Name: whole-cell currents induced by puff application of gaba in brain slices
Uploaded: 2017-10-12T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Whole-cell Currents Induced by Puff Application of GABA in Brain Slices at JoVE.com

Авторы хотели бы поблагодарить следующих организаций: национальные естественные науки фонд Китая (31171018, 31171355), Наука и технологии Отдела Гуандун (2013KJCX0054), фонд естественных наук из провинции Гуандун ( 2014A030313418, 2014A030313440), Гуанчжоу науки и технологического бюро (201607010320).

Животных и всех животных, которые эксперименты были проведены в соответствии с процедурами, одобренный Комитетом по этике для исследований на животных в Южный Китай педагогическом университете, согласно руководящим принципам для животных уход, создан Национальный институт Здоровье.
<p class="jove_ti...

<ol>
	<li>Neher, E., Sakmann, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-channel+currents+recorded+from+membrane+of+denervated+frog+muscle+fibres.">Single-channel currents recorded from membrane of denervated frog muscle fibres.</a> Nature. 260 (5554), 799-802 (1976).</li><li>Sakmann, B., Edwards, F., Konnerth, A., Takahashi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patch+clamp+techniques+used+for+studying+synaptic+transmission+in+slices+of+mammalian+brain.">Patch clamp techniques used for studying synaptic transmission in slices of mammalian brain.</a> Q J Exp Physiol. 74 (7), 1107-1118 (1989).</li><li>Eyo, U. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuronal+hyperactivity+recruits+microglial+processes+via+neuronal+NMDA+receptors+and+microglial+P2Y12+receptors+after+status+epilepticus.">Neuronal hyperactivity recruits microglial processes via neuronal NMDA receptors and microglial P2Y12 receptors after status epilepticus.</a> J Neurosci. 34 (32), 10528-10540 (2014).</li><li>Dickinson, G. D., Parker, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Factors+determining+the+recruitment+of+inositol+trisphosphate+receptor+channels+during+calcium+puffs.">Factors determining the recruitment of inositol trisphosphate receptor channels during calcium puffs.</a> Biophys J. 105 (11), 2474-2484 (2013).</li><li>Lee, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Columnar+distribution+of+activity+dependent+gabaergic+depolarization+in+sensorimotor+cortical+neurons.">Columnar distribution of activity dependent gabaergic depolarization in sensorimotor cortical neurons.</a> Mol Brain. 5, 33 (2012).</li><li>Glykys, J., Mody, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+main+source+of+ambient+GABA+responsible+for+tonic+inhibition+in+the+mouse+hippocampus.">The main source of ambient GABA responsible for tonic inhibition in the mouse hippocampus.</a> J Physiol. 582, 1163-1178 (2007).</li><li>Chen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=APP+modulates+KCC2+expression+and+function+in+hippocampal+GABAergic+inhibition.">APP modulates KCC2 expression and function in hippocampal GABAergic inhibition.</a> Elife. 6, (2017).</li><li>Dunn, A. J., Swiergiel, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+interleukin-1+and+endotoxin+in+the+forced+swim+and+tail+suspension+tests+in+mice.">Effects of interleukin-1 and endotoxin in the forced swim and tail suspension tests in mice.</a> Pharmacol Biochem Behav. 81 (3), 688-693 (2005).</li><li>Engel, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subcellular+Patch-clamp+Recordings+from+the+Somatodendritic+Domain+of+Nigral+Dopamine+Neurons.">Subcellular Patch-clamp Recordings from the Somatodendritic Domain of Nigral Dopamine Neurons.</a> J Vis Exp. (117), (2016).</li><li>Wondolowski, J., Frerking, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subunit-dependent+postsynaptic+expression+of+kainate+receptors+on+hippocampal+interneurons+in+area+CA1.">Subunit-dependent postsynaptic expression of kainate receptors on hippocampal interneurons in area CA1.</a> J Neurosci. 29 (2), 563-574 (2009).</li><li>Yang, L., Wang, Z., Wang, B., Justice, N. J., Zheng, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amyloid+precursor+protein+regulates+Cav1.2+L-type+calcium+channel+levels+and+function+to+influence+GABAergic+short-term+plasticity.">Amyloid precursor protein regulates Cav1.2 L-type calcium channel levels and function to influence GABAergic short-term plasticity.</a> J Neurosci. 29 (50), 15660-15668 (2009).</li><li>Huo, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prefrontal+Cortical+GABAergic+Dysfunction+Contributes+to+Aberrant+UP-State+Duration+in+APP+Knockout+Mice.">Prefrontal Cortical GABAergic Dysfunction Contributes to Aberrant UP-State Duration in APP Knockout Mice.</a> Cereb Cortex. , (2016).</li><li>Zhou, W. L., Gao, X. B., Picciotto, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acetylcholine+Acts+through+Nicotinic+Receptors+to+Enhance+the+Firing+Rate+of+a+Subset+of+Hypocretin+Neurons+in+the+Mouse+Hypothalamus+through+Distinct+Presynaptic+and+Postsynaptic+Mechanisms.">Acetylcholine Acts through Nicotinic Receptors to Enhance the Firing Rate of a Subset of Hypocretin Neurons in the Mouse Hypothalamus through Distinct Presynaptic and Postsynaptic Mechanisms.</a> eNeuro. 2 (1), (2015).</li></ol>

Слойка приложение широко используется для оценки постсинаптических рецепторов функция3,4,7, но требует точного управления в каждом эксперименте. Мы опишем здесь процедура поклеточного патч зажима, который демонстрирует, что ГАМК слоен...

Патч зажим технику, основным инструментом для исследования электрических сигналов в нейронах, был разработан в 1970-х1,2. Основным преимуществом этого метода является, что она предоставляет знания о как конкретные процедуры (например, фармакологической) может изменить функции нейронов или каналов в реальном времени3. Фармакологических оценки нейрональных функции во время поклеточного запись в срез мозга требует применения препаратов, таких как агонисты и антагонисты специфических рецепторов, записывается нейронов. Этот метод позволяет выявлять нейрональных изменений, которые происходят после применения конкретного препарата, что приводит к более глубокому пониманию физиологических и патологических свойства нейронов4. Хотя фармакологических администрация может проводиться через либо перфузии5 или слоеного6, последний является превосходной техникой. В частности: (i) слоеного приложения быстро увеличивается наркотиков концентрацию вокруг записанные нейрона до уровня таким образом, чтобы предотвратить десенсибилизации мембранных рецепторов; (ii) объем наркотиков пыхтел крайне низка, так что есть мало влияет на раствор для ванн, который таким образом уменьшает любые нежелательные эффекты химических веществ, управляемых на срезах головного мозга; (iii) протокола слоеного можно задать и сохранить, делая эксперимента очень точно воспроизводимый; (iv) слоеного приложения представляет собой экономичное использование агонистов/антагонистов, особенно когда такие реагенты дорогих или трудно получить.
Здесь мы сосредоточимся на запись поклеточного течения индуцированных пыхтя ГАМК в прекрасно подготовленных мозга ломтиками, препарат, который имеет преимущество относительно хорошо сохранились мозга цепей. В этой статье будут описаны как мы проводим слоеного индуцированной ингибирующее течений7 . С помощью цезий (Cs+)-на основе внутреннего решения и проведение нейронов в 0 mV, мы будем вводить ГАМК слоеного вызывали тормозной постсинаптический токов (eIPSCs) с соответствующие технические детали. С помощью мыши модели депрессии, вызванных инъекции липополисахарида (LPS)8, мы показывают, что eIPSC амплитуды, вызываемые ГАМК слоеного значительно уменьшается в ломтики LPS-вводят мышей, по сравнению с контроля автотранспортных средств. Наше намерение заключается, что эта статья должна показать как слоеного техника широко применяется к исследования, направленные на оценку воздействия любых химических веществ, соединений или наркотиков на нейрональных деятельности в срезах головного мозга.

<table style="border-collapse:collapse;width:665pt" width="887">
	<colgroup>
		<col style="width:161pt" width="214" />
		<col style="width:140pt" width="187" />
		<col style="width:155pt" width="206" />
		<col style="width:210pt" width="280" />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Glass Borosilicate micropipettes</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Shutter Instruments</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">BF150-86-10</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280">1.50 mm outer diameter; 0.86 mm inner diameter</td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Micropipette Puller</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Shutter Instruments</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">MODEL P-97&#160;</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280">Flaming/Brow Micropipette Puller</td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Micromanipulators</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Shutter Instruments</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">MP-285</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Computer controlled Amplifier&#160;&#160;&#160;</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Molecular Devices</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">Multiclamp 700B</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Digital Acquisition system&#160;</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Molecular Devices</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">Digidata 1440A</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Imaging Camera</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Nikon&#160;</td>
			<td class="xl18" style="width:155pt" width="206">2115001</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280">Inspection equipment</td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Microscopy&#160;</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Nikon&#160;</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">Eclipse FN1&#160;</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Master 8</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">A.M.P.I.</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">Master-8 Pulse stimulator</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Vibratome Slicer</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Leica</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">VT 1000S</td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Picospritzer &#8546;</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Parker Hannifin</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206"></td>
			<td class="xl18" style="width:210pt" width="280">Pressure Systems for Ejection of 
			Picoliter Volumes in Cell Research</td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Razor blade</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Gillette</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">74-S</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280">FLYING EAGLE</td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Video monitor</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Panasonic</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">WV-BM 1410</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl18" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">502 Glue</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Deli</td>
			<td class="xl18" style="width:155pt" width="206">7146</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280">Cyanoacrylate Glue</td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Peristaltic pump</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Shanghai JIA PENG Corporation</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">BT100-1F</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl20" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Video Camera</td>
			<td class="xl20" style="width:140pt" width="187">Olympus America Medical</td>
			<td class="xl20" style="width:155pt" width="206">OLY-150</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
		<tr height="40" style="height:30.0pt">
			<td class="xl18" height="40" style="width:161pt;height:30.0pt" width="214">Transfer Pipets</td>
			<td class="xl18" style="width:140pt" width="187">Biologix</td>
			<td class="xl18" style="width:155pt" width="206">30-0138A1</td>
			<td class="xl20" style="width:210pt" width="280"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

whole-cell currents induced by puff application of gaba in brain slices

Фармакологических администрация обычно используется при проведении поклеточного патч зажим запись в срезах головного мозга. Один из лучших методов применения препарата во время электрофизиологических записи является метод слоеного, который может использоваться для изучения влияния фармакологических реагентов на нейрональных деятельности в срезах головного мозга. Самое главное преимущество слоеного приложения является, что концентрации препарата вокруг сайта записи увеличивается быстро, таким образом предотвращая десенсибилизации мембранных рецепторов. Успешное использование слоеного приложения включает в себя пристальное внимание на следующие элементы: концентрация препарата, параметры слоеного микропипеткой, расстояние между кончиком микропипеткой слоеного и Записанная нейрон и продолжительность и вождения слоеные давления (фунтов на квадратный дюйм, psi). Эта статья описывает пошаговые процедуры для записи поклеточного течения индуцированных пыхтя гамма - аминомасляная кислота (ГАМК) на нейрон ломтиком префронтальной коры головного мозга. В частности та же процедура может применяться с незначительными изменениями в других областях мозга, таких как гиппокамп и Полосатое тело и различные препараты, такие как клеточных культур.

Слойка техника позволяет исследователям изучить влияние наркотиков на конкретной рецепторами на поверхности данного нейрона. В этой статье мы ориентируемся на токи при посредничестве приемные устройства GABA. Рисунок 1 показывает слоеного и записи microp...

Watch this Scientific Journal Video about Whole-cell Currents Induced by Puff Application of GABA in Brain Slices at JoVE.com

Whole-cell Currents Induced by Puff Application of GABA in Brain Slices

Поклеточного течения индуцированных слоеного применение ГАМК в мозге ломтиками

Мы описываем слоеного технику, в которой может осуществляться во время записи поклеточного патч зажим фармакологических реагентов и выделить различные аспекты функций, которые имеют решающее значение для его успеха.

Pharmacological administration is commonly used when conducting whole-cell patch-clamp recording in brain slices. One of the best methods of drug ...

The overall goal of this puff technique is to conduct the pharmacological administration in whole-cell patch-clamp recording. This method can help answer key questions in the electrophysiology field, such as pharmacological administration. The main advantage of this technique is that the drug concentration around the recording site increases rapidly, thus preventing the membrane receptors from desensitization.Generally, individual new to this method will struggle because the preparation of acute prefrontal cortex slice and the position of puff micropipette are relatively difficult. To begin this procedure, crush the frozen cutting solution to obtain a slush. Keep the slushy solution on ice, and bubble it with 95%oxygen, 5%carbon dioxide.Next, place the dissected head into a beaker filled with ice-cold cutting solution, and take it out after a few seconds. Cut the skull along the midline in a caudal-rostral direction with fine scissors, and remove the lateral skull portions. Then, remove the brain with a fine spatula, and drop it into the ice-cold cutting solution.Afterward, place the brain on the lid of a nine-centimeter Petri dish filled with ice. Rinse the brain with ice-cold cutting solution. Then, cut off the cerebellum and olfactory bulb with a razor blade.Subsequently, apply cyanoacrylate glue to the Vibratome specimen holder. Carefully place the brain block on the drop of glue, rostral side up, and immediately immerse it in the ice-cold cutting solution. Adjust the blade holder to an angle of 15 degrees with reference to the horizontal plane.Section the brain tissues into 350 micron coronal slices. Then, transfer the slides into the recovery chamber filled with ACSF, and incubate them for one hour with constant bubbling of 95%oxygen, 5%carbon dioxide. In our experiment, the preparation of acute prefrontal cortex slice is also critical in the procedure.A healthy brain slice means active neurons that can be patched tightly. In this procedure, make glass borosilicate micropipettes for use as recording electrodes or puff micropipettes. For recording electrodes, tip resistances are in the range of four to six megaohm, while puff micropipettes have tip diameters in the range of two to five micrometers.Add sodion channel blocker to ACSF to block fast sodion channel and thus action potentials, and maintain a constant flow rate of this solution of two to three milliliter per minute in the recording chamber. Bubble the ACSF with 95%oxygen, 5%carbon dioxide constantly to ensure the viability of the slices. Transfer a brain slice to the recording chamber, using a Pasteur pipette with its fine tip cut to fit the size of the slice.Next, place a platinum slice anchor above the slice to hold it on the platform. After that, fill the recording micropipettes with internal solution, and fill the puff micropipettes with GABA at 10 micromolar, 50 micromolar, and 100 micromolar, or ACSF as vehicle control. To prevent blockage with debris, apply slight positive pressure using a one-milliliter syringe before immersing the recording electrode in the ACSF.Under a microscope, position the recording electrode and puff micropipette so that the tips appear in the center of the monitor. Then, identify a target neuron. Adjust the microscope focus while gradually lowering the puff micropipette, and place it above the recording neuron at an angle of 45 degrees.Keep the distance between the tip of the puff micropipette and the target neuron in the range of 20 to 40 micrometers. Slowly and carefully approach the neuron with the recording electrode, and then release the positive pressure. Apply a weak and brief suction through the tubing connected to the electrode holder to create a gigaohm seal.Maintain the voltage at zero millivolts. After the formation of the gigaohm seal, compensate the fast and slow capacitance manually or automatically. Then, apply a brief and strong suction through the tubing to break into the whole-cell mode.Subsequently, record evoked IPSC currents in voltage clamp mode. Deliver single or paired GABA puffs through the puff micropipette controlled by a Master-8 voltage-step generator. Change the puff duration to obtain the best evoked IPSC currents results, and measure the evoked IPSC currents in the LPS-induced depression model.Shown here, are the sample IPSCs induced by 10, 50, and 100 micromolar GABA. And here are the puff duration response curves. The repetitive currents evoked by GABA at 50 micromolar puffs at interpuff intervals of one, two, or three seconds are shown here.One mastered, this technique can be done in two hours if it is performed properly. While attempting this procedure, it's important to remember to obtain healthy brain slices. After its development, this technique paved the way for researchers in the field of pharmacological administration to explore the effect of drug in electrophysiology.After watching this video, you should have a good understanding of how to conduct the pharmacological administration in whole-cell patch-clamp recording. Don't forget that working with TTX can be extremely hazardous and precautions, such as wearing gloves, should always be taken while performing this procedure.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

GABA-activated Single-channel and Tonic Currents in Rat Brain Slices

ГАМК-активированный Одноканальный с тоником токи в ломтики мозга крысы

The GABAA channels are present in all neurons and are located both at synapses and outside of synapses where they generate phasic and tonic currents, ...

Local Application of Drugs to Study Nicotinic Acetylcholine Receptor Function in Mouse Brain Slices

Местное применение наркотиков по изучению никотиновых рецепторов ацетилхолина функции в срезах мозга мыши

Tobacco use leads to numerous health problems, including cancer, heart disease, emphysema, and stroke. Addiction to cigarette smoking is a prevalent ...

Fast Micro-iontophoresis of Glutamate and GABA: A Useful Tool to Investigate Synaptic Integration

Быстрый Micro-ионтофорезом глутамата и ГАМК: полезный инструмент по расследованию Synaptic интеграции

One of the fundamental interests in neuroscience is to understand the integration of excitatory and inhibitory inputs along the very complex structure of ...

Paired Whole Cell Recordings in Organotypic Hippocampal Slices

Парные Целые Записи Сотовые в Органотипической срезов гиппокампа

Pair recordings involve simultaneous whole cell patch clamp recordings from two synaptically connected neurons, enabling not only direct ...

Whole-cell Patch-clamp Recordings in Brain Slices

Цельноклеточной патч-зажим Записи в головном мозге Ломтики

Whole-cell patch-clamp recording is an electrophysiological technique that allows the study of the&#160;electrical properties of a substantial part of the ...

Application of Automated Image-guided Patch Clamp for the Study of Neurons in Brain Slices

Применение автоматизированного патч-зажима для изображений для изучения нейронов в средах мозга

Whole-cell patch clamp is the gold-standard method to measure the electrical properties of single cells. However, the in vitro patch clamp remains a ...

Evaluation of Synapse Density in Hippocampal Rodent Brain Slices

Оценка плотности синапсов в срезах гиппокампа грызунов мозга

In the brain, synapses are specialized junctions between neurons, determining the strength and spread of neuronal signaling. The number of synapses is ...

Recording and Modulation of Epileptiform Activity in Rodent Brain Slices Coupled to Microelectrode Arrays

Запись и модуляция активности эпилептиформный ломтиками грызунов мозга в сочетании с микроэлектродные массивы

Temporal lobe epilepsy (TLE) is the most common partial complex epileptic syndrome and the least responsive to medications. Deep brain stimulation (DBS) ...

Preparation of Acute Spinal Cord Slices for Whole-cell Patch-clamp Recording in Substantia Gelatinosa Neurons

Подготовка острого спинного фрагменты записи поклеточного патч зажим в Substantia Gelatinosa нейронов

Recent whole-cell patch-clamp studies from substantia gelatinosa (SG) neurons have provided a large body of information about the spinal mechanisms ...

Assessment of Long-term Depression Induction in Adult Cerebellar Slices

Оценка долгосрочной депрессии индукции в взрослых церебеллярной ломтики

Synaptic plasticity provides a mechanism for learning and memory. For cerebellar motor learning, long-term depression (LTD) of synaptic transmissions from ...