gt; Rpb1-1</em&gt; Cepas

mRNA steady state levels vary depending on environmental conditions. Regulation of the steady state accumulation levels of an mRNA ensures that the ...