Name: Sagittal Suture Expansion Surgery to Prepare Mouse Suture Expansion Model
Uploaded: 2023-08-18T12:00:00
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sagittal suture expansion surgery to prepare mouse suture expansion model

3D-Visualisierung des Knochenumbaus unter Zugbelastung bei Nahtexpansionsmäusen

Craniofacial sutures are fibrous tissues that connect craniofacial bones and play essential roles in the growth and remodeling of craniofacial bones. The structure of the suture resembles a river, providing a flow of cell resources to nourish and build the &#34;river bank&#34;, known as the osteogenic fronts, which contribute to the formation of craniofacial bones via intramembranous osteogenesis1.
Interest in craniofacial sutures has been driven by clinical needs to understand premature closure of cranial sutures and facial suture dysfunction, which may lead to craniofacial deformities and even life-threatening conditions in children. Open suturectomy is routinely used in clinical treatment, but long-term follow-up has shown incomplete re-ossification recurrence in some patients2. Minimally invasive craniotomy assisted by expansion springs or endoscopic stripe craniectomy may provide a safer approach to preserving the potential suture rather than discarding the tissues3. Similarly, orthopedic therapies such as facemasks and expansion appliances have been widely used to treat sagittal or horizontal maxillary hypoplasia, with some studies extending the age limitation to treat adult patients via miniscrew-assisted palatal expanders4,5,6. Additionally, cranial suture regeneration with mesenchymal stem cells (MSCs) combined with biodegradable materials is a potential therapy in the future, offering a novel direction for the treatment of related diseases7. However, the function process or regulatory mechanism of sutures remains elusive.
Bone remodeling mainly consists of a balance between bone formation conducted by osteoblasts and bone resorption conducted by osteoclasts, where osteogenic differentiation of stem cells stimulated by mechanical signals plays an important role. After decades of research, it has been found that craniofacial sutures are highly plastic mesenchymal stem cell niches8. Suture stem cells (SuSCs) are a heterogeneous group of stem cells, belonging to mesenchymal stem cells (MSCs) or bone stem cells (SSCs). SuSCs are labeled in vivo by four markers, including Gli1, Axin2, Prrx1, and Ctsk. Gli1+ SuSCs, in particular, have strictly verified the biological characteristics of stem cells, not only exhibiting high expression of typical MSC markers but also demonstrating excellent osteogenic and chondrogenic potential9. Previous research has shown that Gli1+ SuSCs actively contribute to new bone formation under tensile force, identifying them as the suture stem cell source supporting distraction osteogenesis10.
In the past, extensive mechanical characteristics of stem cells were studied in vitro via Flexcell, four-point bending, micro-magnet loading system, and others. Although mouse cranial suture-derived mesenchymal cells have been identified in vitro11, and human suture mesenchymal stem cells have also been isolated recently12, the biomechanical response of suture cells remains unclear in the in vitro system. To further investigate the bone remodeling process, a suture expansion model based on isolated calvaria organ culture has been established, paving the way for establishing a useful in vivo suture expansion model1,13. Rabbits14 and rats15 have been the most widely used animals in basic research for suture expansion. However, mice are preferred animal models for exploring human disease due to their highly homologous genome with humans, numerous gene modification lines, and strong reproductive hybridization ability. Existing mouse models of cranial suture expansion typically rely on stainless steel orthodontic spring wires to apply tensile force to the sagittal suture16,17. In these models, two holes are made in each side of the parietal bones to fix the expansion device, and the wires are embedded under the skin, which may affect the cell activation mode.
Regarding the visualization method, the two-dimensional observation of slices in the sagittal direction has been generally adopted for decades. However, considering that bone remodeling is a complex three-dimensional dynamic process, obtaining complete three-dimensional information has become an urgent need. The PEGASOS tissue transparency technique emerged to meet this requirement18,19. It offers unique advantages for the transparency of hard and soft tissues, enabling the complete bone remodeling process to be reproduced in three-dimensional space.
To gain a deeper and more comprehensive understanding of the physiological changes in the bone remodeling periods, a standard sagittal suture expansion mouse model with a spring setting between the handmade holders was established10. With a standardized acid etching and bonding procedure, the expansion device could be firmly bonded to the cranial bone, generating a tensile force perpendicular to the sagittal suture. Furthermore, the PEGASOS tissue clearing method was applied after double labeling of the mineralized bone post-expansion to fully visualize the bone modeling changes after suture expansion.

Autor im Rampenlicht: PEGASOS Tissue Clearing-Technik zur Visualisierung des Knochenumbaus 

Eine 3D-Visualisierungstechnik für den Knochenumbau in einem Nahtexpansions-Mausmodell

The interest in craniofacial sutures has been driven by the clinical needs to understand the mechanisms of orthodontic and the orthopedic treatment. The scope of our study is to establish a standardized suture expansion mouse model, and the 3D visualization method to study the mechanobiological changes of suture and bone remodeling upon expansion. PEGASOS tissue clearing technique has been combined with various labeling methods to obtain versatile information of suture and bond remodeling in space perspective.This model is suitable for various strengths of transgenic mice of different age. It is convenient to adjust the magnitude of tensile stress and withdraw force at any time. With the PEGASOS technique, we can observe the three dimensional spatial temporal distribution of cranial suture stem cells during bone remodeling.With the PEGASOS technique, we will further explore the relationship between suture stem cells and mechanical stress, as well as its specific mechanisms.

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Sagittal Suture Expansion Surgery to Prepare Mouse Suture Expansion Model  

Sagittale Nahtexpansionschirurgie zur Herstellung eines Nahtexpansionsmodells für Mäuse

Beginnen Sie mit der Vorbereitung von zwei Aufbewahrungshaltern. Verwende eine leichte Drahtzange und einen 0,014 Zoll australischen Draht, um eine spiralförmige Schlaufe zu machen. Bereiten Sie dann kundenspezifische Edelstahlfedern vor und schneiden Sie die Feder auf eine entsprechende Länge.Bereiten Sie auch einen geraden australischen Draht oder geraden Stahldraht mit einer Länge von sieben Millimetern vor und schneiden Sie zwei Blätter Papier mit einem Durchmesser von zwei Millimetern zu, um sie als Barrieren zu verwenden. Als nächstes legen Sie eine betäubte Maus auf den Operationstisch und entfernen vorsichtig das Fell auf dem Kopf mit Haarentfernungscreme oder einem Rasierer. Desinfizieren Sie dann die Kopfhaut der Maus abwechselnd mit Jodform und 75%igem Alkohol.Positionieren Sie die Maus mit dem Kopf auf der Oberseite und verwenden Sie chirurgische Klebebänder, um die Gliedmaßen auf dem Operationstisch zu fixieren. Verwenden Sie nun eine chirurgische Schere, um einen bogenförmigen Lappen entlang der Kopfhaut in der Nähe des Halses der Maus durchzuführen, der die sagittale Naht und den umgebenden Schädel vollständig freilegt. Fixieren Sie dann den Kopfhautlappen mit einer 6:0-Naht auf dem Operationstisch.Trocknen Sie den Schädel und ätzen Sie ihn 20 Sekunden lang mit 37%iger Phosphorsäure. Verwenden Sie dann normale Kochsalzlösung, um die Säureätzung zu entfernen. Platzieren Sie die beiden Halter auf beiden Seiten der Scheitelknochen, drei Millimeter von den sagittalen Nähten entfernt, und kleben Sie sie mit einem leicht ausgehärteten Klebstoff zusammen.Setzen Sie dann den Kopfhautlappen wieder ein. Beschriften Sie die Position der Halter und schneiden Sie an den entsprechenden Stellen zwei kleine Löcher in die Kopfhaut. Setzen Sie die Lappenkopfhaut zurück, indem Sie gleichzeitig die kleinen Schlaufen durch die Löcher führen, um die Hautoberfläche freizulegen.Um die Feder und den Führungsdraht zu montieren, schneiden Sie die Feder einen Millimeter länger als den Abstand zwischen den beiden Haltern. Drücken Sie die Druckfeder zusammen und platzieren Sie sie zwischen den kleinen Windungen auf beiden Seiten. Führen Sie den Edelstahldraht durch die kleinen Spulen und die Feder und lassen Sie die Feder los, um einen Startschub von etwa 30 G zu erhalten.Als nächstes legst du zwei Papierschnipsel zwischen die Feder und die Halterungen und klebst sie mit einem lichthärtenden Klebstoff, um Barrieren an beiden Enden der Feder zu errichten. Nach der Expansion wurden die Veränderungen der Schädelnaht mittels Mikro-CT visualisiert. Im Vergleich zu den Kontrollen dehnte sich die Schädelnaht nach eintägiger Krafteinwirkung allmählich und signifikant aus und nach dem fünften Tag traten flauschige knöcherne Vorsprünge am Knochenrand auf.Auch die Visualisierung der Mineralisierung mit der Doppelmarkierungsmethode zeigte, dass die Kraftbelastung die Osteogenese signifikant aktivierte. Neu mineralisierter Knochen wurde nach sieben Tagen beobachtet, was auf den Knochenumbauprozess nach Nahtexpansion hindeutet.

Research

JoVE Journal

Biology

Sagittal Suture Expansion Surgery to Prepare Mouse Suture Expansion Model

A 3-D Visualization Technique for Bone Remodeling in a Suture Expansion Mouse Model

Craniofacial sutures play a crucial role beyond being fibrous joints connecting craniofacial bones; they also serve as the primary niche for calvarial and ...