Name: quantification of lipid abundance and evaluation of lipid distribution in caenorhabditis elegans by nile red and oil red o staining
Uploaded: 2018-03-05T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining at JoVE.com

هذا العمل ممكناً بمنح المعاهد الوطنية للصحة: R01GM109028 (S.P.C.)

1-النيل تلطيخ الأحمر (NR) من الدهون
<ol><li>إعداد 5 ملغ/مل NR الأسهم الحل<ol>
<li>في زجاجة 500 مل، إضافة 100 ملغ مسحوق NR إلى 200 مل الأسيتون 100%.</li>
		<li>وتغطي الزجاجة برقائق الألومنيوم لتجنب أي التعرض للضوء.</li>
		<li>قبل الاستخدام، يحرك الحل بالنسبة ح 2 في الظلام.</li>
		<li>لاستخدامها على المدى الطويل، تخزين حل الأ?...

<ol>
	<li>Greenspan, P., Mayer, E. P., Fowler, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nile+red:+a+selective+fluorescent+stain+for+intracellular+lipid+droplets.">Nile red: a selective fluorescent stain for intracellular lipid droplets.</a> J Cell Biol. 100 (3), 965-973 (1985).</li><li>Guo, Y., Cordes, K. R., Farese, R. V., Walther, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lipid+droplets+at+a+glance.">Lipid droplets at a glance.</a> J Cell Sci. 122 (6), 749-752 (2009).</li><li>Horobin, R. W., Kiernan, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Conn's biological stains: a handbook of dyes, stains and fluorochromes for use in biology and medicine. , (2002).</li><li>Hulme, S. E., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemistry+and+the+worm:+Caenorhabditis+elegans+as+a+platform+for+integrating+chemical+and+biological+research.">Chemistry and the worm: Caenorhabditis elegans as a platform for integrating chemical and biological research.</a> Angew Chem Int Edit. 50 (21), 4774-4807 (2011).</li><li>Khanna, A., Johnson, D. L., Curran, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+roles+for+mafr-1+in+reproduction+and+lipid+homeostasis.">Physiological roles for mafr-1 in reproduction and lipid homeostasis.</a> Cell Rep. 9 (6), 2180-2191 (2014).</li><li>Lynn, D. A., Dalton, H. M., Sowa, J. N., Wang, M. C., Soukas, A. A., Curran, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Omega-3+and-6+fatty+acids+allocate+somatic+and+germline+lipids+to+ensure+fitness+during+nutrient+and+oxidative+stress+in+Caenorhabditis+elegans.">Omega-3 and-6 fatty acids allocate somatic and germline lipids to ensure fitness during nutrient and oxidative stress in Caenorhabditis elegans.</a> P Natl Acad Sci USA. 112 (50), 15378-15383 (2015).</li><li>Pang, S., Lynn, D. A., Lo, J. Y., Paek, J., Curran, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SKN-1+and+Nrf2+couples+proline+catabolism+with+lipid+metabolism+during+nutrient+deprivation.">SKN-1 and Nrf2 couples proline catabolism with lipid metabolism during nutrient deprivation.</a> Nat Commun. 5, (2014).</li><li>Saltiel, A. R., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+signalling+and+the+regulation+of+glucose+and+lipid+metabolism.">Insulin signalling and the regulation of glucose and lipid metabolism.</a> Nature. 414 (6865), 799-806 (2001).</li><li>Witting, M., Schmitt-Kopplin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Caenorhabditis+elegans+lipidome:+A+primer+for+lipid+analysis+in+Caenorhabditis+elegans.">The Caenorhabditis elegans lipidome: A primer for lipid analysis in Caenorhabditis elegans.</a> Arch Biochem Biophys. 589, 27-37 (2016).</li><li>Yen, K., Le, T. T., Bansal, A., Narasimhan, S. D., Cheng, J. X., Tissenbaum, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+of+fat+storage+quantitation+in+nematode+Caenorhabditis+elegans+using+label+and+label-free+methods.">A comparative study of fat storage quantitation in nematode Caenorhabditis elegans using label and label-free methods.</a> PloS One. 5 (9), e12810 (2010).</li><li>Zhang, Y., Zou, X., Ding, Y., Wang, H., Wu, X., Liang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+genomics+and+functional+study+of+lipid+metabolic+genes+in+Caenorhabditis+elegans.">Comparative genomics and functional study of lipid metabolic genes in Caenorhabditis elegans.</a> BMC Genomics. 14 (1), 164 (2013).</li><li>Folick, A., Min, W., Wang, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Label-free+imaging+of+lipid+dynamics+using+Coherent+Anti-stokes+Raman+Scattering+(CARS)+and+Stimulated+Raman+Scattering+(SRS)+microscopy.">Label-free imaging of lipid dynamics using Coherent Anti-stokes Raman Scattering (CARS) and Stimulated Raman Scattering (SRS) microscopy.</a> Curr Opin Genet Dev. 21 (5), 585-590 (2011).</li><li>Pino, E. C., Webster, C. M., Carr, C. E., Soukas, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biochemical+and+high+throughput+microscopic+assessment+of+fat+mass+in+Caenorhabditis+elegans.">Biochemical and high throughput microscopic assessment of fat mass in Caenorhabditis elegans.</a> J Vis Exp. (73), (2013).</li><li>O'Rourke, E. J., Soukas, A. A., Carr, C. E., Ruvkun, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=C.+elegans+major+fats+are+stored+in+vesicles+distinct+from+lysosome-related+organelles.">C. elegans major fats are stored in vesicles distinct from lysosome-related organelles.</a> Cell Metab. 10 (5), 430-435 (2009).</li></ol>

يجعل ارتفاع معدلات الأمراض الأيضية والسمنة C. ايليجانس نموذج مناسب دراسة الآليات التي تنظم تراكم الدهون في الخلايا والأنسجة. تشير الدلائل الأخيرة إلى أن التغيرات في مستويات الدهون ترتبط بالعمليات الخلوية التي تتراوح بين الأنسولين مما يشير إلى8، تنشيط هرمون مستقبلات<sup cl...

الدهون ضرورية للحياة. فعناصر لا تتجزأ من الأغشية والعمل كرسل الثانوية وإشارة محولات الطاقة ولها وظائف حيوية في تخزين الطاقة. عند دهن الأيض dysregulated فإنه يؤدي إلى أمراض مثل السمنة ومرض السكري من النوع الثاني، الذي يتم الضغط على شواغل الصحة العامة9. ايليجانس كاينورهابديتيس (C. ايليجانس) كائن حي نموذجا ممتازا لدراسة الأيض الدهني لأنها لها دورة حياة قصيرة نسبيا وهيئة شفافة ونسب خلية معروفة وجينوم تسلسل الكامل. يسمح أساسا خنثي، C. ايليجانس الباحثين لرفع عدد كبير من الحيوانات اسوي باختصار فترات من الوقت للقيام الفائق شاشات الجينية إلى الأمام لدراسة طائفة واسعة من الجينات والمسارات الأيضية4. وقد كشف هذا النهج درجة عالية من الحفظ في C. ايليجانس 273 دهن الأيض الجينات بين البشر والفئران والجرذان والمورفولوجية. وعلاوة على ذلك، بما يزيد على 300 الدهن الجينات في C. ايليجانس أورثولوجويس البشرية المرتبطة بالأمراض التي لا علاقة لها بالمتلازمة الأيضية11. تقليديا، دراسة تخزين الدهون في C. ايليجانس معظمها يعتمد على فحوصات المسمى صبغ، التي توفر معلومات قوية حول تراكم الدهن. أقل شيوعاً وصف فيها تعريب الدهون وقياس الاختلافات في وفرة الدهن عبر الأنسجة. ومع ذلك، كشفت الأعمال الأخيرة أن توزيع الدهن يمكن أن تكون هامة مثل تراكم الدهن6.
في الآونة الأخيرة، وقد بدأت دراسات إدماج أساليب مثل عالية الأداء السائل اللوني-قياس الطيف الكتلي ([هبلك]-مرض التصلب العصبي المتعدد)، الفصل اللوني للغاز-الكتلي (GC-MS)، ومتماسكة المضادة-ستوكس رامان مجهرية نثر (السيارات) للتصدي أوجه قصور نهج المستندة إلى وصمة عار بتحليل محتويات مقتطفات الدهن والدهن محددة الكسور ورواسب الدهن، على التوالي10،11مباشرة. وعلاوة على ذلك، كشفت مجهرية السيارات أن النيل الأحمر يمكن أن تصلح كوكيل لتراكم الدهون عند استخدامها كصبغة مثبت، لاستعماله وصمة عار حيوية يؤدي إلى تلطيخ خارج الهدف للسيارات-فلوري العضيات10فقط. بيد أن الخبرة الفنية المطلوبة والتكاليف المرتبطة بهذه اللوني وأساليب الفحص المجهري يجعل استخدامها لا يمكن الدفاع عنها للعديد من الأسئلة البحثية. في هذه المقالة، نحن نناقش أسلوب مناسب وموثوق بها يحملق ووصمة عار رواسب الدهون محايدة في C. ايليجانس استخدام النيل الأحمر والنفط س الأحمر التمييز بين وفرة الدهون في الحيوانات كلها وفي أنسجة محددة.
النيل الأحمر، 9-diethylamino-5H-benzo[α]phenoxazine-5-one، هو صبغة بينزوفينوكسازوني سهولة يذوب في المذيبات العضوية المختلفة، بل هو في الغالب غير قابلة للذوبان في الماء. فهو صبغ ليسوتشرومي ممتازة تستخدم لوصمة عار الدهون محايدة مثل الشحوم أو استرات الكوليسترول نظراً لأنه يتميز بلون قوي، سولوبيليزيس كذلك في الدهون، أصبحت لا تذكر من التفاعل مع الأنسجة المحيطة، وهو أقل قابل للذوبان في المذيبات مما في الدهون. فقد ماكسيما الإثارة والانبعاثات من 450-500 و 520 نانومتر، على التوالي1. عندما يتم عرض النيل C. ايليجانس ملطخة بالأحمر الفلورية الخضراء، هيئات منفصلة في الدهون يمكن مراعاتها في جميع أنحاء الأمعاء والأنسجة الأخرى أما في مجموعات أو موزعة بالتساوي، تبعاً للنمط الوراثي للحيوان أو العلاج التجريبي 7.
O النفط الأحمر هو ليسوتشرومي، وتذوب صبغة تستخدم لوصمة عار الشحوم والبروتينات الدهنية. ويسمى صبغة الآزو لبنيتها الكيميائية تحتوي على مجموعتين الآزو يعلق على الحلقات العطرية الثلاثة. من الصعب أن تتأين، مما يجعلها عالية قابلة للذوبان في الدهون. أحمر لونه وصمة عار وامتصاص الضوء في أقصى 518 شمال البحر الأبيض المتوسط 3. C. ايليجانس ملطخة بالزيت يا الحمراء تظهر قطرات الدهن الحمراء التي تبرز ضد جسم الحيوان شفافة، مما يسهل تقييم نوعي لتوزيع الدهون بين أنسجة مختلفة6.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Imager.M2m Microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Fluorescence microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ERC5s camera</td>
			<td>Axiocam</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Color-capable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MRm camera</td>
			<td>Axiocam</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Fluorescence-capable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nile red</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>N1142</td>
			<td>Lipid Stain</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oil red O</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A12989</td>
			<td>Lipid Stain</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>D1306</td>
			<td>DNA stain</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropyl Alcohol</td>
			<td>BDH</td>
			<td>BDH1133-1LP</td>
			<td>Fixative solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.2 &#181;m seterile syringe filter</td>
			<td>VWR</td>
			<td>28145-477</td>
			<td>Cellulose acetate filter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge 5430</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5428000015</td>
			<td>Centrifuge</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaker Rotisserie</td>
			<td>Lab Quake</td>
			<td>400110Q</td>
			<td>Shaker</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube Rotator</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10136-084</td>
			<td>Rotator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K2HPO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7758-11-4</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KH2PO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7778-77-0</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgSO4</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>7786-30-3</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>10035-04-8</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7647-14-5</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cholesterol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>57-88-5</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptone</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>211677</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agar</td>
			<td>Teknova</td>
			<td>L9110</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LB media</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L3147</td>
			<td>Bacterial growth</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

quantification of lipid abundance and evaluation of lipid distribution in caenorhabditis elegans by nile red and oil red o staining

ايليجانس كاينورهابديتيس كائن نموذج استثنائي لدراسة الأيض الدهون والتوازن الطاقة فيه. العديد من الجينات الدهن يتم المحافظة عليها في البشر والمرتبطة بالمتلازمة الأيضية أو غيره من الأمراض. يمكن أن تنفذ دراسة تراكم الدهن في هذا الحي بالأصباغ مثبت أو أساليب خالية من التسمية. البقع مثبت مثل النيل الأحمر والنفط س الحمراء طرق غير مكلفة، ويمكن الاعتماد عليها لقياس مستويات الدهون كمياً ونوعيا مراقبة التوزيع الدهن عبر الأنسجة، على التوالي. وعلاوة على ذلك، تتيح هذه البقع الفرز الفائق من جينات الأيض الدهون ومسارات مختلفة. بالإضافة إلى ذلك، طابعها مسعور يسهل الذوبان في الدهون ويقلل من التفاعل مع المحيط بالانسجة، ويمنع التفكك في المذيب. وعلى الرغم من هذه الأساليب الفعالة في دراسة محتوى الدهون عامة، أنها لا توفر معلومات مفصلة عن التركيب الكيميائي والتنوع من رواسب الدهون. لهذه الأغراض، خالية من تسمية أساليب مثل الفحص المجهري GC-MS والسيارات أفضل ملاءمة، تكاليفها على الرغم من.

SKN-1 هو "bzip"، سيتوبروتيكتيفي عامل النسخ التي تشاطر التماثل مع NRF2 الثدييات، ولقد ثبت للتوسط في أكسدة الأحماض الدهنية. اعتماداً على تركيز الجلوكوز في نظامهم الغذائي، تظهر الديدان مع اليل مؤثرا المنشط skn-1 مستويات مختلفة من الدهون عندما ملطخة بالنيل الأحمر7. ...

Watch this Scientific Journal Video about Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining at JoVE.com

Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining

التحديد الكمي لوفرة الدهن وتقييم توزيع الدهن في ايليجانس كاينورهابديتيس "الأحمر النيل" و "النفط تلطيخ س الأحمر"

النيل الأحمر تلطيخ من الثابتة ايليجانس كاينورهابديتيس طريقة لقياس كمية الرواسب الدهنية محايدة، بينما النفط الأحمر يا تلطيخ يسهل تقييم نوعي لتوزيع الدهون بين الأنسجة.

Caenorhabditis elegans is an exceptional model organism in which to study lipid metabolism and energy homeostasis. Many of its lipid genes are conserved ...

The overall goal of these staining methods is to quantify intracellular lipid abundance and evaluate lipid distribution among different tissues. This method can help answer key questions in lipid metabolism such as how are lipids genetically and biochemically regulated and which disease states this regulate lipid homeostasis. The main advantage of this technique is that it is relatively simple and inexpensive to carry out.To carry out Nile Red lipid staining, plate worms on Nematode Growth Medium or NGM seeded with late log OP50 E.coli and grow the worms at 20 degrees Celsius to early L4 stage. Wash the worms with one millimeter of PBST solution and transfer the worm suspension to a 1.5 milliliter microfuge tube. Centrifuge the worms at 560 times gravity for one minute.Then remove the supernatant and repeat the PBST wash until the E.coli is cleared from the suspension. Next, to the worm pellet, add 100 microliters of 40%isopropanol or 60%for ORO staining and incubate the sample at room temperature for three minutes. The addition of isopropanol is crucial for proper permeabilization of the worms before staining.Centrifuge the worms at 560 times gravity for one minute and remove the supernatant without disrupting the worm pellet. It is important to minimize light exposure during the centrifugation steps. Now while in the dark, add 600 microliters of previously prepared NR working solution to each sample.Invert the tubes three times and fully mix the worms and solution. Then incubate the sample in the dark at room temperature for two hours. Following incubation, centrifuge the worms and remove the supernatant.Then add 600 microliters of PBST and incubate the samples in the dark for 30 minutes to remove the excess NR stain. After spinning the samples again as before, remove all but approximately 50 microliters of supernatant and resuspend the worm pellet in the remaining solution. To prepare slides for imaging, pipette five microliters of worm suspension onto a microscope slide and carefully apply a coverslip to avoid trapping any air bubbles.Using the FITC GFP channel to image NR stained worms and trying different exposure times, image the worms at five-fold magnification to capture several animals per field of view. Then switch to 10-fold magnification for better quantification of individual worms. To quantify the images, upload the micrographs to ImageJ.In the image pull down menu, adjust the brightness, contrast of the image deck, and propagate changes to all the images by clicking apply. Use the polygon selection tool to delineate each imaged worm and under the analysis pull down menu, use the measure function to qualify fluorescence intensity emitted by NR.For each image, measure five background locations and calculate the average background fluorescence intensity. Add 600 microliters of Oil Red O or ORO working solution to each sample and invert the tube three times to mix the worms well and the ORO.Rotate the samples at 30 RPM and RT for two hours. Centrifuge the samples at 560 times gravity for one minute and aspirate all the supernatant except for 100 microliters. Then use 600 microliters of PBST to resuspend the samples and rotate the tubes at 30 RPM for 30 minutes to remove excess ORO staining.To better distinguish the location of the animals'germ line in the intestinal cells, stain nuclei by adding one microliter of DAPI for every one milliliter of ORO working solution. Then to prepare slides for imaging, resuspend the worms and the remaining supernatant and mix the solution well. Put five microliters of worm suspension on a microscope slide and carefully apply a coverslip ensuring that no air bubbles form.To image the ORO stained worms, use a color capable camera at five-fold magnification to image several worms in one field of view. Then switch to 10-fold magnification for better examination of individual worms. Finally, after uploading the images to ImageJ and creating an image deck according to the text protocol, categorize the images according to lipid accumulation throughout the animal's body or in specific tissues.SKN-1 shares homology with mammalian Nrf2 and has been shown to mediate fatty acid oxidation. This figure shows activated SKN-1 animals exposed to conditions that lead to increasing lipid levels. As seen in these images, NR fluorescence captured using the FITC GFP channel is prominent along the intestine, but is dimmer in the head, tail, and intestinal lumen.While it is easy to categorize the worms according to the presence or absence of Age-dependent Somatic Depletion of Fat or ASDF, it may be difficult to identify animals with intermediate fat loss. Compared to non-ASDF animals, which show bright red staining throughout the body with few translucent areas, ASDF worms exhibit noticeable fat depletion in intestinal cells. Animals in the process of developing ASDF often show translucent spots where most of the fat loss eventually occur.Moreover, ASDF worms may still feature bright red staining in the head and tail regions because the phenotype is not defined by complete somatic fat loss, but by extensive fat depletion relative to non-aged animals. Once mastered, this technique can be done in three hours plus imaging time if it is performed properly. While attempting this procedure, it's important to remember to wash and permeabilize worms no more than 30 minutes before staining.Following this procedure, other methods like CARS microscopy can be performed to compare the type of lipid species each technology identifies and to determine which method is better suited for specific types of questions. After watching this video, you should have a good understanding of how to quantify lipids and evaluate lipid distribution in the worms using Nile Red and Oil Red O staining, followed by ImageJ micrograph analysis.

Research

JoVE Journal

Biology

Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining

Evaluation of the Spatial Distribution of &gamma;H2AX following Ionizing Radiation

Evaluation of the Spatial Distribution of &#947;H2AX following Ionizing Radiation

تقييم التوزيع المكاني للγH2AX التالية الإشعاعات المؤينة

An early molecular response to DNA double-strand breaks (DSBs) is phosphorylation of the Ser-139 residue within the terminal SQEY motif of the histone ...

Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation

Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation

الأساسية<em&gt; Caenorhabditis ايليجانس</em&gt; طرق: التزامن والمراقبة

Research into the molecular and developmental biology of the nematode Caenorhabditis elegans was begun in the early seventies by Sydney Brenner and it has ...

Measurement of Energy Metabolism in Explanted Retinal Tissue Using Extracellular Flux Analysis

قياس استقلاب الطاقة في اكسبلانتيد نسيج الشبكية باستخدام تحليل الجريان خارج الخلية

High acuity vision is a heavily energy-consuming process, and the retina has developed several unique adaptations to precisely meet such demands while ...

Dissection and Lipid Droplet Staining of Oenocytes in Drosophila Larvae

Dissection and Lipid Droplet Staining of Oenocytes in Drosophila Larvae

التشريح وتلطيخ الدهون القطرة من البويضات في يرقات دروفيا

Lipids are essential for animal development and physiological homeostasis. Dysregulation of lipid metabolism results in various developmental defects and ...

Isolation and Characterization of Adult Cardiac Fibroblasts and Myofibroblasts

عزل وتوصيف الخلايا الليفية القلبية للبالغين والخلايا الليفية الليفية

Cardiac fibrosis in response to injury is a physiological response to wound healing. Efforts have been made to study and target fibroblast subtypes that ...

Label-Free Imaging of Lipid Storage Dynamics in Caenorhabditis elegans using Stimulated Raman Scattering Microscopy

Label-Free Imaging of Lipid Storage Dynamics in Caenorhabditis elegans using Stimulated Raman Scattering Microscopy

التصوير الخالي من التسميات لديناميكيات تخزين الدهون في Elegans Caenorhabditis باستخدام المجهر التشتت رامان المحفزة

Lipid metabolism is a fundamental physiological process necessary for cellular and organism health. Dysregulation of lipid metabolism often elicits ...

Automating Aggregate Quantification in Caenorhabditis elegans

Automating Aggregate Quantification in Caenorhabditis elegans

أتمتة القياس الكمي الكلي في Caenorhabditis elegans

A rise in the prevalence of neurodegenerative protein conformational diseases (PCDs) has fostered a great interest in this subject over the years. This ...

Lipid Supplementation for Longevity and Gene Transcriptional Analysis in Caenorhabditis elegans

Lipid Supplementation for Longevity and Gene Transcriptional Analysis in Caenorhabditis elegans

مكملات الدهون لطول العمر وتحليل النسخ الجيني في Caenorhabditis elegans

Aging is a complex process characterized by progressive physiological changes resulting from both environmental and genetic contributions. Lipids are ...

تصوير الخلايا الحية لحجم قطرات الدهون والانصهار باستخدام Oil Red O و BODIPY

Evaluation of Lipid Droplet Size and Fusion in Bovine Hepatic Cells

تسليط الضوء على المؤلف: تقييم حجم قطرات الدهون والاندماج في الخلايا الكبدية البقرية  

تقييم حجم قطرات الدهون والاندماج في الخلايا الكبدية البقرية

Lipid droplets (LDs) are organelles that play an important role in lipid metabolism and neutral lipid storage in cells. They are associated with a variety ...