Name: quantifying infra-slow dynamics of spectral power and heart rate in sleeping mice
Uploaded: 2017-08-02T14:00:00
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Nous remercions tous les membres du laboratoire pour leur contribution à l&#39;écriture et à la lecture attentive de ce manuscrit. Nous remercions Paul Franken de stimuler les discussions, le Dr Gisèle Ferrand pour des commentaires utiles sur le protocole chirurgical, et le Dr Jean-Yves Chatton pour avoir fourni les fichiers exécutables Labview originaux pour l&#39;exposition au bruit. Le financement a été fourni par la Fondation nationale suisse de la science (Subventions 31003A_146244 et 31003A_166318) et l&#39;Etat de Vaud.

Toutes les procédures expérimentales ont été effectuées conformément au Comité de soins animaux de l&#39;Université de Lausanne et au Service de la Consommation et des Affaires Vétérinaires du Canton de Vaud. 1. Chirurgie pour les enregistrements EEG / EMG-ECG <ol><li> Logement et sélection d&#39;animaux. <ol><li> Conserver les animaux (C57Bl / 6J, 7-9 semaines, 25 à 30 g) dans un cycle de 12: 12 h foncé / léger, logé séparément et dans des conditions stan...

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	<li>Lecci, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coordinated+infra-slow+neural+and+cardiac+oscillations+mark+fragility+and+offline+periods+in+mammalian+sleep.">Coordinated infra-slow neural and cardiac oscillations mark fragility and offline periods in mammalian sleep.</a> Sci Adv. 3 (2), 1602026 (2017).</li><li>Rechtschaffen, A., Kales, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+manual+of+standardized+terminology,+techniques+and+scoring+system+for+sleep+of+human+subjects.">A manual of standardized terminology, techniques and scoring system for sleep of human subjects.</a> U.S. Department of Health, Education, and Welfare. , (1968).</li><li>Blake, H., Gerard, R. 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Ici, nous montrons comment établir un profil temporel continu du sommeil non-REM qui intègre les variables EEG, EMG et ECG. Il s&#39;agit d&#39;une première étape vers le développement d&#39;une description intégrative du sommeil de la souris, ce qui peut aider à identifier le calendrier précédemment non reconnu sur lequel la résilience élevée et faible au bruit est organisée pendant le sommeil non-REM 1 . Une structure temporelle similaire a également été décrite dans le sommeil...

Le sommeil des mammifères est un état de repos comportemental et de résilience aux stimuli environnementaux. Malgré cette uniformité apparente, les paramètres polysomnographiques et autonomes indiquent que le sommeil se déplace entre des états neuronaux et somatiques qualitatifs et quantitativement différents sur diverses échelles temporelles et spatiales 1 . Pendant quelques minutes à plusieurs dizaines de minutes, le basculement entre le sommeil non REM et REM se produit. Le sommeil non-REM s&#39;accompagne d&#39;une activité de grande amplitude et de basse fréquence dans l&#39;EEG, avec un pic spectral autour de ~ 0,5 à 4 Hz, alors que le sommeil REM montre une activité EEG régulière dans la bande theta (6-10 Hz), ainsi que Muscle atonia 2 . Dans le sommeil non-REM, les humains traversent la lumière (S2) et le sommeil lent profond (SWS). Comme leur nomination les indique, ces deux étapes présentent des seuils d&#39;excitation inférieurs et supérieurs 3 , 4 , respectivement, et ils diffèrent principalement dans la densité de basse fréquencePuissance EEG corticale, appelée activité de l&#39;onde lente (SWA, 0,75 - 4 Hz). La non-uniformité persiste dans les épisodes individuels de S2 et SWS à la minute à la sous-deuxième échelle, tellement documenté par la présence variable de la SWA au cours des 5 , 6 , mais aussi par l&#39;EEG et les rythmes de potentiel de terrain au Fréquences plus élevées, y compris les ondes de broche dans la bande sigma (10-15 Hz) et les rythmes gamma (80 - 120 Hz) (pour une évaluation, voir 7 , 8 , 9 , 10 ). Plutôt que d&#39;être subtil, ces variations changent l&#39;état cortical endormi chez les humains aux extrêmes du spectre. Pour le sommeil non-REM, ceux-ci vont d&#39;une prédominance de SWA à des états qui se rapprochent d&#39;une activité de réveil car ils contiennent une proportion importante de composants à haute fréquence 11 <suP&gt;, 12 . Chez les rongeurs et les chats, bien que le sommeil non-REM ne soit pas subdivisé en étapes, une courte période appelée somme de sommeil intermédiaire émerge avant le début du sommeil 13 . Pendant IS, les fonctions de sommeil REM, telles que l&#39;activité de l&#39;thetape de l&#39;hippocampe et les ondes de point-geniculo-occipital, tandis que les signatures de sommeil non-REM, telles que les ondes de broche et SWA, sont encore présentes, ce qui indique un mélange entre les deux états de sommeil 14 , 15 . Néanmoins, IS pourrait être fonctionnellement distinct car il est modulé par des antidépresseurs 16 et par une présentation d&#39;objet nouvelle lors du réveil précédent 17 , et il contribue à régler le seuil d&#39;excitation 18 . En outre, les parcelles spatiales d&#39;états des paramètres EEG et EMG des rats en mouvement libre montrent un groupe de points 14 qui est continu entre le sommeil non-REM, le sommeil REM et l&#39;éveil. Il y a également des déclins sporadiques dans la SWA, sans entrer dans la veille ou le sommeil paradoxal, ce qui entraîne des fluctuations importantes de la présence relative des composants à faible et haute fréquence au cours d&#39;un combat consolidé non-REM 14 , 19 , 20 . Enfin, les rapports variables de SWA et les rythmes de fréquence plus élevés pendant le sommeil non-REM ne se produisent pas seulement dans le temps, mais montrent également des différences régionales d&#39;amplitude et de synchronisation entre les zones corticales 19 . Le sommeil non-REM de mammifère est loin d&#39;être uniforme. Cependant, si cette non-uniformité conduit à des états qui diffèrent en fonction et les attributs comportementaux n&#39;est pas clair. Dans plusieurs types de troubles du sommeil, le sommeil continu est perturbé par des éveils spontanés et un comportement moteur inapproprié. En outre, les analyses spectrales montrent des altérations de la présence relative de fréquences plus élevées dans l&#39;EEG 21Et dans les paramètres autonomes, tels que les taux de respiration et le battement cardiaque 22 . La séquence ordonnée des états de sommeil stables est donc perturbée, et les éléments de l&#39;excitation corticale et / ou autonome s&#39;observent de manière incontrôlée. Par conséquent, la compréhension du continuum des états du sommeil est une pertinence possible pour la maladie. En outre, la perturbation du sommeil par le bruit environnemental en milieu urbain est associée à des risques généraux pour la santé, ce qui rend crucial pour identifier les moments de vulnérabilité accrue pendant le sommeil 23 . Les expériences d&#39;évasion comportementale chez les personnes endormées indiquent qu&#39;il est plus difficile de se réveiller du sommeil non-REM qui a dominé par la SWA (stade S3), tandis que le sommeil non-REM (stade S2) et le sommeil REM montrent des seuils d&#39;excitation comparables et inférieurs 4 . Le traitement cortical des stimuli sonores courts varie considérablement entre le sommeil REM, S2 et S3 24 ,25 , indiquant que les modèles d&#39;activité corticale spécifiques à l&#39;état modulent les premiers stades du traitement sensoriel. Pour le sommeil non-REM chez les humains, la propension à se réveiller en réponse au bruit varie avec la présence d&#39;ondes de broche et de rythmes alpha dans l&#39;EEG 26 , 27 , 28 . La rythmicité thalamocortique pendant les broches s&#39;accompagne d&#39;une inhibition synaptique améliorée aux niveaux thalamique et cortical, ce qui est censé contribuer à l&#39;atténuation du traitement sensoriel 7 . Comment les périodes de sommeil résistant au bruit et les périodes de sommeil sont-elles réparties dans le temps et quels sont leurs déterminants? Chez les souris et les humains, nous avons récemment identifié une oscillation infrarouge de 0,02 Hz dans les rythmes neuronaux. Selon la phase de cette oscillation de 0,02 Hz, les souris ont montré une réactivité variable à des stimuli externes, soit en train de réveiller soit de dormirGh le bruit. Il est intéressant de noter que cette oscillation a été corrélée avec le rythme cardiaque, ce qui indique que le système nerveux autonome participe à la modulation de la vulnérabilité du sommeil aux stimuli externes 1 . Les rythmes hippocampiques liés à la mémoire ont également été organisés à ce rythme et, de manière frappante, leur force est corrélée à la qualité de la consolidation de la mémoire chez l&#39;homme. L&#39;oscillation de 0,02 Hz semble donc être un principe organisateur du rongeur et du sommeil humain non-REM qui module à la fois la sensibilité à l&#39;environnement et le traitement de la mémoire interne. Cela souligne à nouveau la nécessité d&#39;évaluations multiparamétriques et continues des états du sommeil pour reconnaître leur fonctionnalité et identifier les sites potentiellement vulnérables. Ici, nous présentons une procédure pour extraire la forme d&#39;onde de ces dynamiques, y compris l&#39;implantation chirurgicale de souris pour les mesures combinées EEG / ECoG et EMG-ECG, l&#39;exposition à des stimuli sensoriels, uneNd routines d&#39;analyse. Cette procédure fournit une base pour regarder le sommeil comme un état de vigilance en constante évolution, mais très organisé au cours duquel différentes fonctions fondamentales du sommeil sont exécutées séquentiellement. Plus généralement, la procédure s&#39;applique aux approches visant à extraire les caractéristiques spectrales et autonomes qui précèdent un résultat comportemental pendant le sommeil dans les états de santé et de maladie.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1226">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">2-components epoxy glue</td>
			<td style="width:128px;">Henkel</td>
			<td style="width:177px;">Loctite EA 3450</td>
			<td style="width:605px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Absorbable Suturing Fiber (Prolene)</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>5-0 FS-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Adson Forceps</td>
			<td>FST</td>
			<td>11006-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Antiseptic swab</td>
			<td>VWR</td>
			<td>149-0332</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Attane Isoflurane</td>
			<td>Piramal</td>
			<td>Isoflurane 250mL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Connectors 3x2-channels</td>
			<td>ENA AG</td>
			<td>2.316</td>
			<td>Raster 2.00 x 2.00 mm; size 5x8x9 mm; pin size 5mm; http://www.ena.ch/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Dragonfly commutator</td>
			<td>Dragonfly</td>
			<td>Model #SL-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">EMBLA amplifier</td>
			<td>EMBLA</td>
			<td>A10 amplifier</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fine scissors</td>
			<td>FST</td>
			<td>14108-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Flat Head Gold-plated steel screw</td>
			<td>J.I. Morris</td>
			<td>FF00CE125</td>
			<td>https://jimorrisco.com/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Gold wire</td>
			<td>CMSA</td>
			<td>T.69 5gr</td>
			<td>http://www.cmsa.ch/en/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Hemostatic sponge</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>Gelfoam</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">iodine-based disinfectant (Betadine)</td>
			<td>Mundipharma</td>
			<td>standart solution 60mL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Komet drill steel 1/005PM104</td>
			<td>UNOR AG</td>
			<td>22310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Matlab Analysis Software</td>
			<td>MathWorks</td>
			<td>R2016b</td>
			<td>https://ch.mathworks.com/products/matlab.html</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Microdrill</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>96758</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Mouse Gas Anesthesia Head Holder</td>
			<td>Kopf Instruments</td>
			<td>Model 923-B</td>
			<td>http://kopfinstruments.com/product/model-923-b-mouse-gas-anesthesia-head-holder/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ophtalmic ointment</td>
			<td>Pharmamedica</td>
			<td>VITA-POS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Paladur (liquid)</td>
			<td>UNOR AG</td>
			<td>2260215</td>
			<td>for dental cement</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Palavit (powder)</td>
			<td>UNOR AG</td>
			<td>5410929</td>
			<td>for dental cement</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Small Animal Stereotaxic Frame</td>
			<td>Kopf Instruments</td>
			<td>Model 930</td>
			<td>http://kopfinstruments.com/product/model-930-small-animal-stereotaxic-frame-assembly/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Soldering wire</td>
			<td>Stannol</td>
			<td>593072</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Temperature controller - Mini rectal probe</td>
			<td>Phymep</td>
			<td>4090502</td>
			<td>http://www.phymep.com/produit/dc-temperature-controller/</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Temperature controller- heating pad</td>
			<td>Phymep</td>
			<td>4090205</td>
			<td>http://www.phymep.com/produit/dc-temperature-controller/</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

quantifying infra-slow dynamics of spectral power and heart rate in sleeping mice

Trois états de vigilance dominent la vie des mammifères: l&#39;éveil, le sommeil non-rapide des yeux (non-REM) et le sommeil paradoxal. Comme plus de corrélats neuronaux de comportement sont identifiés chez les animaux en mouvement libre, cette subdivision à trois fois devient trop simpliste. Au cours de l&#39;éveil, des ensembles d&#39;activités corticales globales et locales, ainsi que des paramètres périphériques tels que le diamètre pupillaire et l&#39;équilibre sympathovagal, définissent différents degrés d&#39;éveil. Il ne reste pas clair dans quelle mesure le sommeil forme également un continuum d&#39;états du cerveau - dans lequel le degré de résilience aux stimuli sensoriels et à l&#39;excitation, et peut-être à d&#39;autres fonctions du sommeil, varie progressivement et comment les états physiologiques périphériques co-varient. La recherche de l&#39;avancement des méthodes pour surveiller les paramètres multiples pendant le sommeil, ainsi que l&#39;attribution des constellations de ces attributs fonctionnels, est essentielle pour affiner notre compréhension du sommeil en tant que processus multifonctionnel pendant lequel de nombreux effets bénéfiques doivent être exÉcouté. L&#39;identification de nouveaux paramètres caractérisant les états du sommeil ouvrira des opportunités pour de nouvelles voies diagnostiques dans les troubles du sommeil. Nous présentons une procédure pour décrire les variations dynamiques des états de sommeil non-REM de la souris via les signaux combinés de surveillance et d&#39;analyse des électroencéphalogrammes (EEG) / électrocorticogramme (ECoG), électromyogramme (EMG) et électrocardiogramme (ECG) en utilisant des techniques d&#39;enregistrement polysomnographique standard. En utilisant cette approche, nous avons constaté que le sommeil non-REM de la souris est organisé en cycles d&#39;oscillations neuronales et cardiaques coordonnées qui génèrent des intervalles de 25 secondes successifs de fragilité élevée et faible aux stimuli externes. Par conséquent, les systèmes nerveux central et autonome sont coordonnés pour former des états de sommeil comportementalement distincts pendant le sommeil non-REM consolidé. Nous présentons des manipulations chirurgicales pour la surveillance polysomographique ( c&#39;est-à-dire EEG / EMG combinée avec ECG) pour suivre ces cycles dans la souris librement dormante, l&#39;analyse à quantiPar leur dynamique et les protocoles de stimulation acoustique pour évaluer leur rôle dans la probabilité de se réveiller. Notre approche a déjà été étendue au sommeil humain et promet de démêler les principes d&#39;organisation communs des états de sommeil non-REM chez les mammifères.

La figure 2 A (panneau supérieur) montre des étirements de 100 minutes de comportement spontané du sommeil-réveil, enregistrés par des électrodes polysomographiques utilisées comme décrit (voir la figure 1 ). Les augmentations et les diminutions de l&#39;amplitude EEG et EMG au début du sommeil non-REM sont clairement visibles. Le sommeil REM intermittent est marqué par une diminution de l&#39;amplitud...

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Quantifying Infra-slow Dynamics of Spectral Power and Heart Rate in Sleeping Mice

Ici, nous présentons des procédures expérimentales et analytiques pour décrire la dynamique temporelle des variables neuronales et cardiaques du sommeil non-REM chez la souris, qui modulent la réactivité du sommeil aux stimuli acoustiques.

Quantification de la dynamique infra-lente de la puissance spectrale et de la fréquence cardiaque chez les souris dormantes

Three vigilance states dominate mammalian life: wakefulness, non-rapid eye movement (non-REM) sleep, and REM sleep. As more neural correlates of behavior ...

The overall goal of this procedure, is to describe how neural and cardiac activities are coordinated during mouse non REM sleep. Through monitoring and analyzing electroencephalographic, electromyographic, and electrocardiographic signals. This method can help answer key questions in the sleep field.Such as how sleep reconciles two essential and evolutionarily preserved needs. Which are to be both continuous and fragile. The main advantage of this technique is that it uses standard polysomnography to score non REM sleep in a novel way that is based on the variable behavioral responses to external stimuli.We first had the idea for this method when we observed that sleeping mice showed variable responses to noise such as waking up and sleeping through. Generally individuals new to this method will struggle because it combines surgical skill, bare minimal experimentation, and advancing analysis. Visual demonstration of this method is critical as several essential steps are new to the field.In particular concerning the behavioral design and data analysis. The implications of this technique extend towards diagnosis of sleep disorders in humans. Because it identifies the moments of sleep that are highly fragile.To begin the procedure, prepare to EEG ecogeolectrodes using 0.5 centimeter long pieces of gold wire, each soldered on top of a gold plated steel screw. Then clean them in 70%ethanol. Next prepare two EMG-ECG electrodes with three to four centimeter long gold wires.Bend the wires at a 90 degree angle one centimeter from one end and prepare a coil at the other end. Between the two ends bend the wire to create a small curvature that corresponds to the surface profile of the bone between the cerebellum and lambda. After that prepare a six channel female to male head connector by covering the connector of both female and male pins at the base with tape.Then add to the pins at the corners some tin to facilitate the soldering process. In this step, place an anesthetized animal on the stereotaxic apparatus by positioning the mouth. This will fix the mouse head.Then fix the head by positioning the ear bars at the skull with their blunt reverse ends. Subsequently lift the skin at the center of the skull and gently cut the lifted portion of the skin along the mid line from the top of the neck to the level of the eyes. Then remove the scalp.Ensure that the window is large enough to clearly see the bregma and the lambda fissures of the skull. Fix the skin on both sides with bulldog serafines to ensure access to the bone. Next carefully remove the conjunctive tissue with a scalpel.Clean the area with iodine based disinfectant and dry the skull with an antiseptic swab. Then using a sharp scalpel blade, scratch the skull to obtain a cleaned and mattified bone surface. Using only the scalpel tip, scratch a grid like meshwork of groves with a distance of one to two millimeters between the grooves.Afterward, perform four craniotomies in the skull at specific locations with a microdrill. While drilling, blow away the bone dust using a pasteur pipette and clean any bleeding with antiseptic swabs. If bleeding occurs, ensure that it is stopped completely before resuming the process.Use a hemostatic sponge to accelerate hemostasis. Fix the screw in a hemostatic clamp. On the left hemisphere, screw two gold plated screws through the craniotomies.Hold the clamp vertically above the craniotomy and rotate the screw while not deviating from the vertical position. Gently open the hemostatic clamp to release the screw. On the right hemisphere screw the previously prepared electrodes through the craniotomies.Add a drop of glue on the middle part of the skull to ensure tight adhesion of the left EMG-ECG. Carefully lift the border of the skin from the neck muscles with forceps and insert the EMG-ECG wires with the coiled ends in the muscles. To detect the heart ECG signals during sleep, ensure that the EMG-ECG wire is inserted into the muscle to a depth of about 0.8 to one centimeter.Position the left EMG-ECG next to the posterior left anchoring screw. Repeat the procedure to insert the right EMG-ECG. Position the right EMG-ECG next to the anterior left anchoring screw.Ensure that the loop ends are placed as far as possible from each other. It is important that the EMG-ECG wires are inserted deeply enough into the muscle in order for the heart rate to be detected reliably. Using a spatula apply the two component epoxy glue to the skull between and around the screws.Let it dry in the light but protect the eyes of the animal from excessive lighting. Try to place the connector pins as closely as possible to minimize the height of the implant using a small crocodile lamp. Solder the four pins at the corner of the connector to the four wires.Minimize the time in contact with the soldering tip as this rapidly heats the screws. Next, fill the space between the glue and the connector with dental cement and cover the soldered parts. Create smooth surface and avoid sharp edges that could hurt the animal.In addition, avoid touching the skin as this leads to itching. Now remove the bulldog serafines. Disinfect the wound with iodine based disinfectant.If necessary, close the wound with suture points in front and behind the connector. Afterwards, monitor the animal every day for a week and look for weight loss, reduced or abnormal activity, and signs of infection. Five to six days after surgery, connect the recording cable to the head connector on the animal, leaving it in its home cage.Wait an additional four to five days before the start of recording so that the animal is habituated to the condition and sleeps naturally. With a commercial polysomnographic software, record EEG and EMG-ECG data over 48 hours using typical settings such as 2000 x gain, a 2000 hertz sampling rate at acquisition, down sampled to 200 hertz after acquisition. Apply a 0.7 hertz high pass filter for all the EEG traces and a 10 hertz high pass filter for all the EMG-ECG traces.In this demonstration, the mouse has been sleeping for more than 40 seconds. Here are the characteristic low frequency, high amplitude signals in the EEG and the low muscle tone in the EMG traces. It is important that the mouse sleep stably for at least 40 seconds before the noise is played to ensure a long base line for the analysis of sleep, prior to wake up or sleep through.Now an acoustic stimulus, here a white noise, will be delivered. In this case, the mouse wakes up within 10 seconds. Note that the EEG desynchronizes when the mouse wakes up.In another case, the mouse does not wake up, even though the noise has been delivered for more than 20 seconds. Note that the EEG does not desynchronize. Shown here are the raw traces of the EEG in black and the corresponding EMG-ECG signals in gray, for 40 seconds before the noise onset and during the 20 seconds of noise.This is a sleep through event. And this is an example of the wake up event. The corresponding analyzed data for sigma power dynamics in the 40 seconds window before noise onset are shown here for sleep through and wake up.The key result of this analysis is that the sigma power is at its trough before noise onset for a sleep through event and at its peak for a wake up event. In contrast to the wake up and sleep through events presented before, we discarded the events with an early transition into REM sleep. And we also discarded the events with an early wake up before noise onset.While attempting this procedure, it's important to ensure that EMG signal detects the heart rate throughout non REM sleep. Moreover remember that the analysis procedure needs to be understood and implemented in a software script to extract the infra-slow oscillation. Following this procedure, other methods, such as local electrophysiological recordings, or imaging approaches can be performed to follow activity patterns in defined brain areas.After redevelopment, this technique paves the way for researchers in the field of human sleep to explore how neural and cardiac activities are organized in the different sleep stages in healthy sleepers and in sleep disorder patients. After watching this video, you should have a good understanding of how to score and analyze non REM sleep retrospectively based on the behavioral reactivity of the sleeping mouse to an acoustic stimulus.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Spectral Confocal Imaging of Fluorescently tagged Nicotinic Receptors in Knock-in Mice with Chronic Nicotine Administration

Spectral imagerie confocale de fluorescence tels taggés récepteurs nicotiniques dans souris knock-in avec l&#39;administration chronique de nicotine

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Recherche

Neurosciences

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Acute animal preparations have been used in research prospectively investigating electrode designs and stimulation techniques for integration into neural ...

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Détermination du photorécepteur cellulaire Sensibilité spectrale dans un modèle Insecte de<em&gt; In Vivo</em&gt; intracellulaires Recordings

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Mesure du taux de consommation d’oxygène dans les tranches striatales aiguës de souris adultes

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