Name: transcranial direct current stimulation (tdcs) in mice
Uploaded: 2018-09-23T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Transcranial Direct Current Stimulation tDCS in Mice at JoVE.com

Ringraziamo il signor Rodrigo de Souza per assistenza nel mantenere colonie del mouse. L.A.V.M è un postdoctoral fellow CAPES. Questo lavoro è stato supportato dalla concessione PRONEX (FAPEMIG: APQ-00476-14).

Individualmente-ospitato maschio adulto (8-12 settimane) topi C57BL/6 sono stati utilizzati in questo esperimento. Gli animali hanno ricevuto cure adeguate prima, durante e dopo le procedure sperimentali con cibo e acqua ad libitum. Tutte le procedure sono state approvate dal comitato di etica animale dall'Università federale di Minas Gerais (protocollo numero 59/2014).
1. posizionamento elettrodo
<ol><li>
Sedativo e fissazione dell'animale sul apparato stereotassi...

<ol>
	<li>Filmer, H. L., Dux, P. E., Mattingley, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applications+of+transcranial+direct+current+stimulation+for+understanding+brain+function.">Applications of transcranial direct current stimulation for understanding brain function.</a> Trends in Neurosciences. 37 (12), 742-753 (2014).</li><li>Nitsche, M. A., Paulus, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sustained+excitability+elevations+induced+by+transcranial+DC+motor+cortex+stimulation+in+humans.">Sustained excitability elevations induced by transcranial DC motor cortex stimulation in humans.</a> Neurology. 57 (10), 1899-1901 (2001).</li><li>Kronberg, G., Bridi, M., Abel, T., Bikson, M., Parra, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+Current+Stimulation+Modulates+LTP+and+LTD:+Activity+Dependence+and+Dendritic+Effects.">Direct Current Stimulation Modulates LTP and LTD: Activity Dependence and Dendritic Effects.</a> Brain Stimulation. 10 (1), 51-58 (2017).</li><li>Pelletier, S. J., Cicchetti, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+and+Molecular+Mechanisms+of+Action+of+Transcranial+Direct+Current+Stimulation:+Evidence+from+In+Vitro+and+In+Vivo+Models.">Cellular and Molecular Mechanisms of Action of Transcranial Direct Current Stimulation: Evidence from In Vitro and In Vivo Models.</a> International Journal of Neuropsychopharmacology. 18 (2), pyu047 (2015).</li><li>Chang, M. C., Kim, D. Y., Park, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhancement+of+cortical+excitability+and+lower+limb+motor+function+in+patients+with+stroke+by+transcranial+direct+current+stimulation.">Enhancement of cortical excitability and lower limb motor function in patients with stroke by transcranial direct current stimulation.</a> Brain Stimulation. 8 (3), 561-566 (2015).</li><li>Lefaucheur, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evidence-based+guidelines+on+the+therapeutic+use+of+transcranial+direct+current+stimulation+(tDCS).">Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS).</a> Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).</li><li>Monai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcium+imaging+reveals+glial+involvement+in+transcranial+direct+current+stimulation-induced+plasticity+in+mouse+brain.">Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain.</a> Nature Communications. 7, 11100 (2016).</li><li>Marquez-Ruiz, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcranial+direct-current+stimulation+modulates+synaptic+mechanisms+involved+in+associative+learning+in+behaving+rabbits.">Transcranial direct-current stimulation modulates synaptic mechanisms involved in associative learning in behaving rabbits.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 109, 6710-6715 (2012).</li><li>Jackson, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+transcranial+direct+current+stimulation:+Methods+and+mechanisms.">Animal models of transcranial direct current stimulation: Methods and mechanisms.</a> Clinical Neurophysiology. 127 (11), 3425-3454 (2016).</li><li>Cambiaghi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brain+transcranial+direct+current+stimulation+modulates+motor+excitability+in+mice.">Brain transcranial direct current stimulation modulates motor excitability in mice.</a> The European journal of neuroscience. 31 (4), 704-709 (2010).</li><li>Monte-Silva, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+late+LTP-like+plasticity+in+the+human+motor+cortex+by+repeated+non-invasive+brain+stimulation.">Induction of late LTP-like plasticity in the human motor cortex by repeated non-invasive brain stimulation.</a> Brain Stimulation. 6 (3), 424-432 (2013).</li><li>San-Juan, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcranial+Direct+Current+Stimulation+in+Mesial+Temporal+Lobe+Epilepsy+and+Hippocampal+Sclerosis.">Transcranial Direct Current Stimulation in Mesial Temporal Lobe Epilepsy and Hippocampal Sclerosis.</a> Brain Stimulation. 10 (1), 28-35 (2017).</li><li>Brunoni, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcranial+direct+current+stimulation+(tDCS)+in+unipolar+vs.+bipolar+depressive+disorder.">Transcranial direct current stimulation (tDCS) in unipolar vs. bipolar depressive disorder.</a> Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 35 (1), 96-101 (2011).</li><li>Brunoni, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Trial+of+Electrical+Direct-Current+Therapy+versus+Escitalopram+for+Depression.">Trial of Electrical Direct-Current Therapy versus Escitalopram for Depression.</a> New England Journal of Medicine. 376 (26), 2523-2533 (2017).</li><li>Boggio, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+visual+memory+enhancement+after+direct+current+stimulation+in+Alzheimer's+disease.">Prolonged visual memory enhancement after direct current stimulation in Alzheimer's disease.</a> Brain Stimulation. 5 (3), 223-230 (2012).</li><li>Cosentino, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anodal+tDCS+of+the+swallowing+motor+cortex+for+treatment+of+dysphagia+in+multiple+sclerosis:+a+pilot+open-label+study.">Anodal tDCS of the swallowing motor cortex for treatment of dysphagia in multiple sclerosis: a pilot open-label study.</a> Neurological Sciences. , 7-9 (2018).</li><li>Kaski, D., Dominguez, R. O., Allum, J. H., Islam, A. F., Bronstein, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combining+physical+training+with+transcranial+direct+current+stimulation+to+improve+gait+in+Parkinson's+disease:+A+pilot+randomized+controlled+study.">Combining physical training with transcranial direct current stimulation to improve gait in Parkinson's disease: A pilot randomized controlled study.</a> Clinical Rehabilitation. 28 (11), 1115-1124 (2014).</li><li>Monai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcium+imaging+reveals+glial+involvement+in+transcranial+direct+current+stimulation-induced+plasticity+in+mouse+brain.">Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain.</a> Nature Communications. 7, 11100 (2016).</li><li>Fritsch, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Direct+current+stimulation+promotes+BDNF-dependent+synaptic+plasticity:+potential+implications+for+motor+learning.">Direct current stimulation promotes BDNF-dependent synaptic plasticity: potential implications for motor learning.</a> Neuron. 66 (2), 198-204 (2010).</li><li>Winkler, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+and+Motor+Systems+Anodal+Transcranial+Direct+Current+Stimulation+Enhances+Survival+and+Integration+of+Dopaminergic+Cell+Transplants+in+a+Rat+Parkinson+Model.">Sensory and Motor Systems Anodal Transcranial Direct Current Stimulation Enhances Survival and Integration of Dopaminergic Cell Transplants in a Rat Parkinson Model.</a> New Research. 4 (5), 17-63 (2017).</li><li>Nasehi, M., Khani-Abyaneh, M., Ebrahimi-Ghiri, M., Zarrindast, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+left+frontal+transcranial+direct-current+stimulation+on+propranolol-induced+fear+memory+acquisition+and+consolidation+deficits.">The effect of left frontal transcranial direct-current stimulation on propranolol-induced fear memory acquisition and consolidation deficits.</a> Behavioural Brain Research. 331 (May), 76-83 (2017).</li><li>Souza, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurobiological+mechanisms+of+antiallodynic+effect+of+transcranial+direct+current+stimulation+(tDCS)+in+a+mice+model+of+neuropathic+pain.">Neurobiological mechanisms of antiallodynic effect of transcranial direct current stimulation (tDCS) in a mice model of neuropathic pain.</a> Brain Research. 1682 (14-23), (2018).</li><li>Woods, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technical+guide+to+tDCS,+and+related+non-invasive+brain+stimulation+tools.">A technical guide to tDCS, and related non-invasive brain stimulation tools.</a> Clinical Neurophysiology. 127 (2), 1031-1048 (2016).</li><li>Cogan, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+damage+thresholds+during+therapeutic+electrical+stimulation.">Tissue damage thresholds during therapeutic electrical stimulation.</a> Journal of Neural Engineering. 13, 2 (2017).</li><li>Podda, M. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anodal+transcranial+direct+current+stimulation+boosts+synaptic+plasticity+and+memory+in+mice+via+epigenetic+regulation+of+Bdnf+expression.">Anodal transcranial direct current stimulation boosts synaptic plasticity and memory in mice via epigenetic regulation of Bdnf expression.</a> Scientific reports. 6 (October 2015), 22180 (2015).</li></ol>

Negli ultimi anni, tecniche di neurostimolazione sono stati introdotti pratica clinica come una procedura di promessa per il trattamento di disordini neuropsichiatrici23. Per ridurre il vincolo imposto dalla mancanza di conoscenza dei meccanismi della neurostimolazione, abbiamo presentato qui un modello di topo tDCS portando un elettrodo che può avere come bersaglio regioni del cervello. Poiché l'elettrodo è cronicamente impiantabile, questo modello animale consente l'indagine degli effetti bio...

La stimolazione transcranica corrente continua (tDCS) è una tecnica non invasiva, a basso costo, terapeutica, che si concentra sulla modulazione neuronale attraverso l'uso di correnti continue di bassa intensità1. Ci sono attualmente due configurazioni (anodica e cathodal) per tDCS. Mentre la stimolazione anodica esercita un campo elettrico corrente troppo debole per attivare i potenziali di azione, elettrofisiologia studi hanno dimostrato che questo metodo produce i cambiamenti nella plasticità sinaptica2. Ad esempio, prova indica che quel tDCS induce effetti di potenziamento (LTP) a lungo termine come aumentato picco di ampiezza dei potenziali postsinaptici eccitatori3,4 e la modulazione dell'eccitabilità corticale5.
Al contrario, cathodal stimolazione induce l'inibizione, conseguente membrana hyperpolarization6. Un'ipotesi per questo meccanismo si basa sui risultati fisiologici dove tDCS è descritto per modulare la frequenza del potenziale d'azione e durata in un neurone corpo3. In particolare, questo effetto non evocano direttamente i potenziali di azione, anche se può spostare la soglia di depolarizzazione e facilitare o ostacolare il firing neuronale7. Queste contrastanti effetti sono state dimostrate in precedenza. Per esempio, la stimolazione anodica e cathodal prodotto effetti opposti nelle risposte condizionate registrate tramite attività elettromiografica in conigli8. Tuttavia, gli studi hanno anche dimostrato che prolungata stimolazione anodica sessioni potrebbero diminuire eccitabilità, mentre l'aumento cathodal correnti può portare all'eccitabilità, presentando self-contrastanti effetti3.
Stimoli sia anodica e cathodal aggregano l'uso di coppie di elettrodi. Ad esempio, nella stimolazione anodica, "attivo" o "anodo" elettrodo viene posizionato sopra la regione del cervello per essere modulata considerando che l'elettrodo "riferimento" o "catodo" è situato in una regione dove l'effetto della corrente viene considerato insignificante9. Nella cathodal stimolazione, disposizione dell'elettrodo è invertito. L'intensità di stimolazione per tDCS efficace dipende l'intensità di corrente e dimensioni degli elettrodi, che interessano l'elettrico campo diversamente10. Negli studi pubblicati, l'intensità di corrente medio è tra 0,10 a 2.0 mA e 0,1 mA a 0,8 mA per umani e topi, rispettivamente6,11. Anche se la dimensione degli elettrodi di 35cm2 viene in genere utilizzata in esseri umani, non c'è alcuna comprensione corretta per quanto riguarda le dimensioni degli elettrodi per roditori e un'indagine più approfondita è necessaria6.
tDCS è stato proposto negli studi clinici con il tentativo di offrire un trattamento alternativo o complementare per parecchi disordini neurologici e neuropsichiatrici11 come epilessia12, disturbo bipolare13, colpo5 , major depressione14, morbo di Alzheimer15,16 di sclerosi multipla e morbo di Parkinson17. Nonostante la crescente interesse in tDCS e suo uso in studi clinici, cellular dettagliate e alterazioni molecolari evocate nel tessuto cerebrale, breve ed effetti di lunga durata, nonché i risultati comportamentali, sono ancora per essere più profondamente studiato18, 19. Poiché un approccio umano diretto a studiare accuratamente tDCS non è praticabile, l'uso di un modello animale di tDCS può offrire preziose intuizioni gli eventi cellulari e molecolari alla base i meccanismi terapeutici di tDCS a causa della accessibilità per la tessuto cerebrale dell'animale.
Prova disponibile è limitata per quanto riguarda modelli tDCS nei topi. La maggior parte dei modelli segnalati utilizzato diversi layout impiantare, dimensioni degli elettrodi e materiali. Per esempio, Winkler et al. (2017) impiantato la testa dell'elettrodo (Ag/AgCl, 4 mm di diametro) riempito con soluzione fisiologica e fissato al cranio con viti e cemento acrilico20. Diverso dal nostro approccio, loro l'elettrodo è stato impiantato (platino, 20 x 1,5 mm). Nasehi et al. (2017) ha utilizzato una procedura molto simile alla nostra, anche se l'elettrodo toracico è stata effettuata in una spugna imbevuta di soluzione fisiologica (carbonio riempito, 9,5 cm2)21. Un altro studio impiantati entrambi gli elettrodi nella testa dell'animale, che è stato raggiunto utilizzando piastre fisse e che coprono la testa dell'animale con un conduttore di idrogel22. Qui, descriviamo un modello murino di tDCS che utilizza un elettrodo cronicamente impiantato attraverso semplice installazione tDCS e procedure chirurgica (Figura 1).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1152px;" width="1152">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:457px;">BD Ultra-Fine 50U Syringe</td>
			<td style="width:175px;">BD</td>
			<td style="width:101px;">10033430026</td>
			<td style="width:419px;">For intraperitonially injection.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Shaver (Philips Multigroom)</td>
			<td>Philips (Brazil)</td>
			<td>QG3340/16</td>
			<td style="width:419px;">For surgical site trimming.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical Equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:419px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Model 940 Small Animal Stereotaxic Instrument with Digital Display Console</td>
			<td>KOPF</td>
			<td>940</td>
			<td style="width:419px;">For animal surgical restriction and positioning.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Model 922 Non-Rupture 60 Degree Tip Ear Bars</td>
			<td>KOPF</td>
			<td>922</td>
			<td style="width:419px;">For animal surgical restriction and positioning.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cannula Holder</td>
			<td>KOPF</td>
			<td>1766-AP</td>
			<td style="width:419px;">For implant positioning.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Precision Stereo Zoom Binocular Microscope (III) on Boom Stand</td>
			<td>WPI</td>
			<td>PZMIII-BS</td>
			<td style="width:419px;">For bregma localization and implant positioning.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Temperature Control System Model&#160;</td>
			<td>KOPF</td>
			<td>TCAT-2LV</td>
			<td style="width:419px;">For animal thermal control.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cold Light Source&#160;</td>
			<td>WPI</td>
			<td>WA-12633</td>
			<td style="width:419px;">For focal brightness</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Tabletop Laboratory Animal Anesthesia System with Scavenging</td>
			<td>VetEquip</td>
			<td>901820</td>
			<td style="width:419px;">For isoflurane delivery and safety.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">VaporGuard Activated Charcoal Adsorption Filter</td>
			<td>VetEquip</td>
			<td>931401</td>
			<td style="width:419px;">Delivery system safety measures.&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Model 923-B Mouse Gas Anesthesia Head Holder</td>
			<td>KOPF</td>
			<td>923-B</td>
			<td style="width:419px;">For animal restriction and O2 and isoflurane delivery.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Oxygen regulator, E-cylinder&#160;</td>
			<td>VetEquip</td>
			<td>901305</td>
			<td style="width:419px;">For O2 regulation and delivery.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Oxygen hose &#8211; green&#160;</td>
			<td>VetEquip</td>
			<td>931503</td>
			<td style="width:419px;">For O2 and isoflurane delivery.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Infrared Sterilizer 800 &#186;C</td>
			<td>Marconi</td>
			<td>MA1201</td>
			<td style="width:419px;">For instrument sterilization.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical Instruments</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:419px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fine Scissors - ToughCut</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14058-11</td>
			<td style="width:419px;">For incision.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical Hooks</td>
			<td>INJEX</td>
			<td>1636</td>
			<td style="width:419px;">In House Fabricated - Used to clear the surgical site from skin and fur.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Standard Tweezers or Forceps</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td style="width:419px;">For skin grasping.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical Consumables</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:419px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Vetbond</td>
			<td>3M</td>
			<td>SC-361931</td>
			<td style="width:419px;">For incision closing.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cement and Catalyzer KIT (Duralay)</td>
			<td>Reliance</td>
			<td>2OZ</td>
			<td style="width:419px;">For implant fixation.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile Cotton Swabs (Autoclaved)</td>
			<td>JnJ</td>
			<td>75U</td>
			<td style="width:419px;">For surgical site antisepsis.&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">24 Well Plate (Tissue Culture Plate)</td>
			<td>SARSTEDT</td>
			<td>831,836</td>
			<td style="width:419px;">For cement preparation.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Application Brush</td>
			<td>parkell</td>
			<td>S286</td>
			<td style="width:419px;">For cement mixing and application.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pharmaceutics</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:419px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Xylazin (ANASEDAN 2%)</td>
			<td>Ceva Pharmaceutical (Brazil)</td>
			<td>P10160</td>
			<td style="width:419px;">For anesthesia induction.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ketamine (DOPALEN 10%)</td>
			<td>Ceva Pharmaceutical (Brazil)</td>
			<td>P30101</td>
			<td style="width:419px;">For anesthesia induction.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isoflurane (100%)</td>
			<td>Crist&#225;lia (Brazil)</td>
			<td>100ML</td>
			<td style="width:419px;">For anesthesia maintenance.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Lidocaine (XYLESTESIN 5%)</td>
			<td>Cristal Pharma</td>
			<td>-</td>
			<td style="width:419px;">For post-surgical care.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ketoprofen (PROFENID 100 mg)</td>
			<td>Sanofi Aventis</td>
			<td>20ML</td>
			<td style="width:419px;">For post-surgical care.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ringer&#39;s Lactate Solution</td>
			<td>SANOBIOL LAB</td>
			<td>############</td>
			<td style="width:419px;">For post-surgical care.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">TobraDex (Dexamethasone 1 mg/g)</td>
			<td>Alcon</td>
			<td>631</td>
			<td style="width:419px;">For eye lubrification and protection.&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Stimulation</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:419px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Animal Transcranial Stimulator</td>
			<td>Soterix Medical</td>
			<td>2100</td>
			<td style="width:419px;">For current generation.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pin-type electrode Holder (Cylindrical Holder Base)</td>
			<td>Soterix Medical</td>
			<td>2100</td>
			<td style="width:419px;">Electrode support (Implant).</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pin-type electrode (Ag/AgCl)</td>
			<td>Soterix Medical</td>
			<td>2100</td>
			<td style="width:419px;">For current delivery (electrode).&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:23px;">Pin-type electrode cap</td>
			<td>Soterix Medical</td>
			<td>2100</td>
			<td style="width:419px;">For implant protection.</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:23px;">Body Electrode (Ag/AgCl Coated)</td>
			<td>Soterix Medical</td>
			<td>2100</td>
			<td style="width:419px;">For current delivery (electrode).&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Saline Solution (0.9%)</td>
			<td>FarmaX</td>
			<td>############</td>
			<td style="width:419px;">Conducting medium for current delivery.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Standard Tweezers or Forceps</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td style="width:419px;">For tDCS setup.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:457px;">Real Time Polymerase Chain Reaction</td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td style="width:101px;"></td>
			<td style="width:419px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:457px;">BioRad CFX96 Real Time System</td>
			<td style="width:175px;">BioRad</td>
			<td style="width:101px;">C1000</td>
			<td style="width:419px;">For qPCR</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">SsoAdvancedTM Universal SYBR Green Supermix (5 X 1mL)</td>
			<td style="width:175px;">BioRad</td>
			<td>1725271</td>
			<td style="width:419px;">For qPCR</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Hard Shell PCR Plates PCT COM 50 p/ CFX96</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>HSP9601</td>
			<td style="width:419px;">For qPCR</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Microseal &#34;B&#34; seal pct c/ 100</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>MSB1001</td>
			<td style="width:419px;">For qPCR</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

transcranial direct current stimulation (tdcs) in mice

La stimolazione transcranica corrente continua (tDCS) è una tecnica non invasiva neuromodulazione proposta come un trattamento alternativo o complementare per parecchie malattie neuropsichiatriche. Gli effetti biologici di tDCS completamente non sono capiti, che in parte si spiega a causa della difficoltà nell'ottenere il tessuto cerebrale umano. Questo protocollo descrive un modello di topo tDCS che utilizza un elettrodo cronicamente impiantato permettendo lo studio degli effetti biologici di tDCS duraturo. In questo modello sperimentale, tDCS cambia l'espressione genica corticale e offre un importante contributo alla comprensione delle motivazioni per il suo uso terapeutico.

Il protocollo chirurgico ha presentato la stabilità a lungo termine dell'impianto per almeno un mese, con nessun segnali infiammatori nel sito stimolato né qualsiasi altro effetto indesiderato. Tutti gli animali sono sopravvissuti le sessioni chirurgiche di procedura e tDCS (n = 8). In questo esperimento, tDCS gli impianti sono stati posizionati sopra le cortecce M1 e M2 (+1,0 mm anteriore-posteriore e laterale di 0.0 mm al bregma). Una settimana più tardi, tDCS (n = 3-4) e sham (n = 3...

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Transcranial Direct Current Stimulation tDCS in Mice

La stimolazione transcranica corrente continua (tDCS) è una tecnica terapeutica proposta per il trattamento di malattie psichiatriche. Un modello animale è essenziale per comprendere le specifiche alterazioni biologiche evocate da TDC. Questo protocollo descrive un modello di topo tDCS che utilizza un elettrodo cronicamente impiantato.

Stimolazione transcranica corrente continua (tDCS) in topi

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a non-invasive neuromodulation technique proposed as an alternative or complementary treatment for ...

La procedura Alvar Gaaud è applicare la stimolazione della corrente continua transcranica nei topi. Ciò si ottiene generando basse correnti intense da un generatore di corrente diretta e inviandolo direttamente all'animale attraverso elettrodi. tDCS è stato studiato come alternativa terapeutica non farmacologica per i principali disturbi psichiatrici nell'uomo, come depressione, schizofrenia, morbo di Alzheimer, AHDH e autismo.Inoltre, tDCS è una tecnica unica grazie al suo basso costo, facilità d'uso e profilo non invasivo. Tuttavia, gli effetti biologici del tDCS non sono completamente compresi, e non c'è consenso riguardo ai parametri di stimolazione, come l'intensità attuale, la durata e la piastrella delle aree cerebrali. Pertanto, l'uso di ordini minimi è essenziale per uno studio approfondito di tali meccanismi, che porterà a una migliore comprensione dell'efficacia clinica del tDCS attraverso l'acquisizione e l'analisi dei dati cellulari e molecolari comportamentali.Attualmente ci sono due configurazioni di elettrodi per tDCS, indicate come stimolazione anodale e catodale. Nella stimolazione anodale, le correnti vengono consegnate direttamente alla testa dell'animale, attraverso il corpo dell'animale e nel catodo posizionato sul torace dell'animale. Mentre nella stimolazione catodale la corrente entra attraverso il torace dell'animale, viaggia fino alla sua testa e nel catodo.In entrambe le situazioni un generatore di corrente controlla l'intensità di corrente e la durata della stimolazione. Durante la produzione di una qualità di contatto e l'inferenza di feedback. Esistono molte configurazioni diverse per il posizionamento attivo.Pertanto, tutti gli assi tridimensionali dovrebbero essere presi in considerazione. In questo protocollo un elettrodo a testa è stato impiantato di un millimetro in bregma radicato, sulla linea laterale e centrale del cranio, e l'elettrodo del corpo è stato posizionato sul petto dell'animale. A causa di una simulazione di breve periodo, è stato raccomandato di utilizzare un'azione rapida e un'anestesia a breve termine, come l'isoflurane vaporizzato.Questa procedura si articole in due fasi critiche. Posizionamento degli elettrodi e stimolazione della corrente continua transcranica. Gli strumenti chirurgici sono stati sterilizzati con pre-manutenzione a 440 gradi Celsius.I tamponi di cotone sono stati autoclavati a 20 libbre per pollice quadrato a 121 gradi Celsius per 20 minuti. Ruotare il controller della piattaforma termica a 37 gradi Celsius. Pesare l'animale e calcolare la dose appropriata per l'induzione dell'anestesia.Utilizzare una miscela di chetamina e xiloazina a una dose di 100 milligrammi per chilogrammo di ketamina e 8 milligrammi per chilogrammo di xiloazina. Ago taglia 31G. L'animale dovrebbe addormentarsi entro 2-3 minuti.Utilizzare un rasoio elettrico o un rasoio per radere il sito chirurgico. Posizionare l'animale sull'apparato stereotassico sopra la piastra di riscaldamento preriscaldata. Tieni la testa dell'animale e inserisci le barre dell'orecchio della punta in ciascuna delle orecchie dell'animale, per fissarlo alla piattaforma sterotaxica.Verifica che non ci sia uno spostamento laterale della testa e poco movimento verticale spostando lentamente la testa dell'animale. Far scorrere delicatamente la maschera di anestesia sul naso del mouse e fissare in posizione stringendo la vite. Applicare un unguento per gli occhi sugli occhi dell'animale per evitare l'essiccazione corneale durante l'intervento chirurgico.Utilizzare un batuffolo di cotone per preparare il sito chirurgico con tre scrub alternati di iodio di povidone, o 2%cloroesidina e 70% etinolo. Usa un paio di pinzette per verificare l'anestesia adottare schiacciando leggermente le dita dei piedi dell'animale e verificando le leggi del riflesso generale del pizzico di ritiro del pedo animale. Fai un'incisione di circa tre millimetri posteriore alla linea dell'orecchio dell'animale e fermati nella linea degli occhi.Il sito di incisione deve avere una lunghezza di circa un centimetro per essere abbastanza grande da ricevere l'impianto. Raschiare delicatamente il cranio con un raschietto osseo per migliorare l'aderenza alla colla e al cemento. Questo deve essere fatto leggero con l'intenzione di creare micrograffi.Posizionare con cura ganci chirurgici sulla pelle sciolta per mantenere un campo chirurgico aperto e liberarlo da ostruzioni, come la pelle e una pelliccia. Utilizzare un batuffolo di cotone sterile per asciugare delicatamente il cuoio capelluto dell'animale. Utilizzare un microscopio a dissezione per visualizzare la parte superiore del cranio dell'animale.Attaccare un ago al supporto sterotassico e individuare il bregma. Posizionare l'ago direttamente sopra la testa dell'animale tocca leggermente il bregma. Utilizzate il bregma come riferimento per regolare le coordinate dell'area di interesse.Fissare l'impianto sul supporto stereotassico. Posizionare l'impianto sulla testa dell'animale e abbassarlo lentamente sulla regione di interesse. Utilizzare un ago per stendere una goccia, circa 35 microlitri, di supercolla nello spazio dell'impianto.Spostare lentamente il supporto verso il basso fino a quando non tocca il cranio. Assicurarsi che lo spazio dell'impianto sia completamente a contatto con la superficie. Preparare il cemento chirurgico secondo le istruzioni del produttore.Dopo un posizionamento preciso, applicare tre strati sottili e pari di cemento attraverso il cranio e sulla parte inferiore dell'impianto. Applicare drop per drop utilizzando un pennello dell'applicazione. Gli strati devono formare una struttura a forma di U per un ulteriore supporto strutturale dell'impianto.Lasciare il filo della vite dell'impianto pulito dal cemento per consentire una connessione liscia e senza ostacoli. Lasciare asciugare ogni strato per circa quattro minuti. Dopo l'asciugatura, rimuovere con cura il supporto fino a quando non è completamente staccato dall'impianto.Prestare sempre estrema cautela durante la manipolazione dell'impianto, poiché potrebbe essere accidentalmente distrutto dal cranio dell'animale. Idratare la pelle dell'animale e il sito di incisione con un batuffolo di cotone imbevuto salino. Tagliare la pelle sulla base dell'impianto.Usa un paio di pinzette per riunire il tessuto e chiudi l'incisione con una goccia di colla chirurgica tissutale per punto 2 centimetri di tessuto. Infiltrarsi dall'1 al 2% di lidocaina nel sito di incisione e nei tessuti sottostanti. Idratare l'animale con 500 microlitri di suoneria di lattato contemporaneamente.Posizionare il mouse in una gabbia per casa singola pulita di 37 gradi Celsius pre-riscaldata. Costruisci un piccolo piatto di pellet di cibo umido nella gabbia, per un facile accesso al cibo nelle ore successive. Registra il peso post chirurgico dell'animale.L'animale deve essere somministrato con chetoprofene. 5 milligrammi per chilogrammo contemporaneamente dopo l'intervento chirurgico e nei prossimi due giorni. Assicurarsi che lo stimolatore tDCS sia completamente carico.Collegare i cavi anodo e catodo allo stimolatore tDCS e renderli disponibili vicino al sito di simulazione. Attaccare l'elettrodo di tipo perno al supporto sterotassico. Impostare la piattaforma termica su 37 gradi Celsius.Accendere il flussometro dell'ossigeno sul sistema di anestesia inalazione a 1 litro al minuto. Posizionare il mouse nella camera di induzione dell'anestesia. Accendere il vaporizzatore di isoflurane al 3%Consentire all'animale di subire effetti isoflurani per quattro minuti.Mentre l'animale si trova nella camera di induzione, utilizzare una siringa sterile per riempire l'elettrodo del corpo con una soluzione salina allo 0,9%. Rimuovere l'animale dalla camera di induzione e posizionare il petto sopra l'elettrodo del corpo. Far scorrere delicatamente la maschera di anestesia sul naso del mouse e fissarla in posizione.Abbassare l'uscita dell'isoflurane all'1,5%Riempire l'impianto e l'elettrodo di tipo pin con salina. Attaccali con cura insieme. Regolare il tempo di stimolazione e l'intensità di corrente in base al protocollo.Verificare la qualità del contatto sul sistema tDCS in un secondo momento. Inizia la stimolazione. Osservare la corrente che aumenta per 20 secondi fino al valore selezionato.E mantenendosi al suo posto per il tempo stabilito. Quindi, alla fine della sezione ramping di nuovo verso il basso. Attivare il pulsante dello stinco per controllare.Osservare la corrente che aumenta per 20 secondi fino al valore selezionato. E poi giù uno per il resto del periodo di stimolazione, con una rampa finale al valore selezionato, alla fine, con una rampa consecutiva verso il basso. Una la sezione di stimolazione è completa, trasferisci attentamente l'animale in una gabbia pre-riscaldata di 37 gradi Celsius per 10 minuti.Questo protocollo utilizza tDCS per stimolare la corteccia cerebrale del topo un millimetro anteriore al bregma. Questo grafico mostra l'espressione statistica e genica dopo il protocollo di stimolazione tDCS. Utilizzando un'intensità di corrente di 0,35 milliampere per 10 minuti al giorno.L'impianto tCDS ha presentato self-viable dal primo al quinto giorno senza alcuna differenza significativa tra i giorni nella qualità del contatto. Ci sono una varietà di protocolli di stimolazione tCDS nel cervello modello. I protocolli devono essere scelti in base alle particolarità su cui si basa il vostro esperimento.Area di stimolazione, intensità di corrente, durata della sessione e posizionamento degli elettrodi. In questo particolare protocollo, abbiamo mirato a modulare la corteccia motoria attraverso il nostro tDCS noto con la corrente di 350 microampere per 10 minuti. Dopo aver guardato questo video sarai in grado di eseguire tDCS nei topi.Quando qualcuno pratica un intervento chirurgico può richiedere fino a quattro minuti per animale. È essenziale prendere in considerazione le linee guida per la cura degli animali quando si utilizzano i topi durante l'operazione e si segue la cura post-chirurgica degli animali in modo che gli animali rimangano sani durante lo studio. Si consiglia inoltre di attendere da cinque a sette giorni dopo il posizionamento dell'impianto per eseguire gli esperimenti, poiché la risposta fisiologica dell'animale al trauma può interferire con i risultati biologici.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Transcranial Direct Current Stimulation (tDCS) in Mice

Combining Transcranial Magnetic Stimulation and fMRI to Examine the Default Mode Network

La combinazione di stimolazione magnetica transcranica e fMRI per esaminare il modo predefinito della rete

The default mode network is a group of brain regions that are active when an individual is not focused on the outside world and the brain is at "wakeful ...

Ricerca

Neuroscienze

Electrode Positioning and Montage in Transcranial Direct Current Stimulation

Posizionamento elettrodo e Montage stimolazione transcranica diretta in corrente

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a technique that has been intensively investigated in the past decade as this method offers a ...

Direct-current Stimulation and Multi-electrode Array Recording of Seizure-like Activity in Mice Brain Slice Preparation

Stimolazione diretta correnti e multi-elettrodo Array registrazione di sequestro simile attività nei topi cervello fetta di preparazione

Cathodal transcranial direct-current stimulation (tDCS) induces suppressive effects on drug-resistant seizures. To perform effective actions, the ...

Effects of Transcranial Alternating Current Stimulation on the Primary Motor Cortex by Online Combined Approach with Transcranial Magnetic Stimulation

Effetti della stimolazione transcranica con corrente alternata la corteccia motoria primaria di approccio combinato Online con stimolazione magnetica transcranica

Transcranial Alternating Current Stimulation (tACS) is a neuromodulatory technique able to act through sinusoidal electrical waveforms in a specific ...

Remotely Supervised Transcranial Direct Current Stimulation: An Update on Safety and Tolerability

Supervisione da remoto Transcranial diretta stimolazione corrente: Un aggiornamento sulla sicurezza e la tollerabilità

The remotely supervised tDCS (RS-tDCS) protocol enables participation from home through guided and monitored self-administration of tDCS treatment while ...

Transcranial Electrical Brain Stimulation in Alert Rodents

Stimolazione elettrica cerebrale transcranica in roditori avvisi

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