Name: Mouse Retina Isolation and Flattening
Uploaded: 2023-04-07T12:20:00
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mouse retina isolation and flattening

Isolierung der Netzhaut von Mäusen und Methanolbehandlung zur Untersuchung von retinalen Ganglienzellen

Retinal ganglion cells (RGCs) are the only projection neurons in the retina, and they integrate and transmit outside visual information to the brain1. Many neurodegenerative diseases such as glaucoma and traumatic optic neuropathy are characterized by irreversible damage and loss of RGCs2,3. Analyzing the morphological and quantitative changes of RGCs is a crucial step in determining how neurodegenerative diseases develop and advance4,5.
Indirect immunofluorescence assay is a widely accepted method to monitor the distribution of proteins and cell counting. In the laboratory, whole-mount retinal immunostaining is commonly used in experimental studies on RGCs to evaluate the physiological and pathological conditions of the retina6. The most common markers used for RGC quantification in the whole retina include Brn3a, RNA binding protein with multiple splicing (RBPMS), and so on7,8. Characterizing the amount and distribution of RGCs requires high-quality whole-mount retinal immunostaining. Generally, in immunostaining protocols, the retina is immersed in chemical fixatives before being incubated in antibodies. Ideal fixatives should not change the shape of cells, the accessibility or affinity of the epitopes for antibodies, or the linear dimensions of the tissue9,10. 
Due to the complex structure of the retina, problems such as retinal fragility and folding, as well as some common difficulties including cell shrinkage and unclear nuclei, are prone to occur when making a whole-mount retinal patch, which has a negative impact on experimental research. In addition, not all retinas are immunostained immediately, especially when it comes to the retinas of transgenic mice with expensive prices that are of precious origin, necessitating the preservation of the extra retinal samples for further use.
The appropriate fixative solution can fix the tissue quickly, avoid tissue autolysis, preserve the normal morphology and structure of the tissue cells, and keep the antigenicity of proteins and other substances10. At present, formaldehyde-based fixation has been widely used in various tissues, including separated retinas, hemisected eyecups, and whole eyeballs10. Tissue shrinkage and the morphological alteration of cells are the two critical challenges encountered following immersion in formaldehyde11. In addition, modified fixation formulations are increasingly emerging to maximize the retention of the original properties of the retina and the target cells9,10. Different retinal fixation treatments may affect the retinal structure, protein immunogenicity, fluorescence excitation , and attenuation quenching cycle differently12,13. Retinas fixed with Davidson's solution are more morphologically intact compared to those fixed with formalin, but Davidson's solution is less compatible with some antibodies, such as microglial marker-ionized calcium binding adaptor molecule 112. Considering the fragile nature of retinas, researchers would naturally wonder whether the retinal integrity, as well as the properties and morphology of the target cells, will change after long-term storage. However, the possible effects of fixation solution on retinal and RGC cell morphology after storage for several months have rarely been reported. The optimization of retinal fixation is critical for the evaluation and preservation of RGCs. 
We provide a detailed description of a reliable and technically straightforward method that we use for whole-mount murine retinal staining. Our method emphasizes the proper preparation and storage of retinas for RGC investigation, taking into account the need for the long-term storage of retinal tissue as well as specific aspects of fluorophore formation or degradation.

Autor im Rampenlicht: Methanol-basiertes Whole-Mount-Präparat für die Untersuchung von retinalen Ganglienzellen  

Methanol-basiertes Whole-Mount-Präparat zur Untersuchung retinaler Ganglienzellen

The research aims to provide a modified retina isolation workflow and tissue sample storage protocol, which is useful and practical for investigating RGCs. Retinas are fragile and folding, which limits experimental research when making a whole-mount retinal patch. In addition, all retinas do not require immediate immunostain.Sometimes, extra retina samples need preservation for further use. We provide a detailed description of a reliable and technically straightforward method of whole-mount retina stain that emphasizes the proper preparation and the need for the long-term storage of retinas for RGC investigation. We will continue to work on the basic research of degenerative optic neuropathies.Further, the molecular mechanism of optic nerve injury and accident regeneration and potential clinical targets for diagnosing and treating neurodegenerative disease will be explored.

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Mouse Retina Isolation and Flattening  

Isolation und Abflachung der Netzhaut von Mäusen

Nachdem Sie den enukleierten Augapfel der euthanasierten Maus fixiert haben, übertragen Sie ihn auf einen Glasobjektträger und legen Sie ihn unter ein Präpariermikroskop. Klemmen Sie mit einer Pinzette den Rand der Hornhaut ab, um eine Bewegung des Augapfels zu verhindern. Schneiden Sie mit der Präparierschere in einer Tiefe von etwa einem Millimeter um die Hornhaut herum durch den Limbus der Hornhautsklera und entfernen Sie dann die Linse und den Glaskörper.Halten Sie die Papille in der Mitte und schneiden Sie die Netzhaut radial entlang der vier Quadranten, wobei Sie etwa 2/3 des Radius der Netzhaut erreichen. Klemmen Sie eine der Sklerakanten mit einer gezahnten Pinzette. Halten Sie die Sklerakante mit einer ungezahnten Pinzette fest und bewegen Sie sich von der gezahnten Pinzette in Richtung Sklerabasis.Schälen Sie die Netzhaut vorsichtig. Befeuchten Sie die Netzhaut mit einer Pipette mit 200 Mikrolitern PBS. Entfernen Sie überschüssiges PBS mit saugfähigem Papier und glätten Sie die Netzhaut bei Bedarf mit einer kleinen Borstenbürste.Geben Sie kaltes Methanol langsam tröpfchenweise auf die Innenseite der Netzhaut, bis sie vollständig bedeckt ist. Sobald sich die Netzhaut weiß verfärbt und eine erhöhte Zähigkeit entwickelt, glätten Sie die Netzhaut sanft und entfernen Sie Verunreinigungen wie Restpigmentmembranen und den Glaskörper mit einer kleinen Borstenbürste. Nachdem Sie die Netzhaut invertiert haben, behandeln Sie sie wie zuvor gezeigt mit Methanol und übertragen Sie sie in eine Vertiefung mit 24 Wells, weichen Sie sie in Methanol ein und lagern Sie sie bei 20 Grad Celsius für ein bis zwei Stunden zur sofortigen Immunfärbung.Spülen Sie dann die Netzhaut mit PBS, nachdem Sie Methanol von der Platte entfernt haben. Die Retinol-Ganglienzellen der Netzhaut vor und nach der Methanolbehandlung wurden mittels konfokaler Mikroskopie sichtbar gemacht, was darauf hindeutete, dass die 12-monatige Methanolkonservierung keinen Einfluss auf die RGC-Immunfärbung hatte.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Mouse Retina Isolation and Flattening

Methanol-Based Whole-Mount Preparation for the Investigation of Retinal Ganglion Cells

Retinal ganglion cells (RGCs), which are the projection neurons of the retina, propagate external visual information to the brain. Pathological changes in ...