Name: quantification of lipid abundance and evaluation of lipid distribution in caenorhabditis elegans by nile red and oil red o staining
Uploaded: 2018-03-05T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining at JoVE.com

Detta arbete har gjorts möjlig genom NIH bidraget: R01GM109028 (S.P.C.)

1. Nilen röd (NR) färgning av lipider
<ol><li>Beredning av 5 mg/mL NR stamlösning<ol>
<li>I en 500 mL flaska, lägga till 100 mg NR pulver 200 mL 100% aceton.</li>
		<li>Täcka flaskan med aluminiumfolie att undvika eventuella exponering för ljus.</li>
		<li>Rör om lösningen för 2 h i mörkret före användning.</li>
		<li>För långtidsbehandling, förvara NR stamlösning i en tätslutande flaska utan någon ljusexponering. Skala NR stamlösning enligt forskningsbehov. Se till att samma stamlösningen används ...

<ol>
	<li>Greenspan, P., Mayer, E. P., Fowler, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nile+red:+a+selective+fluorescent+stain+for+intracellular+lipid+droplets.">Nile red: a selective fluorescent stain for intracellular lipid droplets.</a> J Cell Biol. 100 (3), 965-973 (1985).</li><li>Guo, Y., Cordes, K. R., Farese, R. V., Walther, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lipid+droplets+at+a+glance.">Lipid droplets at a glance.</a> J Cell Sci. 122 (6), 749-752 (2009).</li><li>Horobin, R. W., Kiernan, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Conn's biological stains: a handbook of dyes, stains and fluorochromes for use in biology and medicine. , (2002).</li><li>Hulme, S. E., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemistry+and+the+worm:+Caenorhabditis+elegans+as+a+platform+for+integrating+chemical+and+biological+research.">Chemistry and the worm: Caenorhabditis elegans as a platform for integrating chemical and biological research.</a> Angew Chem Int Edit. 50 (21), 4774-4807 (2011).</li><li>Khanna, A., Johnson, D. L., Curran, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+roles+for+mafr-1+in+reproduction+and+lipid+homeostasis.">Physiological roles for mafr-1 in reproduction and lipid homeostasis.</a> Cell Rep. 9 (6), 2180-2191 (2014).</li><li>Lynn, D. A., Dalton, H. M., Sowa, J. N., Wang, M. C., Soukas, A. A., Curran, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Omega-3+and-6+fatty+acids+allocate+somatic+and+germline+lipids+to+ensure+fitness+during+nutrient+and+oxidative+stress+in+Caenorhabditis+elegans.">Omega-3 and-6 fatty acids allocate somatic and germline lipids to ensure fitness during nutrient and oxidative stress in Caenorhabditis elegans.</a> P Natl Acad Sci USA. 112 (50), 15378-15383 (2015).</li><li>Pang, S., Lynn, D. A., Lo, J. Y., Paek, J., Curran, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=SKN-1+and+Nrf2+couples+proline+catabolism+with+lipid+metabolism+during+nutrient+deprivation.">SKN-1 and Nrf2 couples proline catabolism with lipid metabolism during nutrient deprivation.</a> Nat Commun. 5, (2014).</li><li>Saltiel, A. R., Kahn, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+signalling+and+the+regulation+of+glucose+and+lipid+metabolism.">Insulin signalling and the regulation of glucose and lipid metabolism.</a> Nature. 414 (6865), 799-806 (2001).</li><li>Witting, M., Schmitt-Kopplin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Caenorhabditis+elegans+lipidome:+A+primer+for+lipid+analysis+in+Caenorhabditis+elegans.">The Caenorhabditis elegans lipidome: A primer for lipid analysis in Caenorhabditis elegans.</a> Arch Biochem Biophys. 589, 27-37 (2016).</li><li>Yen, K., Le, T. T., Bansal, A., Narasimhan, S. D., Cheng, J. X., Tissenbaum, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+of+fat+storage+quantitation+in+nematode+Caenorhabditis+elegans+using+label+and+label-free+methods.">A comparative study of fat storage quantitation in nematode Caenorhabditis elegans using label and label-free methods.</a> PloS One. 5 (9), e12810 (2010).</li><li>Zhang, Y., Zou, X., Ding, Y., Wang, H., Wu, X., Liang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+genomics+and+functional+study+of+lipid+metabolic+genes+in+Caenorhabditis+elegans.">Comparative genomics and functional study of lipid metabolic genes in Caenorhabditis elegans.</a> BMC Genomics. 14 (1), 164 (2013).</li><li>Folick, A., Min, W., Wang, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Label-free+imaging+of+lipid+dynamics+using+Coherent+Anti-stokes+Raman+Scattering+(CARS)+and+Stimulated+Raman+Scattering+(SRS)+microscopy.">Label-free imaging of lipid dynamics using Coherent Anti-stokes Raman Scattering (CARS) and Stimulated Raman Scattering (SRS) microscopy.</a> Curr Opin Genet Dev. 21 (5), 585-590 (2011).</li><li>Pino, E. C., Webster, C. M., Carr, C. E., Soukas, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biochemical+and+high+throughput+microscopic+assessment+of+fat+mass+in+Caenorhabditis+elegans.">Biochemical and high throughput microscopic assessment of fat mass in Caenorhabditis elegans.</a> J Vis Exp. (73), (2013).</li><li>O'Rourke, E. J., Soukas, A. A., Carr, C. E., Ruvkun, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=C.+elegans+major+fats+are+stored+in+vesicles+distinct+from+lysosome-related+organelles.">C. elegans major fats are stored in vesicles distinct from lysosome-related organelles.</a> Cell Metab. 10 (5), 430-435 (2009).</li></ol>

Ökningen av fetma och metabola sjukdomar priser gör C. elegans en lämplig modell för att studera de mekanismer som reglerar fettansamling i celler och vävnader. Nyligen tyder på att förändringar i lipidnivåer är korrelerade med cellulära processer alltifrån insulin signalering8, aktivering av hormon receptorer2, att reproduktionskapaciteten5. Röd O jämfört med etikett-fri mikroskopi och kromatografiska metoder, Nile röd och o...

Lipider är väsentliga för livet. De är integrerade delar av membran, fungera som sekundära budbärare och signalera givare har avgörande funktioner i energilagring. När lipidmetabolismen dysreglerad, leder det till sjukdomar som fetma och diabetes typ II, som trycka på folkhälsan oro9. Caenorhabditis elegans (C. elegans) är en utmärkt modellorganism som att studera lipidmetabolismen eftersom den har relativt kort livslängd, en transparent kropp, en känd cell härstamning och ett fullt sekvenserat genomet. Primärt en hermafrodit, C. elegans tillåter forskare att höja stort antal syngena djur kort tid för att utföra hög genomströmning framåt genetiska skärmar för att studera en rad olika metaboliska gener och vägar4. Denna strategi har visat en hög grad av bevarande i 273 C. elegans lipid metabolism gener bland människor, möss, råttor och drosophila. Över 300 lipid gener i C. elegans har dessutom mänskliga orthologues som är associerade med sjukdomar orelaterade till metabola syndromet11. Granskning av lipid lagring i C. elegans har traditionellt, främst förlitat sig på dye-märkt analyser, som ger robust information om lipid ackumulering. Mindre vanliga är en beskrivning av där lipider lokalisera och uppmätta skillnader i lipid överflöd över vävnader. Senaste arbete har dock visat att lipid fördelning kan vara lika viktigt som lipid ackumulering6.
Nyligen, studier har börjat integrera metoder såsom högpresterande liquid chromatography-masspektrometri (HPLC-MS), gaskromatografi-masspektrometri (GC-MS), och sammanhängande anti-stokes Raman spridning (bilar) mikroskopi till adress den bristerna i fläcken tillvägagångssätt genom att direkt analysera innehållet i lipid extrakt, särskilda lipid bråk och lipid insättningar, respektive10,11. BILAR mikroskopi har dessutom avslöjat att Nilen red endast kan fungera som en proxy för ansamling av fett när den används som ett fixativ färgämne, för dess användning som en vital fläcken leder till off-target färgning av auto-fluorescerande organeller10. Men det krävs teknisk expertis och kostnader i samband med dessa kromatografi och mikroskopi metoder gör deras användning ohållbar för många forskningsfrågor. I den här artikeln diskuterar vi en bekväm och pålitlig metod för att fixera och fläcken neutrala lipid insättningar i C. elegans med Nile röd och olja röd O för att skilja lipid överflöd i hela djur och i specifika vävnader.
Nile röd, 9-diethylamino-5H-benzo[α]phenoxazine-5-one, är en benzophenoxazone färgämne som lätt löser sig i olika organiska lösningsmedel, men mestadels är olöslig i vatten. Det är en utmärkt lysochrome färgämne brukade färga neutrala lipider som triglycerider eller kolesterol estrar eftersom det finns en stark färg, solubilizes väl i lipider, har försumbar interaktion med omgivande vävnader och är mindre lösligt i lösningsmedlet än i lipider. Den har en excitation och utsläpp maxima 450-500 och 520 nm, respektive1. När Nilen röd-färgade C. elegans är ses för grön fluorescens, kan diskreta lipid organ observeras i hela tarmen och andra vävnader antingen i kluster eller jämnt spridda, beroende på djurets genotyp eller experimentell behandling 7.
Olja röd O är en lysochrome, fettlösligt färgämne som används för att färga triglycerider och lipoproteiner. Det kallas en azofärg eftersom dess kemiska struktur innehåller två azogrupper bifogas tre aromatiska ringar. Det är svårt att jonisera, som återger det lättlösligt i lipider. Dess fläck färg är röd och dess ljus absorptionsmaximum är 518 nm 3. C. elegans målat med olja röd O Visa röda lipid droppar som sticker ut mot djurets transparent kropp, vilket underlättar kvalitativ bedömning av lipid fördelning mellan olika vävnader6.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Imager.M2m Microscope</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Fluorescence microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ERC5s camera</td>
			<td>Axiocam</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Color-capable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MRm camera</td>
			<td>Axiocam</td>
			<td>n/a</td>
			<td>Fluorescence-capable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nile red</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>N1142</td>
			<td>Lipid Stain</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oil red O</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>A12989</td>
			<td>Lipid Stain</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Thermo Fisher</td>
			<td>D1306</td>
			<td>DNA stain</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropyl Alcohol</td>
			<td>BDH</td>
			<td>BDH1133-1LP</td>
			<td>Fixative solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.2 &#181;m seterile syringe filter</td>
			<td>VWR</td>
			<td>28145-477</td>
			<td>Cellulose acetate filter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge 5430</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5428000015</td>
			<td>Centrifuge</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaker Rotisserie</td>
			<td>Lab Quake</td>
			<td>400110Q</td>
			<td>Shaker</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube Rotator</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10136-084</td>
			<td>Rotator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K2HPO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7758-11-4</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KH2PO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7778-77-0</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgSO4</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>7786-30-3</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>10035-04-8</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>7647-14-5</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cholesterol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>57-88-5</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptone</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>211677</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agar</td>
			<td>Teknova</td>
			<td>L9110</td>
			<td>NGM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LB media</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>L3147</td>
			<td>Bacterial growth</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

quantification of lipid abundance and evaluation of lipid distribution in caenorhabditis elegans by nile red and oil red o staining

Caenorhabditis elegans är en enastående modellorganism där studera lipidmetabolismen och energi homeostas. Många av dess lipid gener bevaras hos människor och är associerade med metabolt syndrom eller andra sjukdomar. Undersökning av lipid ackumulering i denna organism kan utföras av fixativ färgämnen eller etikett-fria metoder. Fixativ fläckar som Nilen röd och olja röd O billig, pålitlig sätt att kvantitativt mäta lipidnivåer och kvalitativt iaktta lipid distribution i vävnader, respektive. Dessutom tillåta dessa fläckar för high-throughput screening av olika lipid metabolism gener och vägar. Dessutom sin hydrofoba natur underlättar lipidlöslighet, minskar samspel med omgivande vävnader och förhindrar dissociation i lösningsmedlet. Även om dessa metoder är effektiva på att undersöka allmänna fettinnehållet, ger de inte detaljerad information om den kemiska sammansättningen och mångfalden av lipid insättningar. För dessa ändamål, etikett-fria metoder såsom GC-MS och bilar mikroskopi är bättre lämpade, sina kostnader utan hinder.

SKN-1 är en bZip, cytoprotektiva transkriptionsfaktor som delar homologi med däggdjur NRF2 och har visat att medla fettsyra oxidation. Beroende på glukos koncentration i kosten Visa worms med ett konstitutivt aktiverade skn-1 -allelen olika lipidnivåer när färgas med Nile röd7. Figur 1A -C visar aktiverat skn-1 djur utsätts för förhållanden som leder till ökande lipidnivåer. NR fluorescen...

Watch this Scientific Journal Video about Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining at JoVE.com

Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining

Kvantifiering av Lipid överflöd och utvärdering av Lipid Distribution i Caenorhabditis elegans av Nile rött och olja röd O färgning

Nile röda färgning av fasta Caenorhabditis elegans är en metod för kvantitativ mätning av neutrala lipid insättningar, medan olja röd O färgning underlättar kvalitativ bedömning av lipid fördelning mellan vävnader.

Caenorhabditis elegans is an exceptional model organism in which to study lipid metabolism and energy homeostasis. Many of its lipid genes are conserved ...

The overall goal of these staining methods is to quantify intracellular lipid abundance and evaluate lipid distribution among different tissues. This method can help answer key questions in lipid metabolism such as how are lipids genetically and biochemically regulated and which disease states this regulate lipid homeostasis. The main advantage of this technique is that it is relatively simple and inexpensive to carry out.To carry out Nile Red lipid staining, plate worms on Nematode Growth Medium or NGM seeded with late log OP50 E.coli and grow the worms at 20 degrees Celsius to early L4 stage. Wash the worms with one millimeter of PBST solution and transfer the worm suspension to a 1.5 milliliter microfuge tube. Centrifuge the worms at 560 times gravity for one minute.Then remove the supernatant and repeat the PBST wash until the E.coli is cleared from the suspension. Next, to the worm pellet, add 100 microliters of 40%isopropanol or 60%for ORO staining and incubate the sample at room temperature for three minutes. The addition of isopropanol is crucial for proper permeabilization of the worms before staining.Centrifuge the worms at 560 times gravity for one minute and remove the supernatant without disrupting the worm pellet. It is important to minimize light exposure during the centrifugation steps. Now while in the dark, add 600 microliters of previously prepared NR working solution to each sample.Invert the tubes three times and fully mix the worms and solution. Then incubate the sample in the dark at room temperature for two hours. Following incubation, centrifuge the worms and remove the supernatant.Then add 600 microliters of PBST and incubate the samples in the dark for 30 minutes to remove the excess NR stain. After spinning the samples again as before, remove all but approximately 50 microliters of supernatant and resuspend the worm pellet in the remaining solution. To prepare slides for imaging, pipette five microliters of worm suspension onto a microscope slide and carefully apply a coverslip to avoid trapping any air bubbles.Using the FITC GFP channel to image NR stained worms and trying different exposure times, image the worms at five-fold magnification to capture several animals per field of view. Then switch to 10-fold magnification for better quantification of individual worms. To quantify the images, upload the micrographs to ImageJ.In the image pull down menu, adjust the brightness, contrast of the image deck, and propagate changes to all the images by clicking apply. Use the polygon selection tool to delineate each imaged worm and under the analysis pull down menu, use the measure function to qualify fluorescence intensity emitted by NR.For each image, measure five background locations and calculate the average background fluorescence intensity. Add 600 microliters of Oil Red O or ORO working solution to each sample and invert the tube three times to mix the worms well and the ORO.Rotate the samples at 30 RPM and RT for two hours. Centrifuge the samples at 560 times gravity for one minute and aspirate all the supernatant except for 100 microliters. Then use 600 microliters of PBST to resuspend the samples and rotate the tubes at 30 RPM for 30 minutes to remove excess ORO staining.To better distinguish the location of the animals'germ line in the intestinal cells, stain nuclei by adding one microliter of DAPI for every one milliliter of ORO working solution. Then to prepare slides for imaging, resuspend the worms and the remaining supernatant and mix the solution well. Put five microliters of worm suspension on a microscope slide and carefully apply a coverslip ensuring that no air bubbles form.To image the ORO stained worms, use a color capable camera at five-fold magnification to image several worms in one field of view. Then switch to 10-fold magnification for better examination of individual worms. Finally, after uploading the images to ImageJ and creating an image deck according to the text protocol, categorize the images according to lipid accumulation throughout the animal's body or in specific tissues.SKN-1 shares homology with mammalian Nrf2 and has been shown to mediate fatty acid oxidation. This figure shows activated SKN-1 animals exposed to conditions that lead to increasing lipid levels. As seen in these images, NR fluorescence captured using the FITC GFP channel is prominent along the intestine, but is dimmer in the head, tail, and intestinal lumen.While it is easy to categorize the worms according to the presence or absence of Age-dependent Somatic Depletion of Fat or ASDF, it may be difficult to identify animals with intermediate fat loss. Compared to non-ASDF animals, which show bright red staining throughout the body with few translucent areas, ASDF worms exhibit noticeable fat depletion in intestinal cells. Animals in the process of developing ASDF often show translucent spots where most of the fat loss eventually occur.Moreover, ASDF worms may still feature bright red staining in the head and tail regions because the phenotype is not defined by complete somatic fat loss, but by extensive fat depletion relative to non-aged animals. Once mastered, this technique can be done in three hours plus imaging time if it is performed properly. While attempting this procedure, it's important to remember to wash and permeabilize worms no more than 30 minutes before staining.Following this procedure, other methods like CARS microscopy can be performed to compare the type of lipid species each technology identifies and to determine which method is better suited for specific types of questions. After watching this video, you should have a good understanding of how to quantify lipids and evaluate lipid distribution in the worms using Nile Red and Oil Red O staining, followed by ImageJ micrograph analysis.

Research

JoVE Journal

Biology

Quantification of Lipid Abundance and Evaluation of Lipid Distribution in Caenorhabditis elegans by Nile Red and Oil Red O Staining

Evaluation of the Spatial Distribution of &gamma;H2AX following Ionizing Radiation

Evaluation of the Spatial Distribution of &#947;H2AX following Ionizing Radiation

Utvärdering av den geografiska fördelningen av γH2AX efter joniserande strålning

An early molecular response to DNA double-strand breaks (DSBs) is phosphorylation of the Ser-139 residue within the terminal SQEY motif of the histone ...

Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation

Basic Caenorhabditis elegans Methods: Synchronization and Observation

Basisk<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Metoder: Synkronisering och miljöövervakning

Research into the molecular and developmental biology of the nematode Caenorhabditis elegans was begun in the early seventies by Sydney Brenner and it has ...

Measurement of Energy Metabolism in Explanted Retinal Tissue Using Extracellular Flux Analysis

Mätning av energimetabolism i explanterad retinala vävnaden med hjälp av extracellulära Flux analys

High acuity vision is a heavily energy-consuming process, and the retina has developed several unique adaptations to precisely meet such demands while ...

Dissection and Lipid Droplet Staining of Oenocytes in Drosophila Larvae

Dissection and Lipid Droplet Staining of Oenocytes in Drosophila Larvae

Dissektion och lipid dropp färgning av Oenocyter i Drosophila larver

Lipids are essential for animal development and physiological homeostasis. Dysregulation of lipid metabolism results in various developmental defects and ...

Isolation and Characterization of Adult Cardiac Fibroblasts and Myofibroblasts

Isolering och karakterisering av vuxna hjärtfibroblaster och Myofibroblaster

Cardiac fibrosis in response to injury is a physiological response to wound healing. Efforts have been made to study and target fibroblast subtypes that ...

Label-Free Imaging of Lipid Storage Dynamics in Caenorhabditis elegans using Stimulated Raman Scattering Microscopy

Label-Free Imaging of Lipid Storage Dynamics in Caenorhabditis elegans using Stimulated Raman Scattering Microscopy

Etikettfri bildbehandling av Lipid Storage Dynamics i Caenorhabditis elegans med stimulerad Raman Scattering Microscopy

Lipid metabolism is a fundamental physiological process necessary for cellular and organism health. Dysregulation of lipid metabolism often elicits ...

Automating Aggregate Quantification in Caenorhabditis elegans

Automating Aggregate Quantification in Caenorhabditis elegans

Automatisera aggregatkvantifiering i Caenorhabditis elegans

A rise in the prevalence of neurodegenerative protein conformational diseases (PCDs) has fostered a great interest in this subject over the years. This ...

Lipid Supplementation for Longevity and Gene Transcriptional Analysis in Caenorhabditis elegans

Lipid Supplementation for Longevity and Gene Transcriptional Analysis in Caenorhabditis elegans

Lipidtillskott för livslängd och gentranskriptionsanalys i Caenorhabditis elegans

Aging is a complex process characterized by progressive physiological changes resulting from both environmental and genetic contributions. Lipids are ...

Levande cellavbildning av lipiddroppstorlek och fusion med hjälp av Oil Red O och BODIPY

Evaluation of Lipid Droplet Size and Fusion in Bovine Hepatic Cells

Författare Spotlight: Utvärdering av lipiddroppstorlek och fusion i bovina leverceller  

Utvärdering av lipiddroppstorlek och fusion i bovina leverceller

Lipid droplets (LDs) are organelles that play an important role in lipid metabolism and neutral lipid storage in cells. They are associated with a variety ...