The video demonstrates the surgical procedure for implanting a Hickman catheter in swine, detailing catheter length adjustment, vessel preparation, securing sutures, and confirming catheter patency. It reports a successful patent rate of 78.13% in a study of 32 swine, noting minor repair needs and effective outcomes for catheter management.

insertion and securing the catheter

Cathéter Hickman pour l’accès vasculaire à long terme chez les porcs

The indispensable role of central venous catheters (CVCs) in patient care is owed to their convenience, favorable safety profile, and versatility1. Functions of a CVC include reliable access for total parenteral nutrition, hematopoietic stem cell transplantation, plasmapheresis/apheresis, and efficient fluid, blood, or co-drug administration2. In veterinary medicine, CVCs also minimize animal discomfort via the rapid dilution of irritant drugs and blood sampling without repeated venipuncture3. Despite their broad applications, the use of CVCs in large animal research still presents several considerable challenges4.
Percutaneous CVC placement via a guidewire or introducer catheter can be difficult for non-veterinary researchers, particularly in animals with deep venous structures5. An improper CVC installation technique may result in inadvertent placement into nearby structures, necessitating ultrasound-guided placement or a postprocedure radiography of the positioning6. However, compared to human operating rooms, ultrasounds are not readily available in many large animal research laboratories. Further, long-term use of indwelling catheters can result in line kinking, puncture, infection, or extrication by animals, with the possible disruption of timely treatment, clinical monitoring, and research outcomes4,7. Replacement of the CVC requires additional resources, including material procurement, surgical scheduling, fasting time, and radiographic access. CVC-related complications can therefore create significant technical and financial barriers or a disruption to productive translational research, particularly in swine. Contamination by food or feces, scratching against cage walls, and kicking sites of irritation may compromise a CVC, and the risk of CVC-related complications is amplified by long-term use. Thus, safe and uncomplicated maintenance of a CVC in swine requires careful consideration of CVC choice, placement, securement, protection, sanitation, and surveillance.
The Hickman catheter (HC) used in this protocol is a tunneled CVC with a polyester cuff and one to three lumens, that is commonly used for long-term intravenous access in humans and animals1,4,8,9. The tunneled catheter approach has been associated with lower complication rates and maintenance costs relative to non-tunneled variations10,11,12. The cuff reduces HC extrication by incorporating into the subcutaneous tissues surrounding the skin exit site. The multi-lumen design also enables the separation of medication administration and blood draws, thereby minimizing blood sample contamination and inaccuracy. Despite this, HC use is not without challenges, the most common of which include fracture, migration, occlusion, and infection13,14,15,16. Proper installation and maintenance of a HC are therefore indispensable skills when used in translational research. However, the current literature offers little guidance for best-practices for HC use in swine during long-term trials5,6,17.
The purpose of this study is to outline an optimized approach for HC insertion into the internal jugular vein (IJV), skin securement, and durable protection that minimizes long-term catheter-related complications and discomfort in swine. A discussion of the important considerations for HC use, potential challenges that may be encountered, and modifications that may improve the quality of this approach is included.

Pleins feux sur l’auteur : Utilisation du cathéter Hickman pour l’accès vasculaire à long terme dans un modèle porcin préclinique  

Utilisation d’un cathéter de Hickman pour l’accès vasculaire à long terme dans un modèle porcin préclinique

This protocol describes a reliable and reproducible technique for the insertion and maintenance of a tunnel Hickman catheter for long-term vascular access in a large animal model. The approach allows for convenient daily sampling of whole blood from awake animals and intravenous administration of medication and fluids. Some of the main challenges to the long-term central venous lines in large animals are infection and damages.As large animals are occasionally able to gain access to the lines and cause mechanical trauma. To mitigate these challenges, our group has invented our special pouches that protects the line while still allowing easy access to the same catheter. Central venous catheters are invaluable devices in large animal research as they facilitate a wide range of medical applications, but there is no consensus on the best practices for their insertion and maintenance.In response, we have proposed a protocol that comprehensively describes an approach for proper placement of a tunneled Hickman catheter in pigs that minimizes catheter-related complications and morbidity. The use of our approach in over 100 pigs has resulted in long-term patency and minimal complication rates. This protocol offers a method to optimize the lifespan of the Hickman catheter, and guidance for approaching issues during its use.

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Insertion and Securing the Catheter  

Insertion et fixation du cathéter

Coupez l’extrémité du cathéter à peu près à la longueur à laquelle il atteindrait le tiers de la longueur du sternum du porc. À l’aide d’une pince Adson-Brown, saisissez le milieu du segment VJI isolé et faites une incision à mi-chemin du vaisseau avec des ciseaux Metzenbaum courbés. Tout en tenant le segment VJI, insérez le cure-veine dans le segment caudal du vaisseau.Tout en maintenant la tension sur l’attache de suture crânienne. Insérez et enfilez l’extrémité du cathéter dans le vaisseau caudalement. Une fois le cathéter complètement inséré, nouez l’attache de suture caudale une fois pour fixer temporairement le cathéter de Hickman.Une fois la perméabilité confirmée, nouez deux fois l’attache de suture caudale pour fixer le segment VJI distal autour du cathéter intraveineux. Ensuite, nouez la suture crânienne une fois pour occlure le flux sanguin dans le segment VJI. Une fois que c’est fait pour fermer le site chirurgical ventral, la première suture est plate : suture simple des sutures interrompues avec une suture résorbable tressée 3-0.Fermez ensuite les sutures sous-cuticulaires avec une suture résorbable monofilament 3-0. Pour fixer le cathéter de Hickman à la peau de l’animal, orientez-le de manière à ce qu’il forme un U. Identifiez ensuite trois points.Le premier point se trouve à moins de deux centimètres du site de sortie. Le deuxième point se trouve au-dessus de la partie fourchue du cathéter où les lignes rouges et blanches divergent. Et le troisième point se trouve en haut du U entre les deux premiers points.À chaque point, placez un morceau de ruban médical de trois centimètres d’un pouce sur le cathéter pour créer une aile de chaque côté. À l’aide d’un monofilament synthétique O, suture en polypropylène non résorbable, fixez chaque aile à la peau par une seule suture simple interrompue. Au deuxième point au-dessus de la partie fourchue, ajoutez une seule suture interrompue à travers l’espace entre les deux lignes et assurez-vous que le nœud repose sur le ruban pour éviter toute irritation.Testez la perméabilité des lignes blanches et rouges à l’extérieur du champ stérile par des prises de sang et des rinçages en utilisant 10 millilitres de solution saline normale à 0,9 % et 10 millilitres de solution saline héparinisée. Une fois que la poche du cathéter avec le nombre souhaité de rabats est créée, alignez le trou et le rabat avec le point où les lignes sortent du collier, en l’orientant de manière à ce que son ouverture soit caudale. Assurez-vous que la poche est sur la ligne médiane ou légèrement latérale à la dorsale du cou.Ensuite, tirez les lignes rouges et blanches à travers le trou et le rabat un, en veillant à ce que les lignes soient à plat entre les rabats un et deux, le rabat trois étant orienté vers le haut. À l’aide d’un monofilament synthétique 0 suture en polypropylène non résorbable, fixez la poche au col avec une simple suture interrompue à chaque coin et à mi-chemin de chaque extrémité. Ne pas suturer à travers la peau.Dans une cohorte représentative de 32 porcs dont le critère d’évaluation variait de huit à 132 jours, 78,13 des cathéters de Hickman sont demeurés apparents jusqu’au critère d’évaluation expérimental. De petites réparations ont été nécessaires dans 9,38 % des cas, tandis que les taux de retrait ou de remplacement avant et après 30 jours étaient respectivement de 9,38 % et 12,5 %. Les raisons des compromissions de la ligne comprenaient le déplacement, la perforation et le blocage interne.Cependant, la réparation et le remplacement en temps opportun ont démontré un taux de réussite fonctionnel de 100 % sans interférence significative avec la collecte de données.

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Medicine

Insertion and Securing the Catheter

371 Views.  Johns Hopkins University School of Medicine. Cut the end of the catheter to approximately the length at which it would reach down to one third of the length of the swine's sternum. Using Adson-Brown forceps, grasp the middle of the isolated IJV segment and make a cut halfway through the vessel with curved Metzenbaum scissors. While holding the IJV segment, insert the vein pick into the caudal segment of the vessel.While maintaining tension on the cranial suture tie. Insert and thread the end of the catheter into the vessel caudal...