Name: Preparation of a Suction Cup and Plugs for Calcium Imaging in Mouse
Uploaded: 2023-04-21T15:00:00
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preparation of a suction cup and plugs for calcium imaging in mouse

Zwei-Photonen- und Weitfeld-Kalziumbildgebung im Colliculus superior

The superior colliculus (SC) is an important visual center in all vertebrates. In mammals, it receives direct inputs from the retina and the visual cortex1. While optical recording has been widely applied to the cortex2,3,4,5, its application in the SC is hindered by poor optical accesss6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19. The goal of this protocol is to provide details about two complementary methods for optical recording of the neural activity in the SC.
The SC is located beneath the cortex and transverse sinus, which limits optical access to the collicular neurons. One approach to overcome this limitation is to aspirate the overlaying cortex and expose the anterior-lateral SC7,9,10,13,14,19. However, because the SC receives cortical inputs, such an operation might affect how the SC neurons respond to visual stimuli. To overcome this limitation, we detail here an alternative protocol to image the superficial layer of the posterior-medial SC with a silicon plug, while leaving the cortex intact8,11. Specifically, to achieve single-cell resolution, we applied two-photon microscopy to image calcium responses in the posterior-medial SC of wild-type mice. In addition, to achieve broad coverage, we applied wide-field microscopy to image the entire SC of a mutant mouse whose posterior cortex has not developed20.
The two methods described in this protocol are complementary to each other. The two-photon calcium imaging without ablating the cortex is appropriate for recording neural activity at&#160;single-cell resolution with intact cortical inputs. The wide-field calcium imaging is appropriate for recording neural activity in the entire SC while sacrificing spatial resolution.

Autor im Rampenlicht: Enthüllung der neuronalen Kodierung und der Mechanismen der visuellen Verarbeitung im Colliculus superior 

Kalzium-Bildgebung beim Colliculus superior der Maus

My research focuses on neural coding and mechanisms for visual processing. We are trying to answer how various information is encoded in the brain, especially in the superior colliculus under the underlying neuro-mechanisms. To understand visual processing, scientists combine various approaches, including neuronal morphology, antegrade and retrograde tracing, IL sequencing, neuro modeling, machine learning, is understood well.The challenge is to remove the skull over the SSA, cutting and left in the bone in one larger piece, is likely to fail because the bone is attached to the dura. By combining two photo on a wide field calcium image, our recent work revealed the function architecture of motion direction in the mouse SC at both single cell resolution and a global scale. We found that neurons with similar preference form patches up to 500 micrometer under global to the upward on the nasal motion.With our protocol, we are addressing two research gaps. First, researchers can perform long-term cast imaging in mouse SC at a single cell resolution without breaking the cortex. Secondly, researchers can record the neuroactivity across the entire SC using widefield microscoping.Our protocol provides a measure to image the posterior medial SC at single cell resolution with a intact cortex in mice. Also, we use a biocompatible plug to expose the SC, which reduces infection for chronic imaging. Our results provide a way to study the neural coding of visual information across a large visual field.Combined with optogenetics, one can study half inputs from different brain regions modulating the neuroactivity in SC.

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Preparation of a Suction Cup and Plugs for Calcium Imaging in Mouse  

Vorbereitung eines Saugnapfes und von Stopfen für die Kalziumbildgebung bei Mäusen

Beginnen Sie mit der Herstellung eines Saugnapfes, indem Sie einen Tropfen PBS in eine Acrylschale geben. Verwenden Sie eine 21-Gauge-Flachnadel, um die Spitze der Nadel durch Kapillarität mit PBS zu füllen. Decken Sie die Spitze der Nadel mit einem durchscheinenden Silikonkleber ab und lassen Sie sie etwa 10 Minuten lang einwirken.Schneiden Sie den Silikonkleber mit einer Schere zu einer Scheibe mit zwei Millimetern Durchmesser zu. Um die Stopfen vorzubereiten, nimmst du einen 0,75 Millimeter dicken Kunststoff-Shimstock und schneidest in der Mitte ein mal einen Zentimeter großes Quadrat aus. Reinigen Sie das Unterlegmaterial und die beiden Acrylblöcke mit Alkohol und wischen Sie sie mit Linsenpapier ab.Lege die Unterlegscheibe auf einen Acrylblock und lege Silikonkleber in die Mitte, um 90 % der Öffnung zu füllen. Füge einen weiteren Acrylblock hinzu. Wenden Sie etwa ein Kilogramm Kraft an und warten Sie 20 Minuten.Schneiden Sie den Silikonkleber unter dem Operationsmikroskop mit einem Skalpell in ein mal 1,5 Millimeter großes Dreiecksprisma. Entfernen Sie den Staub von den dreieckigen Prismen mit klebrigem Plastikklebeband und legen Sie sie auf ein gläsernes Deckglas. Legen Sie das Deckglas mit den dreieckigen Prismen unter einen Korona-Behandler und schalten Sie ihn ein.Bringen Sie den Koronabehandler näher an das Deckglas, bis ein Blitz erscheint, und halten Sie ihn einige Minuten lang in dieser Position, bis die Prismen und das Deckglas angebracht sind. Nachdem Sie die Plugs in eine Petrischale gelegt haben, inkubieren Sie sie über Nacht bei 70 Grad Celsius.

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Neuroscience

Preparation of a Suction Cup and Plugs for Calcium Imaging in Mouse

Calcium Imaging in Mouse Superior Colliculus

The superior colliculus (SC), an evolutionarily conserved midbrain structure in all vertebrates, is the most sophisticated visual center before the ...